Ein Abonnement von JoVE ist erforderlich, um diesen Inhalt anzuzeigen. Melden Sie sich an oder beginnen Sie noch heute mit einer kostenlosen Testphase.

Methodenartikel

Kultur von embryonalen Maus Cochlear Explantate und Gentransfer durch Elektroporation

13K Aufrufe

⸱

DOI:

10.3791/52260

⸱

12. Januar 2015

 ,  ,  , 

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Wir stellen eine Methode vor, die die Isolierung und Kultur von Cochlea-Explantaten aus embryonalen Maus-Innenohren beschreibt. Wir demonstrieren auch eine Methode für den Gentransfer in Cochlea-Explantate mittels Rechteck-Elektroporation. Die In-vitro-Explantatkultur in Verbindung mit der Gentransfertechnik ermöglicht es den Forschern, die Auswirkungen einer Veränderung der Genexpression während der Entwicklung zu untersuchen.

Zusammenfassung

Auditorische Haarzellen, die sich im Mausorgan von Corti befinden, erkennen und leiten Schallinformationen an das zentrale Nervensystem weiter. Die mechanosensorischen Haarzellen sind in einer Reihe von inneren Haarzellen und drei Reihen von äußeren Haarzellen ausgerichtet, die sich entlang der basalen bis apikalen Achse der Cochlea erstrecken. Die hier beschriebene Explantatkulturtechnik bietet eine effiziente Methode zur Isolierung und Erhaltung von Cochlea-Explantaten aus dem embryonalen Innenohr der Maus. Auch die Morphologie und die molekularen Eigenschaften von sensorischen Haarzellen und nicht-sensorischen Stützzellen in den Cochlea-Explantatkulturen ähneln denen, die in vivo beobachtet wurden, und können in ihrer intrinsischen zellulären Umgebung untersucht werden. Die Cochlea-Explantate können als wichtige experimentelle Werkzeuge für die Identifizierung und Charakterisierung molekularer und genetischer Signalwege dienen, die an der zellulären Spezifizierung und Musterbildung beteiligt sind. Obwohl transgene Mausmodelle einen effektiven Ansatz für Genexpressionsstudien bieten, stirbt eine beträchtliche Anzahl von Mausmutanten während der Embryonalentwicklung ab, was die Analyse und Interpretation von Entwicklungsphänotypen behindert. Das Corti-Organ von mutierten Mäusen, die vor der Geburt sterben, kann kultiviert werden, so dass ihre in vitro Entwicklung und Reaktionen auf verschiedene Faktoren analysiert werden können. Darüber hinaus beschreiben wir eine Technik zur Elektroporation embryonaler Cochlea-Explantate ex vivo, die zur Herunter- oder Überexpression bestimmter Gene verwendet werden kann, um ihre potentielle endogene Funktion zu analysieren und zu testen, ob ein spezifisches Genprodukt in einem gegebenen Kontext notwendig oder ausreichend ist, um die Cochlea-Entwicklung von Säugetieren zu beeinflussen1-8.

Einleitung

Das Säugetierorgan Corti besteht aus einem Mosaik spezialisierter Zelltypen, darunter zwei Arten von mechanosensorischen Haarzellen sowie mindestens vier Arten von nicht-sensorischen Unterstützungszellen, was es zu einem idealen Modellsystem macht, um normale zelluläre Prozesse wie Proliferation, Schicksalsspezifikation, Differenzierung und Musterbildung zu untersuchen. Darüber hinaus ist die normale Entwicklung dieser verschiedenen Zelltypen essentiell für eine normale Hörfunktion. Daher ist es wichtig, die molekularen und zellulären Faktoren zu verstehen, die ihre Entwicklung regulieren. Die geringe Größe der Maus-Cochlea sowie ihre Unzugänglichkeit stellen jedoch e....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Protokoll

HINWEIS: Alle Protokolle mit lebenden Tieren müssen überprüft und durch ein Institutional Animal Care und Verwenden Committee (IACUC) zugelassen worden sein und offiziell anerkannte Methoden für die Pflege und Verwendung von Labortieren folgen. Alle Sektionen sollte mit einer sterilen Technik auf eine saubere Sterilbank werden. Handschuhe und eine Maske, falls erwünscht, sollte bei diesem Verfahren getragen werden.

1. Präparation der embryonalen Maus-Ear-

  1. Einrichten für Corti-Organ Explantatkulturen:
    1. Sterilisieren der Laminarströmung Gewebekulturhaube durch Einschalten UV-Licht für ungefähr 30 min und desinfiziert die ....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Ergebnisse

Wir beschreiben eine Methode zur Isolierung der Cochlea aus embryonalen Innenohren und zur mikrochirurgischen Dissektion, um das sensorische Epithel freizulegen. Nach der Dissektion können die Präparate als intakte Cochleagleise kultiviert (Abbildung 3) und mittels Immunhistochemie analysiert werden. Die kultivierten Cochleaausläufer stellen ein nützliches Testsystem dar, um die Wirkung verschiedener löslicher Faktoren und pharmakologischer Substanzen auf die Cochlearentwicklung zu untersuchen. Nach der .......

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Diskussion

Alle Zellen innerhalb des membranösen Labyrinth des Maus Innenohres einschließlich sensorischer, nonsensory und die Spiralganglienneuronen sind alle aus placodally abgeleiteten otocyst benachbart zu dem Hinterhirn des Ektoderms rund E8 10-14 abgeleitet ist. Bei E11 ventralen Bereich des otocyst erstreckt, um den Schneckengang zu bilden, und die Entwicklung geht weiter, eine Gruppe von Epithelzellen in der Cochlea als auch in anderen Bereichen des otocyst, werden als prosensory Patches, anschließend Hieraus wi.......

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Offenlegungen

Es wurden keine Interessenkonflikte angegeben.

Danksagungen

Wir möchten Dr. Bradley Schulte für seine Kommentare zu diesem Protokoll danken. Diese Arbeit wurde durch das Stipendium R00 (5R00DC010220) der National Institutes of Health unterstützt. Dieses Projekt wurde in einem renovierten Laborraum durchgeführt, der von Grant C06RR014516 unterstützt wurde.

....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
HBSSGibco14065-056
HEPESGibco15630-080
Dulbecco' s Modifiziertes MediumGibco12430-054
Fötales RinderserumGibco10082
N-2 Ergänzung (100x)Gibco17502-048
CiprofloxacinhydrochloridCellgro61-277-RF
Glasschale 60 mmKimble Chase23062-6015/23064-6015
Glasschale 100 mmKimble Chase23064-10015/23062-10015
Minutien PinsFine Science Tools26002-15
Dumont #5 PinzettenFine Science Tools11251-10
ImpulsgeneratorProtech International IncCUY21Vivo-SQ
Kulturschalen mit GlasbodenMatTekP35G-0-10-C
Matrigel-MatrixBD Biosciences356237
Kulturschale, 60 x 15 mmBecton Dickinson353037
GewebekulturschalenGreiner Bio-one639160
Phosphatgepufferte KochsalzlösungGibco10010-023
OS-30Dow Corning4021768
FluoromountSouthern Biotech0100-01
Konische Röhrchen, 15 mlGreiner Bio-one188261
Myosin 6Proteus Biosciences Inc25-6791
Myosin 7aProteus Biosciences Inc25-6790
TuJ1SigmaT2200

Referenzen

  1. Sobkowicz, H. M., Bereman, B., Rose, J. E. Organotypic development of the organ of Corti in culture. J Neurocytol. 4 (5), 543-572 (1975).
  2. Zheng, J. L., Gao, W. Q. Overexpression of Math1 induces robust production of extra hair cells in postnatal rat inner ears.

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Nachdrucke und Genehmigungen

Weitere Artikel entdecken

Cochlea-Explantkulturembryonale MauscochleaGentransfer-ElektroporationCorti-Organsensorische Haarzellenkonfokale BildgebungLive-Cell-ImagingImmunhistochemieBasalmembranmatrixElektroporationsprotokoll