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Methodenartikel

RNAi-vermittelte Gen-Knockdown und

13.2K Aufrufe

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DOI:

10.3791/3479

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14. Juli 2012

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

In diesem Protokoll kombinieren wir RNAi-vermittelte Gen-Silencing mit ein In-vivo- Diurese Assay, um die Auswirkungen Knockdown von Genen von Interesse Studie wurde auf Moskito-Flüssigkeit ausgeschieden.

Zusammenfassung

Dieses Video demonstriert Protokoll eine effektive Technik, um ein bestimmtes Gen in einer Insekten und die Durchführung einer neuartigen Bioassay zur Ausscheidung zu messen. Diese Methode kann verwendet werden, um ein besseres Verständnis des Prozesses der Diurese bei Insekten erhalten werden und ist besonders nützlich bei der Untersuchung der Diurese in blutsaugende Arthropoden, die aufnehmen können große Mengen an Flüssigkeit in einem einzigen Blutmahlzeit sind.

Das RNAi-vermittelten Gen Knockdown mit einem In-vivo-Assay kombiniert Diurese wurde von der Hansen-Labor entwickelt, um die Effekte der RNAi-vermittelte Reduktion von Aquaporin-Gene auf Aedes aegypti Moskito Diurese 1 studierst.

Das Protokoll ist Setup in zwei Teile: der erste Beispiel demonstriert, wie man ein einfaches Moskitonetz Injektionsgerät konstruieren und zur Vorbereitung und injizieren dsRNA in den Brustkorb von Mücken für RNAi-vermittelte Gen-Knockdown. Das zweite Beispiel demonstriert, wie Sie feststellen,Ausscheidung in Moskitos mit einem In-vivo-Bioassay.

Protokoll

Teil I - RNAi-vermittelten Gen-Knockdown in der Erwachsenenbildung Aedes aegypti Mücken. Für Experiment Überblick siehe Abbildung 1.

1. dsRNA-Synthese

  1. Synthetisieren spezifische dsRNAs gegen Gene von Interesse und Kontrolle dsRNAs. Anmerkung: Es wird empfohlen die Entwicklung Primer für die PCR-Fragmente im Bereich von 300 bis 500 Basenpaare am 3'-Ende der spezifischen cDNA 2 und mit dem T7-Primer-Sequenz am 5 'befestigt Ende (5'-TAA TAC GAC TCA CTA befindet TAG GG-3 '). Die Einzigartigkeit der Fragmente sollte durch BLASTN Analyse 3 bestätigt werden.
  2. Verwenden Sie die Ambi....

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Diskussion

Die RNAi-Protokoll verwendet wurde im Labor von Alexander Raikhel wurde an der University of California Riverside 6,7 entwickelt und ist vergleichbar mit einem Protokoll, das von Garver und Dimopoulos 4 veröffentlicht. Der experimentelle Ansatz in diesem Video-Protokoll gezeigt werden verwendet, um Gene in Insektenzellen Diurese in einem in-vivo-Umgebung verwickelt zu werden. Die Ausscheidungsorgane der Insekten, die Malpighischen Gefäßen, haben das Interesse von Generationen von .......

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Offenlegungen

Wir haben nichts zu offenbaren.

Danksagungen

Die Autoren danken Victoria Carpenter für ihre kritischen Kommentare dieses Protokolls.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Name des Reagenz oder Ausrüstung Firma Katalog-Nummer Kommentare
MEGAscript T7 High-Yield-Kit Ambion, Inc. AM1334
PBS-Puffer Sigma-Aldrich P4417
Kunststoffschlauch Lokale Anbieter PVC
1 ml Kunststoff-Pipettenspitze VWR 83007-376 Blaue Spitze
1 ml-Spritze Becton, Dickinson and Company 309602
Schere Lokale Anbieter
Metall-Nadel Carolina Biologicals 654307 Größe 5
Fly-Pad Genesee Scientific 789060
Batteriebetriebene Aspirator w / Sammelfläschchen Upma Labs IPMM 2000
Feine Spitze Pinzette World Precision Instruments 14095
Glaskapillare Nadeln World Precision Instruments 1B200-6
Stereo Dissektionsmikroskop Leica Microsystems S6D
Analytische Präzisionswaage Mettler Toledo AB54S
Saccharose Sigma-Aldrich 84097
Ein Pint gewachst ausgekleideten Karton Tassen Lokale Anbieter Hergestellt Suppentassen
Mesh-Netz Lokale Anbieter Kunststoff-fly Gaze

Referenzen

  1. Drake, L. L., et al. The Aquaporin gene family of the yellow fever mosquito, Aedes aegypti. PloS one. 5, e15578(2010).
  2. Shepard, A. R., Jacobson, N., Clark, A. F. Importance of quantitative PCR primer location for short interfering RNA ....

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Nachdrucke und Genehmigungen

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