$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
首先,在缓冲液中制备单纯疱疹病毒(一种包膜传染性病毒)的连续稀释液。
获得含有单层病毒敏感上皮细胞培养物的多孔板。用稀释的病毒悬浮液代替特定体积的培养基,确保均匀的单层覆盖。让病毒吸附到细胞表面。
去除任何未吸附的病毒。用含甲基纤维素的培养基覆盖细胞单层,形成半固体覆盖层。
孵育后,病毒包膜和细胞膜融合,将包围双链基因组的病毒核衣壳释放到细胞质中。此外,病毒基因组被释放到细胞核中。
利用
宿主的细胞机制和病毒粒子蛋白,病毒基因组表达即刻早期病毒蛋白,调节早期基因的表达。早期病毒蛋白介导病毒 DNA 复制。
然后,晚期病毒基因表达结构蛋白,这些结构蛋白与病毒基因组一起组装产生后代病毒粒子颗粒。病毒感染的细胞裂解,释放病毒粒子。
甲基纤维素限制病毒运动,导致病毒粒子仅感染邻近细胞并随后裂解,从而在单层上形成孔洞。
孵育后,去除甲基纤维素覆盖层。加入乙醇结晶紫溶液。乙醇固定细胞并灭活病毒,而结晶紫则对细胞进行染色。结果,紫色细胞单层上出现明显的裂解区或斑块。
在
每次病毒稀释时计数每个孔中的斑块,以确定传染性病毒滴度或浓度。
使用移液器从一个或两个孔中取出细胞培养基。小心地,将稀释的病毒样品逐滴添加到每个单层细胞中,通过每个孔的侧面
滴加。
每隔一两个孔重复该过程,直到整个板都充满被斑块的病毒样品。用手轻轻摇晃整个盘子。
然后,将板在37摄氏度下孵育1小时,让病毒吸附。每 10 分钟后,将板从培养箱中取出,再次轻轻摇晃,使病毒更均匀地分布在每个孔中,然后将其放回培养箱中。
为了减少无意中计数未吸收的接种物的可能性,请使用 1,000 微升移液器吸头从孔中取出病毒样品,并将样品丢弃在废烧杯中。
将 2.5 毫升甲基纤维素覆盖层放在板上,然后将其放回培养箱中。在将废烧杯从生物安全柜中取出之前,通常添加漂白剂、碘伏或类似的杀病毒剂对废烧杯进行消毒。
孵育两天后,使用移液器一次从一两个孔中取出甲基纤维素覆盖层,并将其放入废烧杯中。向每个孔中加入约 2 毫升 1% 结晶紫和 50% 乙醇。将板与所有充满染色剂的孔一起在 37 摄氏度下孵育 30 分钟。
此时,对废烧杯进行消毒,如前所述。用自来水用力清洗板,直到径流清晰。
确保每个稀释系列的斑块数量存在大约 10 倍的差异。