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方法文章

从人骨骼肌中分离血管来源的多能前体细胞

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DOI:

10.3791/51195

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2014年8月21日

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本文内容

摘要

人类骨骼肌中的血管含有多种多能前体细胞群体,非常适合用于再生医学应用。该分离方法可同时从血管的三个结构层中分别纯化出三种多能前体细胞群体:来自内膜的肌源性内皮细胞、来自中膜的周细胞以及来自外膜的外膜细胞。

摘要

自发现间充质干细胞/基质细胞(MSCs)以来,其天然身份与定位 的 MSCs 由于在培养中进行回顾性分离,这些细胞的特性曾长期不明确。近期,我们及其他研究人员利用荧光激活细胞分选技术(FACS),前瞻性地鉴定并纯化出三种与人类骨骼肌血管系统相关的多能前体细胞亚群。这三种细胞群体分别为:肌源性内皮细胞(MECs)、周细胞(PCs)和外膜细胞(ACs),它们分别定位于血管的三层结构:内膜、中膜和外膜。这些来源于人类血管的干细胞(hBVSC)群体不仅表达典型的间充质干细胞(MSC)标志物,还具有与典型MSC相似的中胚层发育潜能。以往,MECs、PCs和ACs是通过不同的分离方案分别获得,并在各自独立的研究中进行表征。本研究所采用的分离方案,通过对分离流程的改进以及对选择性细胞表面标志物的调整,能够从单一人肌肉活检样本中通过FACS同时纯化出全部三种hBVSC亚群。这一新方法不仅将简化多种血管源性干细胞亚群的分离过程,还将促进hBVSC在不同治疗目的下的未来临床应用。

引言

人类骨骼肌被认为是临床上极具吸引力的干细胞/前体细胞来源。骨骼肌不仅含有定型的肌源性前体细胞——骨骼肌母细胞,还含有原始的肌源性干细胞,包括卫星细胞和肌肉来源干细胞(MDSCs)1。 在再生医学中,自体或异体来源的人类肌肉干细胞/前体细胞的应用已在临床前动物模型和临床试验中得到广泛研究。肌肉干细胞/前体细胞的再生应用范围广泛,从修复杜氏肌营养不良症(DMD)患者的肌萎缩肌肉,到治疗心肌梗死患者受损的心脏组织。

自发现间充质干细胞/基质细胞(MSCs)及其他多能前体细胞群体(包括骨髓来源的多能成体前体细胞(MAPCs)和脂肪来源的干细胞(ADSCs))以来,成体干细胞/前体细胞迄今已得到广泛研究1-9. 然而,它们的天然身份和定位 原位 由于回顾性分离方法的局限,这些细胞一直未能被清晰识别。近期,我们及其他研究团队利用荧光激活细胞分选技术(FACS),前瞻性地鉴定并纯化了来源于人体骨骼肌及多个其他器官血管壁内的三种多能前体细胞群体:肌源性内皮细胞(MECs)、周细胞(PCs)和外膜细胞(ACs)10. 这三种人源血管干细胞(hBVSCs)亚群可分别存在于血管的三层结构中:内膜层、中膜层和外膜层。具体而言,MECs 和 PCs 存在于微血管和毛细血管中,而 ACs 则定位于较大动脉和静脉的外膜层。每种前体细胞亚群均表达一组独特的细胞表面抗原:MECs(CD34)

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方案

1. 肌肉活检样本处理

  1. 在运输过程中,将人骨骼肌活检样本置于冰上,并保存于添加了5%胎牛血清(FBS)和1%青霉素-链霉素(P/S)的杜氏改良伊格尔培养基(DMEM)中。
  2. 收到肌肉活检样本后,在无菌条件下将其从运输容器中取出,并用添加了2%抗生素-抗真菌溶液(A/A)的磷酸盐缓冲液(PBS)清洗两次。
  3. 在添加了2% A/A的DMEM中,使用无菌剪刀和镊子去除附着的脂肪和结缔组织。
  4. 在解剖显微镜下去除大血管,随后将肌肉样本切成小块(<1 cm2 大小)。
  5. 将切好的肌肉组织块(<5 克)保存于20 ml保存液(PM;含10% FBS和1% P/S的DMEM)中,4 ℃条件下最多可保存5天。

2. 肌肉组织解离与细胞分离

  1. 在细胞分离当天,从PM中取出肌肉组织,用含2% P/S的PBS洗涤两次。制备消化液时,将I型、II型和IV型胶原酶(100 mg/ml)新鲜加入PM中。
  2. 用无菌剪刀和镊子在培养皿中将肌肉组织块精细剪切并机械匀浆,同时加入少量PM培养基,直至组织悬液能顺利通过10 ml血清移液管且无凝块形成。在此过程中去除残留的脂肪和结缔组织。每次细胞分离至少使用8–10克成年肌肉组织或2克胎儿肌肉组织。
  3. 将4-5克剪碎的成年肌肉组织用10 ml血清移液管转移至20....

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结果

首先根据未染色对照、阴性对照和单色阳性对照获得的数据校正FACS参数。在排除死细胞后,对荧光标记的细胞悬液进行一系列阴性和阳性细胞表面标志物筛选。首先圈选CD45+细胞,然后从CD45-组分中分离出CD56+和CD56-细胞。CD56+组分进一步进行CD34-CD144筛选,仅将CD34+/CD144+(双阳性)细胞标记为MEC(CD34+/56+/144+/45-),并随后收集(图1)。类似地,CD56-组分进一步进行CD34-CD146筛选,仅将CD34-/CD146+细胞标记为PC(CD146+/34-/45-/56-),并随后收集(图1)。CD34+/.......

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讨论

鉴定和纯化人骨髓血管周围干细胞(hBVSC)亚群是理解间充质干细胞(MSC)发生过程的重要进展。越来越多的证据表明,MSCs起源于血管周围区域,并且组织特异性前体细胞与血管之间存在关联22-25。 此外,分离出均一的hBVSC亚群的能力,有助于进一步理解MSC的异质性以及血管细胞生物学特性26。

在过去几年中,MECs、PCs 和 ACs 已通过不同的实验方案在各自独立的研究中被分别鉴定和分离。然而,由于难以优化组织解离步骤以及缺乏能够同时识别 MECs、PCs 和 ACs 的特异性细胞谱系标志物组合,目前尚未有研究尝试从人类骨骼肌组织中同步纯化这三种 hBVSC 亚群。本文介绍了一种新的细胞分离方案,通过改进组织解离流程并采用一组新的特异性细胞表面标志物组合,可从单个人类肌肉活检样本中同时纯化 MECs、PCs 和 ACs(图 1)。为获得最佳结果,本方案中需特别关注的关键步骤包括:1. 组织样本的新鲜程度与保存条件;2. 通过密切监控消化过程并调整组织解离时间,以优化细胞得率和表面抗原的完整.......

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披露

J.H. 在上述研究进行期间,因向 Cook MyoSite, Inc. 提供咨询服务以及技术许可所获得的版税而收到报酬。其他所有作者均无利益冲突需要披露。

致谢

作者谨此感谢 Alison Logar 在流式细胞术方面提供的出色技术支持。本研究得到了美国国防部(J.H.)、Henry J. Mankin 捐赠讲席基金(J.H.)以及哈萨克斯坦共和国教育与科学部(A.S.)资助项目的资助。C.W.C. 部分受美国心脏协会博士前奖学金(11PRE7490001)支持。M. Corselli 受加州再生医学研究所培训资助项目(TG2-01169)支持。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
1 型胶原酶SigmaC5894无菌瓶装
2 型胶原酶SigmaC1764无菌瓶装
4 型胶原酶SigmaC1889无菌瓶装
抗人 CD34 APCBD Pharmingen555824保持无菌
抗人 CD45 APC-Cy7BD Pharmingen557833保持无菌
抗人 CD56 PE-Cy7BD Pharmingen 557747保持无菌
抗人 CD144 PEBeckman CoulterA07481保持无菌
抗人 CD146 FITCAbD SerotecMCA2141F保持无菌
FACS Aria II 流式细胞仪Becton-Dickinson
EGM-2 完全培养基LonzaCC-3162用于祖细胞培养(仅 P0 代)
DMEM 高糖(1X),液体,含 L-谷氨酰胺,不含丙酮酸钠Invitrogen11965用于祖细胞培养
DMEM 高糖(1X),液体,含 L-谷氨酰胺,含丙酮酸钠Invitrogen11995用于肌上皮细胞和成纤维细胞培养
胎牛血清Invitrogen10437-028
热灭活马血清Invitrogen26050-088
青霉素/链霉素Invitrogen15140-122
抗生素-抗真菌剂(100X)Invitrogen15240-062
胰蛋白酶-EDTA 0.5%(10X)Invitrogen15400-054
不含钙和镁的杜氏磷酸盐缓冲液(Dulbecco’s PBS)Invitrogen14190-250
鸡胚提取物Accurate ChemicalCE650T-10使用前过滤

参考文献

  1. Peault, B., et al. Stem and Progenitor Cells in Skeletal Muscle Development. Maintenance, and Therapy. Mol Ther. 15, 867-877 (2007).
  2. Toma, J. G., et al. Isolation of multipotent adult stem cells from the dermis of mammalian skin. Nat C....

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重印与许可

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