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原代培养中分化的小鼠脂肪细胞:胰岛素抵抗模型

DOI:

10.3791/63979

February 17th, 2023

In This Article

Summary

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该协议描述了从皮下脂肪中分离小鼠前脂肪细胞,它们分化为成熟脂肪细胞以及诱导胰岛素抵抗。通过蛋白质印迹的胰岛素信号通路成员的磷酸化/激活来评估胰岛素作用。该方法可以直接测定原代脂肪细胞的胰岛素抵抗/敏感性。

Abstract

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胰岛素抵抗是胰岛素对其靶细胞的影响降低,通常源于胰岛素受体信号传导的减少。胰岛素抵抗导致2型糖尿病(T2D)和其他肥胖衍生疾病的发展,这些疾病在世界范围内患病率很高。因此,了解胰岛素抵抗的潜在机制非常重要。几种模型已被用于研究 体内体外胰岛素抵抗;原代脂肪细胞是研究胰岛素抵抗机制和鉴定抵消这种情况的分子和胰岛素增敏药物分子靶标的一种有吸引力的选择。在这里,我们使用用肿瘤坏死因子-α(TNF-α)处理的培养物中的原代脂肪细胞建立了胰岛素抵抗模型。

通过磁细胞分离技术从胶原酶消化的小鼠皮下脂肪组织中分离出的脂肪细胞前体细胞(APC)分化为原代脂肪细胞。然后通过TNF-α治疗诱导胰岛素抵抗,TNF-是一种促炎细胞因子,可减少胰岛素信号级联反应成员的酪氨酸磷酸化/激活。通过蛋白质印迹定量胰岛素受体 (IR)、胰岛素受体底物 (IRS-1) 和蛋白激酶 B (AKT) 磷酸化降低。该方法为研究脂肪组织中介导胰岛素抵抗的机制提供了极好的工具。

Introduction

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胰岛素是由胰岛β细胞产生的合成代谢激素,是葡萄糖和脂质代谢的关键调节因子。在其众多功能中,胰岛素调节葡萄糖摄取、糖原合成、糖异生、蛋白质合成、脂肪生成和脂肪分解1。胰岛素与其受体(IR)相互作用后的初始分子信号是IR2的内在酪氨酸蛋白激酶活性的激活,导致其自身磷酸化3和随后称为胰岛素受体底物(IRS)的蛋白质家族的激活,其与衔接蛋白结合导致级联蛋白激酶的激活4.胰岛素激活两种主要的信号通路:磷脂酰肌醇3激酶(PI3K)蛋白激酶B(AKT)和Ras-丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)。前者构成一个主要的分支点或节点45,用于激活参与各种生理功能的众多下游效应子,包括调节燃料稳态,而后者调节细胞生长和分化46胰岛素作用最终取决于细胞类型和生理环境7

主要的胰岛素反应代谢组织之一是脂肪组织。白色脂肪组织是人类和啮齿动物中最丰富的脂肪类型,分布在皮下脂肪(皮肤和肌肉之间)和内脏脂肪(腹腔器官周围)中。鉴于其体积大....

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Protocol

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所有啮齿动物实验均由墨西哥国立自治大学神经生物学研究所生物伦理学委员会批准,协议编号075。

1.小鼠脂肪细胞前体细胞的分离

  1. 对8-10周龄的雄性C57BL / 6小鼠实施安乐死(例如,通过CO2吸入和随后的宫颈脱位)(每次分离四只动物)。用70%乙醇摩擦对小鼠进行消毒,并在处死后立即获得脂肪组织。
    注意:啮齿动物安乐死后,立即分离脂肪组织并在无菌层流罩内执行所有步骤。将小鼠保持在12小时的光照/黑暗循环下,自由获取食物和水。
  2. 解剖每只小鼠的腹股沟皮下脂肪组织。仅去除脂肪组织,避免去除肌肉、皮肤或任何其他组织,并将其收集在含有 15 mL 1 型胶原酶溶液 (1.5 mg/mL) 的 50 mL 锥形管中。将 1 型胶原酶溶解在 Dulbecco 的改良鹰培养基 (DMEM) 高葡萄糖-1% 牛血清白蛋白 (BSA) 中,并通过 0.2 μm 注射器过滤器过滤。
  3. 用无菌手术剪刀将脂肪组织切成小块,并通过在37°C的轨道振荡器(150rpm)中与1型胶原酶溶液孵育30分钟来消化样品(将含有脂肪和胶原酶的管放在水平位置以获得更大的振荡表面)。每10分钟检查一次消化,以确保其有效(组织降解可见)并防止消化过度(见 补充图S1)。
  4. 使用200μm网状注射器(先前高压灭菌)过滤以消除未被胶原酶消化的组织。将过滤器....

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Results

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在过去的几年中,肥胖和T2D患病率的增加促使人们强烈寻找介导脂肪组织中胰岛素抵抗的机制。通过此处描述的方案,APC可以分化为成熟的脂肪细胞,以评估胰岛素抵抗和敏感性。一旦APC达到汇合,则需要10天才能完成分化为成熟脂肪细胞及其TNF-α介导的胰岛素抵抗诱导(图1)。

APCs显示出成纤维细胞样形态,其特征在于其扁平和细长的形状以及它们在接种后48小时完成的板的粘附(图2A)。APC需要2-5天才能达到80%汇合(取决于接种细胞的数量),此时分化过程通过暴露于分化混合物开始(图2A)。成熟的脂肪细胞在接下来的6-8天内开始出现。分化的脂肪细胞的特征在于圆形形态和脂滴的细胞内积累。高达80%的细胞在分化过程结束时分化(图2B)。

通过TNF-α处理(4ng / mL)诱导原代脂肪细胞中的胰岛素.......

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Discussion

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本文提供了一种研究胰岛素抵抗的方法,该方法使用用TNF-α处理的培养物中的原代脂肪细胞。该模型的优点是原代脂肪细胞可以在规定的条件下长时间培养,并严格控制细胞环境因素26。测定持续时间为15-20天,尽管实验之间可能发生分化脂肪细胞百分比的变化。原代脂肪细胞比细胞系具有优势,因为它们在培养中没有持续扩增,并且更紧密地捕获了它们来源的组织多样性27。此外,原代脂肪细胞允许研究不同生理病理背景下的供体,例如瘦与肥胖,男性与女性,年轻与老年以及来自不同脂肪库的细胞。该方法的另一个优点是,在APC分离后可以产生来自CRE和敲除小鼠的细胞系。

APCs分离和分化过程中的一个可能问题是这些细胞可能会失去分化能力,当在分化过程开始时超过80%汇合时,可能会发生这种情况。培养基也应非常温和地更换,尤其是在脂质积累之后,因为分化的脂肪细胞很容易从培养皿中分离。此外,每批胶原酶必须测试消化效率、细胞产量和细胞毒性26。已经开发出使用CD31和CD45等阴性标志.......

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Disclosures

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作者声明不存在利益冲突。

Acknowledgements

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我们感谢丹尼尔·蒙德拉贡、安东尼奥·普拉多、费尔南多·洛佩斯-巴雷拉、马丁·加西亚-塞尔文、亚历杭德拉·卡斯蒂利亚和玛丽亚·安东尼埃塔·卡尔巴霍的技术援助,感谢杰西卡·冈萨雷斯·诺里斯对手稿的批判性编辑。该议定书得到了墨西哥国家科学和技术委员会(CONACYT)、教育部门研究基金赠款284771(致Y.M.)的支持。

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
1.分离小鼠脂肪细胞前体细胞
ACK 裂解缓冲液 LONZA10-548E
抗生物素微珠 Miltenyi130-090-485
抗 CD31eBioscience13-0311-85
AutoMACS Pro 分离器Miltenyi
基底膜基质(基质胶)康宁354234
bFGFSigmaF0291生长因子
BSAEquitech-Bio, Inc.BAC63-1000
CD45 单克隆抗体 (30-F11) - 生物素 eBioscience13-0451-85
胶原酶,1 型Worthington BiochemLS004197
地塞米松SigmaD1756
DMEMGIBCO12800017
DMEM 低葡萄糖GIBCO31600-034
EGFPeprotech315-09生长因子
FBSGIBCO26140-079
ITS 混合物SigmaI3146
L-抗坏血酸 2-磷酸SigmaA8960
LIFMilliporeESG1107生长因子
亚油酸-白蛋白SigmaL9530
MCDB 201 培养基SigmaM6770
NormocinInvivoGenant-nr-2
PDGF-BB Peprotech315-18生长因子
青霉素-链霉素BioWestL0022-100
预分离过滤器(70 µm)Miltenyi130-095-823
纯化大鼠抗小鼠 CD16 / CD32 BD Pharmingen553142
胰蛋白酶-EDTA GIBCO25300062
2.脂肪细胞分化和胰岛素抵抗诱导
3-异丁基-1-甲基黄嘌呤 [IBMX]SigmaI5879分化混合物
BMP4R&D Systems5020-BP-010分化混合物
地塞米松SigmaD1756分化混合物
胰岛素SigmaI9278
罗格列酮开曼71742分化混合物
TNF&α;研发&D Systems210-TA-005 
3.通过 western blot
抗 β 微管蛋白抗体Abcamab6046
溴酚蓝BioRad161-0404Laemmli 缓冲液
EDTASigmaE5134RIPA 缓冲液
EGTASigmaE4378RIPA 缓冲液
FluorChem E 系统蛋白质简单
甘油SigmaG6279Laemmli 缓冲液
甘氨酸SigmaG7126电泳和转印缓冲液
IgepalSigmaI3021RIPA 缓冲液
2-巯基乙醇SigmaM3148Laemmli 缓冲液
甲醇JT Baker907007转印缓冲液
NaClJT Baker3624-05TBS-T
NaFSigma77F-0379RIPA 缓冲液
NaOH JT Baker3722-19
Na4P2O7Sigma114F-0762RIPA 缓冲液
Na3VO4SigmaS6508RIPA 缓冲液
硝酸纤维素膜 BioRad1620112
脱脂奶粉BioRad1706404封闭液
预染蛋白标准品 BioRad1610395
蛋白酶抑制剂混合物 SigmaP8340-5ML
过氧化物酶 AffiniPure 驴抗兔 IgG (H+L) Jackson ImmunoResearch711-035-132
磷酸化 - 胰岛素受体和 β; 细胞信号转导3024
Phospho-Akt (Ser473) Antibody 细胞信号转导9271
Phospho-IRS1 (Tyr608) 抗体Millipore9432
糖精 JT Baker407205RIPA 缓冲液
SDSBioRad1610302电泳和 laemmli 缓冲液
SuperSignal West Pico PLUS 化学发光底物Thermo Scientific34577
Tris-basePromegaH5135电泳、转印和 laemmli 缓冲液
Tris-HClJT Baker4103-02RIPA 缓冲液 - TBS
Tween 20适马P1379TBS-T
群岛 评估胰岛素信号通路

References

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  1. Elmus, G. B. Insulin signaling and insulin resistance. Journal of Investigative Medicine. 61 (1), 11-14 (2013).
  2. Kasuga, M., Zick, Y., Blithe, D. L., Crettaz, M., Kahn, C. R. Insulin stimulates tyrosine phosphorylation of the insulin receptor in a cell-free system. ....

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