8 Mart 2014
Standart yöntemlerle olarak hücreler, fizyolojik bir ortam üzerinden alınır ve bir çanak plastik yüzeyi üzerinde büyütülür. Birincil insan kemik iliği hücrelerinin davranışını incelemek için biz hücreler doku yerel mikro yansıtan koşullar altında yetiştirilen bir 3-D kültür sistemi oluşturulur.
Bu prosedürün genel amacı, insan kemik iliğinin hücresel ve hücre içi mikroortamını yakından taklit eden bir kültür sistemi kurmaktır. İlk olarak, bir doku kültürü kuyusunun yüzeyi endüstriyel matris ile kaplanır. Ardından kemik iliği mononükleer hücreleri veya ilgilenilen diğer hücreler kemik iliği matrisi ile karıştırılır.
Daha sonra, endüstriyel matris uzaklaştırılır ve hücre-matris karışımı kuyucuğa eklenir. Matris jelleştikten sonra, üzerine büyüme medyumu eklenir. Sonuç olarak hücreler, mevcut hücre kültüre alma yöntemleriyle karşılaştırıldığında, doğrudan matris içinde görüntülenebilir veya alt analizler için izole edilebilir.
Örneğin, standart doku kültürü yöntemleri veya hücrelerin plastik üzerinde büyütüldüğü ko-kültür modelleri. 3D kültür yöntemi kullanmanın temel avantajı, hücrelerin fizyolojik mikro çevre içerisinde büyütülmesidir ve bu sayede hücreleri dokunun doğal koşulları altında incelemenize olanak tanır. Hücrelerin ekileceği 48 kuyucuklu bir plaka hazırlayın.
Her birine önce 65 µL endüstriyel kaplama çözeltisi ekleyerek, çözeltiyi kuyucuğun tüm yüzeyini kaplayacak şekilde eşit olarak yayın. Bu yöntem diğer yüzeylere de ölçeklenebilir. Plakaları oda sıcaklığında en az 30 dakika inkübe edin.
Bu sırada, mikrolitre başına 50.000 hücre içeren PBS hücre süspansiyonunu hazırlayın. Her kuyucuğa 10 mikrolitre ekleyecek kadar hazırlayın, ardından bir eppendorf tüpünde, hücre süspansiyonunu kuyucuk başına 100 mikrolitre rekonstrüktif kemik matriksi ile karıştırın. Nazikçe karıştırın ve hava kabarcığı oluşmamasına dikkat edin.
Plaka işlemi bittiğinde matrisin jelleşmemesi için karışımı buz üzerinde tutun. İnkübasyon sonrası tüm sıvıyı ve kaplama solüsyonunu aspirasyon yoluyla uzaklaştırın. Ardından, her bir kuyucuğa matris içeren ve iyice karıştırılmış hücre süspansiyonundan 100 µL ekleyin.
Kuyucuğun tüm yüzeyini eşit şekilde kaplamak için bir pipet kullanarak plakayı hızlıca eğin. Hücreler tamamen yüklendiğinde kümeleşeceği için, kuyucuklar doldurulurken süspansiyonu karıştırmaya devam edin. Matriks katılaşana kadar plakayı sarsmadan 30 ila 60 dakika boyunca inkübe edin.
Ardından, kemik iliği büyüme ortamını 37 °C'ye ayarlanmış bir su banyosunda önceden ısıtın. 30 dakikalık inkübasyonun ardından, matriksin uygun şekilde donup donmadığını kontrol edin. İyi bir matriks, plaka eğildiğinde hareket etmeyen yumuşak, jel benzeri bir tabaka oluşturur.
Matriks hazır olduğunda, serolojik bir pipet kullanarak üzerine damla damla 1 mL besiyeri ekleyin. Ardından, hazırlanan yeniden yapılandırılmış kemik matriksi kültürünü, besiyeri değişimi yapmadan 30 güne kadar inkübatöre geri yerleştirin. Eğer besiyeri değişimi gerekirse, her seferinde besiyerinin sadece yarısını değiştirin.
Matriks tabakasını bozmadan besiyerini nazikçe uzaklaştırın. Plakayı eğerek besiyerini bir pipet yardımıyla yavaşça boşaltın. Besiyerini matriks tabakasının üzerinden aspire etmeyin.
Hücreler boyanırken, solüsyon değişimleri için bu tekniği kullanın. 3D kültürün kuyucuklarından medyumu uzaklaştırırken, medyumun kuyucuğun yan tarafından alınması oldukça kritik önem taşır.
Aksi takdirde, matriks bozulacak ve hücreler kaybolabilecektir. Aynı tekniğe bağlı kalarak, hücreleri iki kez steril 1x PBS ile yıkayın. Ardından her birine yarım mililitre buz gibi soğuk hücre geri kazanım çözeltisi ekleyin.
Hücrelerle birlikte tüm matriks tabakasını, pipetle güçlü bir şekilde yukarı-aşağı çekerek uzaklaştıracağız. Her biri için, toplanan materyali bir mikrosantrifüj tüpüne aktarıp buz üzerine yerleştireceğiz. Ardından, aynı kuyucuğa yarım mililitre daha recovery çözeltisi ekleyip geri kalan tüm materyali toplayacağız.
Tüm koleksiyonları vorteksleyin ve buz üzerinde bir saat boyunca inkübe edin. Bu bir saatlik süre boyunca, hücrelerin matriksten salınımını kolaylaştırmak için tüpleri her 15 dakikada bir vorteksleyin. Bir saatin sonunda, karışımda görünür matris kümeleri olup olmadığını kontrol edin.
Hiçbiri bulunmamalıdır, ancak mevcutsa, karışımı daha büyük bir tüpe aktarın ve iki ila beş mililitre ek hücre geri kazanım çözeltisi ekleyin. Ardından hücreleri 30 ila 60 dakika daha inkübe edin. Periyodik olarak vorteksleyin ve matris kümelerinin yokluğunu tekrar kontrol edin.
Matriks artık topaklanmadığında, karışımı 4 °C'de 1000 RPM'de beş ila 10 dakika boyunca santrifüj edin. Ardından süpernatanı uzaklaştırın ve hücre peletini 1 mL soğuk 1X PBS içinde yeniden süspande edin.
Santrifüj işlemini tekrarlayın. Süpernatantı taze PBS ile değiştirin ve yıkama işlemini tekrarlayın. Üçüncü kez.
Üçüncü PBS yıkamasından sonra, hücreleri bir sonraki prosedür için uygun olan çözeltide geri kazanın. Kemik iliği hücreleri, yeniden yapılandırılmış kemik matrisinde 30 gün boyunca büyütülmüş ve ışık mikroskobu ile 200 kat büyütmede periyodik olarak görüntülenmiştir. Stromal elementler ilk olarak beşinci günde tespit edilmiş, ancak 14. güne gelindiğinde belirgin şekilde görünür hale gelmişlerdir.
Kültür süresi boyunca hücreler matris boyunca göç etmiş ve belirgin kümeler halinde bir araya gelmiştir. RBM'de aşırı büyüyen stromal bileşenlerin kompozisyonunu değerlendirmek amacıyla, malign hücre kütleleri zamanla genişletilmiştir. RBM ile endüstriyel kaplama arasındaki geçiş bölgesindeki hücrelerin morfolojisi değerlendirilmiştir.
Hücreler fibronectin, aktin ve çekirdekler için boyandı. Stromal morfolojiye sahip hücrelerin görselleştirilmesi, yüksek alkali fosfataz aktivitesine sahip prek-osteoblastlar olduklarını göstermiştir. Bunların, zarin red boyaması ile belirlendiği üzere kalsiyumu mineralize etme yeteneğine sahip oldukları görülmüştür. Lipid damlacıklarının görünür olduğu hücreler, oil boyamasıyla pozitif sonuç vermeleri nedeniyle adipositler olarak tanımlanmıştır.
Ara sıra çok çekirdekli görülen kırmızı hücreler pres osteoklastlar olarak tanımlanmış ve tartrat dirençli asit fosfataz için pozitif sonuç vermiştir. Hücrelerin 3D kültürden izole edilmesinin ardından çeşitli çalışmalar yapabilirsiniz. Örneğin, mikroçevrede büyütülen çeşitli hücrelerin hücresel fenotiplerini inceleyebilirsiniz.
Gen ve protein ekspresyonunu inceleyebilir, hatta 3D koşullar altında bu hücreler tarafından ne tür moleküllerin salgılandığını belirleyebilirsiniz.
Tam transkripti görüntüleyin ve binlerce bilimsel videoya erişin
Bu makale, primer insan kemik iliği hücrelerini kendi doğal mikroçevrelerini taklit eden bir ortamda incelemek için tasarlanmış 3 boyutlu bir kültür sistemini sunmaktadır. Yöntem, hücrelerin doğrudan görüntülenmesine veya ileri analizler için izole edilmelerine olanak tanır.
Primer insan kemik iliği hücrelerinin, doğal hücre dışı matris ipuçlarının kaybı nedeniyle ex vivo ortamda sürdürülmesi zordur ve bu durum hematolojik malignitelerin preklinik modellemesini ve stromal etkileşimleri kısıtlamaktadır. rBM sistemi, primer kemik iliği canlılığını ve fonksiyonunu 30 güne kadar koruyan, fizyolojik olarak ilgili bir 3D mikroortam sağlayarak terapötik adayların mekanistik risk azaltımına olanak tanır. Bu sistem, hücresel kompozisyonu koruyarak ve hücre davranışının ve ilaç yanıtının matris içinde gerçek zamanlı olarak görselleştirilmesine imkan vererek hedef validasyonunu ve preklinik sürekliliği destekler.
rBM sistemi; hedef doğrulama ile ön lider belirleme ve preklinik değerlendirmeye kadar uzanan keşif sürecine, özellikle hematolojik maligniteler ve mikroçevreye bağımlı tedaviler için tam olarak uyum sağlar.