Summary

Kemirgenlerde Kan-Beyin Bariyeri Açıklığı için Yüksek Verimli Görüntü Destekli Stereotaktik Nöronavigasyon ve Odaklanmış Ultrason Sistemi

Published: July 16, 2020
doi:

Summary

Kan-beyin bariyeri (BBB) mikrobubble aracılı odaklanmış ultrason (FUS) ile geçici olarak bozulabilir. Burada, ultrason olmayan uzmanlar için erişilebilen modüler bir FUS sistemi kullanarak yüksek verimli BBB açma in vivo için adım adım bir protokol açıklıyoruz.

Abstract

Kan-beyin bariyeri (BBB) çeşitli beyin hastalıklarının tedavisinde önemli bir engel olmuştur. Sıkı kavşaklarla bağlanan endotel hücreleri, büyük moleküllerin (>500 Da) beyin dokusuna girmesini önleyen fizyolojik bir bariyer oluşturur. Mikrobubble aracılı odaklanmış ultrason (FUS), geçici bir lokal BBB açıklığı sağlamak için kullanılabilir ve daha büyük ilaçların beyin parankimine girmesini sağlar.

Klinik çeviri için büyük ölçekli klinik cihazlara ek olarak, ilaç adaylarının tedavi yanıt değerlendirmesi için preklinik araştırmalar, hedeflenen BBB açılışı için özel küçük hayvan ultrason kurulumları gerektirir. Tercihen, bu sistemler hem yüksek uzamsal hassasiyet hem de entegre kavitasyon izleme ile yüksek verimli iş akışlarına izin verirken, hem ilk yatırım hem de işletme maliyetlerinde uygun maliyetlidir.

Burada, piyasada bulunan bileşenlere dayanan ve yukarıda belirtilen gereksinimleri karşılayan biyolüminesans ve X-ışını güdümlü stereotaktik küçük hayvan FUS sistemini sunuyoruz. Yüksek hacimli klinik öncesi ilaç değerlendirme çalışmalarında tipik olarak karşılaşılan zorlukları kolaylaştıran yüksek derecede otomasyona özel bir vurgu yapıldı. Bu zorluklara örnek olarak, veri tekrarlanabilirliğini sağlamak, grup içi değişkenliği azaltmak, örnek boyutunu azaltmak ve böylece etik gereksinimlere uymak ve gereksiz iş yükünü azaltmak için standardizasyon ihtiyacı gösterilebilir. Önerilen BBB sistemi, glioblastoma multiforme ve yaygın orta çizgi glioma’nın hasta kaynaklı ksenograft modellerinde BBB açılması kolaylaştırılmış ilaç teslim denemeleri kapsamında doğrulanmıştır.

Introduction

Kan-beyin bariyeri (BBB), beyin parenkimine ilaç verilmesi için önemli bir engeldir. Geliştirilen terapötik ilaçların çoğu fizikokimyasal parametreleri (örneğin, lipofilite, moleküler ağırlık, hidrojen bağı kabul edenleri ve bağışçıları) nedeniyle BBB’yi geçmez veya beyindeki efflux taşıyıcılarına olan yakınlıkları nedeniyle korunmaz1,2. BBB’yi geçebilen küçük ilaç grubu tipik olarak sadece sınırlı sayıda beyin hastalığında etkili olan küçük lipofilik moleküllerdir1,2. Sonuç olarak, beyin hastalıklarının çoğunluğu için farmakolojik tedavi seçenekleri sınırlıdır ve yeni ilaç dağıtım stratejileri gereklidir3,4.

Terapötik ultrason, BBB bozulması (BBBD), nöromodülasyon ve ablasyon4,5,6,7gibi farklı nörolojik uygulamalar için kullanılabilecek yeni bir tekniktir. Kafatasından ekstrakorpozal ultrason yayıcı ile BBB açıklığı elde etmek için odaklanmış ultrason (FUS) mikrobubbles ile birleştirilir. Mikrobubble aracılı FUS, beyin parenkiminde ilaçların biyoyararlanmının artmasına neden olur5,8,9. Ses dalgalarının varlığında, mikrobubbles transsitoz başlatmayı ve BBB’nin endotel hücreleri arasındaki sıkı kavşakların bozulmasını salınmaya başlar ve daha büyük moleküllerin paraselüler olarak taşınmasını sağlar10. Önceki çalışmalar akustik emisyonun yoğunluğu ile BBB açılışı üzerindeki biyolojik etki arasındaki korelasyonu doğruladı11,12,13,14. Fus mikrobubbles ile birlikte zaten kemoterapötik ajan olarak temozolomid veya lipozomal doksokubisin kullanarak glioblastoma tedavisi için klinik çalışmalarda kullanılmıştır, ya da Alzheimer hastalığı ve amyotrofik lateral skleroz tedavisi için5,9,15,16.

Ultrason aracılı BBB açılması farmakoterapi için tamamen yeni olasılıklarla sonuçlanmaktan dolayı, seçilen ilaç adaylarının tedavi yanıtını değerlendirmek için klinik çeviri için preklinik araştırmalara ihtiyaç vardır. Bu genellikle, hedeflenen BBB açıklığının yüksek tekrarlanabilirlikle izlenmesi için hem yüksek uzamsal hassasiyete hem de tercihen entegre kavitasyon algılamaya sahip yüksek verimli bir iş akışı gerektirir. Mümkünse, bu sistemlerin çalışma boyutuna göre ölçeklenebilir olması için hem ilk yatırım hem de işletme maliyetlerinde uygun maliyetli olması gerekir. Çoğu preklinik FUS sistemi, görüntü yönlendirme ve tedavi planlaması15, 17, 18,19için MRI ile birleştirilir. MRI tümör anatomisi ve hacmi hakkında detaylı bilgi verse de genellikle eğitimli/yetenekli operatörler tarafından yapılan pahalı bir tekniktir. Buna ek olarak, yüksek çözünürlüklü MRI klinik öncesi tesislerde araştırmacılar için her zaman mevcut olmayabilir ve hayvan başına uzun tarama süreleri gerektirir, bu da onu yüksek verimli farmakolojik çalışmalar için daha az uygun hale getirir. Dikkat çekici olan, nöro-onkoloji alanındaki preklinik araştırmalar için, özellikle infiltratif tümör modelleri için, tümörü görselleştirme ve hedefleme imkanının tedavi başarısı için gerekli olmasıdır20. Şu anda, bu gereksinim sadece MRG veya fotoprotein ile transdüklenmiş tümörler tarafından karşılanır ve fotoprotein substratının yönetimi ile birlikte biyolüminesans görüntüleme (BLI) ile görselleştirmeyi sağlar.

MRI güdümlü FUS sistemleri genellikle transkraniyal uygulamalar için ultrason dalgası yayılımını sağlamak için bir su banyosu kullanır, böylece hayvanın başı kısmen suya batırılır, ”aşağıdan yukarıya” sistemler15,17,18. Bu tasarımlar genellikle daha küçük hayvan çalışmalarında iyi çalışsa da, kullanım sırasında hayvan hazırlama süreleri, taşınabilirlik ve gerçekçi bir şekilde korunabilir hijyenik standartlar arasında bir uzlaşmadır. MRI’a alternatif olarak, stereotaktik navigasyon için diğer rehberlik yöntemleri kemirgen anatomikatlası 21,22,23, lazer işaretçi destekli görsel görme24, iğne deliği destekli mekanik tarama cihazı25veya BLI26kullanımını kapsar. Bu tasarımların çoğu, dönüştürücünün hayvanın kafasının üstüne yer konulduğunda, hayvanın doğal bir konumda olduğu “yukarıdan aşağıya” sistemlerdir. ”Yukarıdan aşağıya” iş akışı,22, 25,26 su banyosu veya su dolu koni21,24’denoluşur. Kapalı bir koninin içinde dönüştürücü kullanmanın yararı, daha kompakt ayak izi, daha kısa kurulum süresi ve tüm iş akışını basitleştiren düz ileri dekontaminasyon olanaklarıdır.

Akustik alanın mikrobubbles ile etkileşimi basınca bağlıdır ve düşük genlikli salınımlardan (kararlı kavitasyon olarak adlandırılır) geçici kabarcık çökmesine (atalet kavitasyonu olarak adlandırılır)27,28arasında değişir. Ultrason-BBBD’nin başarılı BBBD elde etmek için kararlı kavitasyon eşiğinin çok üzerinde bir akustik basınç gerektirdiği, ancak genellikle vasküler / nöronal hasar29ile ilişkili olan atalet kavitasyon eşiğinin altında olduğu konusunda yerleşik bir fikir birliği vardır. En yaygın izleme ve kontrol şekli, McDannold ve ark.12tarafından önerildikçe pasif kavitasyon tespiti (PCD) kullanılarak (geri) dağınık akustik sinyalin analizidir. PCD, kararlı kavitasyon ayırt edici özelliklerinin (harmonikler, subharmonikler ve ultraharmonikler) ve atalet kavitasyon belirteçlerinin (geniş bant yanıtı) gücünün ve görünümünün gerçek zamanlı olarak ölçülebildiği mikrobubble emisyon sinyallerinin Fourier spektrumunun analizine dayanır.

Hassas basınç kontrolü için “herkese uyan bir boyut” PCD analizi, mikrobubble formülasyonunun polidispersitesi (salınım genliği kabarcık çapına güçlü bir şekilde bağlıdır), markalar arasındaki kabarcık kabuğu özelliklerindeki farklılıklar ve frekans ve basınca bağlı olan akustik salınım nedeniyle karmaşıktır30,31,32. Sonuç olarak, sağlam kavitasyon tespiti ve hatta basıncın geriye dönük geri bildirim kontrolü için tüm bu parametrelerin belirli kombinasyonlarına uyarlanmış ve çeşitli uygulama senaryolarında (küçük hayvan protokolleri üzerinde in vitro deneyden klinik kullanım için PCD’ye kadar) kullanılan birçok farklı PCD algılama protokolü önerilmiştir. Bu çalışma kapsamında kullanılan PCD protokolü doğrudan McDannold ve ark.12’den türetilmiştir ve atalet kavitasyon tespiti için kararlı kavitasyon ve geniş bant gürültüsünün varlığı için harmonik emisyonu izler.

Beyin parenkimine ilaç dağıtımını artırmak için BBB’nin geçici açılışı için görüntü güdümlü bir nöronavigasyon FUS sistemi geliştirdik. Sistem ticari olarak mevcut bileşenlere dayanmaktadır ve hayvan tesisindeki mevcut görüntüleme tekniklerine bağlı olarak birkaç farklı görüntüleme yöntemine kolayca uyarlanabilir. Yüksek verimli bir iş akışına ihtiyaç aldığımızdan, görüntü yönlendirme ve tedavi planlaması için X-ray ve BLI kullanmayı tercih ettik. Fotoprotein (örneğin luciferaz) ile transdüklenen tümör hücreleri BLI görüntüleme için uygundur20. Fotoprotein substratının verilmesinden sonra tümör hücreleri in vivo olarak izlenebilir ve tümör büyümesi ve yeri belirlenebilir20,36. BLI düşük maliyetli bir görüntüleme yöntemidir, zamanla tümör büyümesini takip etmeyi sağlar, hızlı tarama sürelerine sahiptir ve MRI36,37ile ölçülen tümör büyümesi ile iyi ilişkilidir. Kemirgenlerin monte edildiği platformu serbestçe hareket ettirme esnekliği sağlamak için su banyounu dönüştürücüye bağlı su dolu bir koni ile değiştirmeyi seçtik8,24. Tasarım, (I) küçük hayvan stereotaktik platform (II) fidüsyal belirteçlerinin hem X-ışını hem de optik görüntü uyumluluğu (III) hızlı çıkarılabilir anestezi maskesi ve (IV) entegre sıcaklık düzenlemeli hayvan ısıtma sistemi ile entegrasyonu ile donatılmış çıkarılabilir bir platforma dayanmaktadır. Anestezinin ilk indüksiyonundan sonra, hayvan tüm prosedür sırasında kaldığı platformda hassas bir konuma monte edilir. Sonuç olarak, tüm platform, doğru ve tekrarlanabilir bir konumlandırma ve sürekli anestezi sağlarken, tüm müdahalenin iş akışının tüm istasyonlarından geçer. Kontrol yazılımı, fidücial belirteçlerin otomatik olarak algılanmasını sağlar ve her türlü görüntü ve görüntü modalitesini (örneğin, mikro-CT, X-ışını, BLI ve floresan görüntüleme) stereotaktik platformun referans çerçevesine otomatik olarak kaydeder. Otomatik kalibrasyon prosedürü yardımıyla, ultrason dönüştürücünün odak uzaklığı, girişimsel planlama, akustik teslimat ve takip görüntüleme analizinin otomatik füzyonunu sağlayan tam olarak bilinmektedir. Şekil 1 ve Şekil 2’degösterildiği gibi, bu kurulum özel deneysel iş akışları tasarlamak için yüksek derecede esneklik sağlar ve hayvanın farklı istasyonlarda aralanmış olarak işlenmesine izin verir ve bu da yüksek verimli deneyleri kolaylaştırır. Bu tekniği, yaygın orta çizgi glioma gibi yüksek dereceli glioma fare ksinograftlarında başarılı ilaç teslimatı için kullandık.

Protocol

Tüm in vivo deneyler Hollanda etik komitesi (lisans izin numarası AVD114002017841) ve Vrije Universiteit Amsterdam, Hollanda Hayvan Refahı Organı tarafından onaylandı. Araştırmacılar, hayvanların rahatsızlığını en aza indirmek için FUS sisteminin temelleri hakkında eğitildi. 1. Odaklanmış ultrason sistemi NOT: Açıklanan kurulum, piyasada bulunan bileşenlere dayanan dahili bir BBB kesinti sistemidir ve 3D baskılı özel yapım koni ve çıkarıl…

Representative Results

Açıklanan FUS sistemi (Şekil 1 ve Şekil 2) ve ilişkili iş akışı 100’den fazla hayvanda kullanılmış ve hem sağlıklı hem de tümör taşıyan fareler üzerinde tekrarlanabilir veriler üretilmiştir. Kaydedilen kavitasyona ve mikrobubble bolus enjeksiyonunun en yoğun anında harmoniklerdeki spektral yoğunluğa dayanarak, her frekansın spektral gücü, Protokolün 4. Mikrobubbles ile birlikte 0.4 MI ile akustik protokole (1 MHz, 10 ms darbe süres…

Discussion

Bu çalışmada, beyin parenkimine daha fazla ilaç verilmesi için geçici BBB bozulması için uygun maliyetli bir görüntü güdümlü FUS sistemi geliştirdik. Sistem büyük ölçüde piyasada bulunan bileşenlerle ve X-ray ve BLI ile birlikte inşa edildi. Önerilen tasarımın modülerliği, yüksek verimli iş akışlarında planlama ve değerlendirme için çeşitli görüntüleme yöntemlerinin kullanılmasına izin verir. Sistem, yüksek çözünürlüklü MRI veya mikro BT gibi daha kapsamlı yüksek çözü…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu proje KWF-STW (Çocukluk Diffuse Intrinsic Pontine Glioma ve Yüksek Dereceli Glioma’da Sonoporation ile İlaç Teslimatı) tarafından finanse edildi. Ilya Skachkov ve Charles Mougenot’a sistemin gelişimindeki katkıları için teşekkür ederiz.

Materials

1 mL luer-lock syringe Becton Dickinson 309628 Plastipak
19 G needle Terumo Agani 8AN1938R1
23 G needle Terumo Agani 8AN2316R1
3M Transpore surgical tape Science applied to life 7000032707 or similar
Arbitrary waveform generator Siglent n.a. SDG1025, 25 MHz, 125 Msa/s
Automated stereotact in-house built n.a. Stereotact with all elements were in-house built
Bruker In-Vivo Xtreme Bruker n.a. Includes software
Buffered NaCl solution B. Braun Melsungen AG 220/12257974/110
Buprenorfine hydrochloride Indivior UK limitd n.a. 0.324 mg
Cage enrichment: paper-pulp smart home Bio services n.a.
Carbon filter Bickford NC0111395 Omnicon f/air
Ceramic spoon n.a n.a.
Cotton swabs n.a. n.a.
D-luciferin, potassium salt Gold Biotechnology LUCK-1
Ethanol VUmc pharmacy n.a. 70%
Evans Blue Sigma Aldrich E2129
Fresenius NaCl 0.9% Fresenius Kabi n.a. NaCl 0.9 %, 1000 mL
Histoacryl Braun Surgical n.a. Histoacryl 0.5 mL
Hydrophone Precision Acoustics n.a.
Insulin syringe Becton Dickinson 324825/324826 0.5 mL and 0.3 mL
Isoflurane TEVA Pharmachemie BV 8711218013196 250 mL
Ketamine Alfasan n.a. 10 %, 10 mL
Mouse food: Teklad global 18% protein rodent diet Envigo 2918-11416M
Neoflon catheter Becton Dickinson 391349 26 GA 0.6 x 19 mm
Oscilloscope Keysight technologies n.a. InfiniiVision DSOX024A
Plastic tubes Greiner bio-one 210261 50 mL
Power amplifier Electronics & Innovation Ltd 210L Model 210L
Preamplifier DC Coupler Precision Acoustics n.. Serial number: DCPS94
Scissors Sigma Aldrich S3146-1EA or similar
Sedazine AST Farma n.a. 2%
SonoVue microbubbles Bracco n.a. 8 µl/ml
Sterile water Fresenius Kabi n.a. 1000 mL
Syringe n.a. n.a. various syringes can be used
Temgesic Indivior UK limitd n.a. 0.3 mg/ml
Transducer Precision Acoustics n.a. 1 MHz
Tweezers Sigma Aldrich F4142-1EA or similar
Ultrasound gel Parker Laboratories Inc. 01-02 Aquasonic 100
Vidisic gel Bausch + Lomb n.a. 10 g

References

  1. Lipinski, C. A. Lead- and drug-like compounds: the rule-of-five revolution. Drug Discovery Today: Technologies. 1 (4), 337-341 (2004).
  2. Pardridge, W. M. Blood-brain barrier delivery. Drug Discovery Today. 12 (1-2), 54-61 (2007).
  3. Alli, S., et al. Brainstem blood brain barrier disruption using focused ultrasound: A demonstration of feasibility and enhanced doxorubicin delivery. Journal of Controlled Release. 281, 29-41 (2018).
  4. Burgess, A., Hynynen, K. Noninvasive and targeted drug delivery to the brain using focused ultrasound. ACS Chemical Neuroscience. 4 (4), 519-526 (2013).
  5. Meng, Y., et al. Safety and efficacy of focused ultrasound induced blood-brain barrier opening, an integrative review of animal and human studies. Journal of Controlled Release. 309, 25-36 (2019).
  6. Darrow, D. P. Focused Ultrasound for Neuromodulation. Neurotherapeutics. 16 (1), 88-99 (2019).
  7. Zhou, Y. F. High intensity focused ultrasound in clinical tumor ablation. World Journal of Clinical Oncology. 2 (1), 8-27 (2011).
  8. O’Reilly, M. A., Hough, O., Hynynen, K. Blood-Brain Barrier Closure Time After Controlled Ultrasound-Induced Opening Is Independent of Opening Volume. Journal of Ultrasound in Medicine. 36 (3), 475-483 (2017).
  9. Mainprize, T., et al. Blood-Brain Barrier Opening in Primary Brain Tumors with Non-invasive MR-Guided Focused Ultrasound: A Clinical Safety and Feasibility Study. Scientific Reports. 9 (1), 321 (2019).
  10. Dasgupta, A., et al. Ultrasound-mediated drug delivery to the brain: principles, progress and prospects. Drug Discovery Today: Technologies. 20, 41-48 (2016).
  11. O’Reilly, M. A., Waspe, A. C., Chopra, R., Hynynen, K. MRI-guided disruption of the blood-brain barrier using transcranial focused ultrasound in a rat model. Journal of Visualized Experiments. (61), (2012).
  12. McDannold, N., Vykhodtseva, N., Hynynen, K. Targeted disruption of the blood-brain barrier with focused ultrasound: association with cavitation activity. Physics in Medicine & Biology. 51 (4), 793 (2006).
  13. McDannold, N., Vykhodtseva, N., Hynynen, K. Blood-brain barrier disruption induced by focused ultrasound and circulating preformed microbubbles appears to be characterized by the mechanical index. Ultrasound in Medicine and Biology. 34 (5), 834-840 (2008).
  14. Sun, T., et al. Closed-loop control of targeted ultrasound drug delivery across the blood-brain/tumor barriers in a rat glioma model. Proceedings of the National Academy of Sciences. 114 (48), 10281-10290 (2017).
  15. Lipsman, N., et al. Blood-brain barrier opening in Alzheimer’s disease using MR-guided focused ultrasound. Nature Communications. 9 (1), 2336 (2018).
  16. Carpentier, A., et al. Clinical trial of blood-brain barrier disruption by pulsed ultrasound. Science Translational Medicine. 8 (343), 342 (2016).
  17. Chopra, R., Curiel, L., Staruch, R., Morrison, L., Hynynen, K. An MRI-compatible system for focused ultrasound experiments in small animal models. Medical Physics. 36 (5), 1867-1874 (2009).
  18. Kinoshita, M., McDannold, N., Jolesz, F. A., Hynynen, K. Targeted delivery of antibodies through the blood–brain barrier by MRI-guided focused ultrasound. Biochemical and Biophysical Research Communications. 340 (4), 1085-1090 (2006).
  19. Larrat, B., et al. MR-guided transcranial brain HIFU in small animal models. Physics in Medicine & Biology. 55 (2), 365 (2009).
  20. Contag, C. H., Jenkins, D., Contag, P. R., Negrin, R. S. Use of reporter genes for optical measurements of neoplastic disease in vivo. Neoplasia. 2 (1-2), 41 (2000).
  21. Choi, J. J., Pernot, M., Small, S. A., Konofagou, E. E. Noninvasive, transcranial and localized opening of the blood-brain barrier using focused ultrasound in mice. Ultrasound in Medicine & Biology. 33 (1), 95-104 (2007).
  22. Bing, C., et al. Trans-cranial opening of the blood-brain barrier in targeted regions using astereotaxic brain atlas and focused ultrasound energy. Journal of Therapeutic Ultrasound. 2 (1), 13 (2014).
  23. Marquet, F., et al. Real-time, transcranial monitoring of safe blood-brain barrier opening in non-human primates. PloS One. 9 (2), (2014).
  24. Anastasiadis, P., et al. characterization and evaluation of a laser-guided focused ultrasound system for preclinical investigations. Biomedical Engineering Online. 18 (1), 36 (2019).
  25. Liu, H. L., Pan, C. H., Ting, C. Y., Hsiao, M. J. Opening of the blood-brain barrier by low-frequency (28-kHz) ultrasound: a novel pinhole-assisted mechanical scanning device. Ultrasound in Medicine & Biology. 36 (2), 325-335 (2010).
  26. Zhu, L., et al. Focused ultrasound-enabled brain tumor liquid biopsy. Scientific Reports. 8 (1), 1-9 (2018).
  27. Bader, K. B., Holland, C. K. Gauging the likelihood of stable cavitation from ultrasound contrast agents. Physics in Medicine & Biology. 58 (1), 127 (2012).
  28. Neppiras, E. Acoustic cavitation series: part one: Acoustic cavitation: an introduction. Ultrasonics. 22 (1), 25-28 (1984).
  29. Aryal, M., Arvanitis, C. D., Alexander, P. M., McDannold, N. Ultrasound-mediated blood-brain barrier disruption for targeted drug delivery in the central nervous system. Advanced Drug Delivery Reviews. 72, 94-109 (2014).
  30. Tung, Y. S., Choi, J. J., Baseri, B., Konofagou, E. E. Identifying the inertial cavitation threshold and skull effects in a vessel phantom using focused ultrasound and microbubbles. Ultrasound in Medicine & Biology. 36 (5), 840-852 (2010).
  31. Arvanitis, C. D., Livingstone, M. S., Vykhodtseva, N., McDannold, N. Controlled ultrasound-induced blood-brain barrier disruption using passive acoustic emissions monitoring. PloS One. 7 (9), (2012).
  32. Tsai, C. H., Zhang, J. W., Liao, Y. Y., Liu, H. L. Real-time monitoring of focused ultrasound blood-brain barrier opening via subharmonic acoustic emission detection: implementation of confocal dual-frequency piezoelectric transducers. Physics in Medicine & Biology. 61 (7), 2926 (2016).
  33. Chen, W. S., Brayman, A. A., Matula, T. J., Crum, L. A. Inertial cavitation dose and hemolysis produced in vitro with or without Optison. Ultrasound in Medicine & Biology. 29 (5), 725-737 (2003).
  34. Qiu, Y., et al. The correlation between acoustic cavitation and sonoporation involved in ultrasound-mediated DNA transfection with polyethylenimine (PEI) in vitro. Journal of Controlled Release. 145 (1), 40-48 (2010).
  35. Sun, T., Jia, N., Zhang, D., Xu, D. Ambient pressure dependence of the ultra-harmonic response from contrast microbubbles. The Journal of the Acoustical Society of America. 131 (6), 4358-4364 (2012).
  36. Rehemtulla, A., et al. Rapid and quantitative assessment of cancer treatment response using in vivo bioluminescence imaging. Neoplasia. 2 (6), 491-495 (2000).
  37. Puaux, A. L., et al. A comparison of imaging techniques to monitor tumor growth and cancer progression in living animals. International Journal of Molecular Imaging. 2011, (2011).
  38. Wu, S. K., et al. Characterization of different microbubbles in assisting focused ultrasound-induced blood-brain barrier opening. Scientific Reports. 7, 46689 (2017).
  39. van den Broek, M. P., Groenendaal, F., Egberts, A. C., Rademaker, C. M. Effects of hypothermia on pharmacokinetics and pharmacodynamics. Clinical Pharmacokinetics. 49 (5), 277-294 (2010).
  40. Paxinos, G., Franklin, K. B. . Paxinos and Franklin’s the mouse brain in stereotaxic coordinates. , (2019).
  41. Saunders, N. R., Dziegielewska, K. M., Møllgård, K., Habgood, M. D. Markers for blood-brain barrier integrity: how appropriate is Evans blue in the twenty-first century and what are the alternatives. Frontiers in Neuroscience. 385, 385 (2015).
  42. Yao, L., Xue, X., Yu, P., Ni, Y., Chen, F. Evans blue dye: a revisit of its applications in biomedicine. Contrast Media & Molecular Imaging. 2018, (2018).
  43. Caretti, V., et al. Monitoring of tumor growth and post-irradiation recurrence in a diffuse intrinsic pontine glioma mouse model. Brain Pathology. 21 (4), 441-451 (2011).
  44. Yoshimura, J., Onda, K., Tanaka, R., Takahashi, H. Clinicopathological study of diffuse type brainstem gliomas: analysis of 40 autopsy cases. Neurologia Medico-Chirurgica. 43 (8), 375-382 (2003).
  45. Yang, F. Y., et al. Micro-SPECT/CT-based pharmacokinetic analysis of 99mTc-diethylenetriaminepentaacetic acid in rats with blood-brain barrier disruption induced by focused ultrasound. Journal of Nuclear Medicine. 52 (3), 478-484 (2011).
  46. Sirsi, S., Borden, M. Microbubble compositions, properties and biomedical applications. Bubble Science, Engineering & Technology. 1 (1-2), 3-17 (2009).
  47. Greis, C. Technology overview: SonoVue. European Radiology. 14, 11-15 (2004).
  48. Schneider, M. Characteristics of sonovue. Echocardiography. 16, 743-746 (1999).
  49. Talu, E., Powell, R. L., Longo, M. L., Dayton, P. A. Needle size and injection rate impact microbubble contrast agent population. Ultrasound in Medicine & Biology. 34 (7), 1182-1185 (2008).
  50. Pinton, G., et al. Attenuation, scattering, and absorption of ultrasound in the skull bone. Medical Physics. 39 (1), 299-307 (2012).
  51. Constantinides, C., Mean, R., Janssen, B. J. Effects of isoflurane anesthesia on the cardiovascular function of the C57BL/6 mouse. ILAR journal/National Research Council, Institute of Laboratory Animal Resources. 52, 21 (2011).
  52. McDannold, N., Zhang, Y., Vykhodtseva, N. The effects of oxygen on ultrasound-induced blood-brain barrier disruption in mice. Ultrasound in Medicine & Biology. 43 (2), 469-475 (2017).
  53. McDannold, N., Zhang, Y., Vykhodtseva, N. Blood-brain barrier disruption and vascular damage induced by ultrasound bursts combined with microbubbles can be influenced by choice of anesthesia protocol. Ultrasound in Medicine and Biology. 37 (8), 1259-1270 (2011).

Play Video

Cite This Article
Haumann, R., ’t Hart, E., Derieppe, M. P. P., Besse, H. C., Kaspers, G. J. L., Hoving, E., van Vuurden, D. G., Hulleman, E., Ries, M. A High-Throughput Image-Guided Stereotactic Neuronavigation and Focused Ultrasound System for Blood-Brain Barrier Opening in Rodents. J. Vis. Exp. (161), e61269, doi:10.3791/61269 (2020).

View Video