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Methodenartikel

Erweiterte Zeitraffer-Intravital Imaging von Echtzeit-Vielzellige Dynamics im Tumormikromilieu

8K Aufrufe

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DOI:

10.3791/54042

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12. Juni 2016

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Dieses Protokoll beschreibt die Verwendung von Multiphotonen - Mikroskopie ausgedehnte Zeitraffer-Bildgebung von mehrzelligen Interaktionen in Echtzeit durchzuführen, in vivo auf Einzelzellauflösung.

Zusammenfassung

In der Tumormikroumgebung interagieren Wirtsstromazellen mit Tumorzellen, um die Tumorprogression, Angiogenese, Tumorzellverbreitung und Metastasierung zu fördern. Multizelluläre Wechselwirkungen in der Mikroumgebung des Tumors können zu vorübergehenden Ereignissen führen, einschließlich der gerichteten Motilität der Tumorzellen und der Gefäßpermeabilität. Bei der Quantifizierung der vaskulären Permeabilität von Tumoren wurden häufig Endpunktexperimente verwendet, um die Extravasation von Gefäßfarbstoffen zu messen. Aufgrund der transienten Natur multizellulärer Wechselwirkungen und der vaskulären Permeabilität kann die Kinetik dieser dynamischen Ereignisse jedoch nicht erkannt werden. Durch die Markierung von Zellen und Gefäßen mit injizierbaren Farbstoffen oder fluoreszierenden Proteinen hat die hochauflösende Intravitalmikroskopie im Zeitraffer die direkte Echtzeit-Visualisierung von vorübergehenden Ereignissen in der Tumormikroumgebung ermöglicht. Hier beschreiben wir eine Methode zur Verwendung von Multiphotonenmikroskopie zur Durchführung einer erweiterten intravitalen Bildgebung in lebenden Mäusen, um die multizelluläre Dynamik in der Tumormikroumgebung direkt sichtbar zu machen. Diese Methode beschreibt zelluläre Markierungsstrategien, die chirurgische Präparation eines Brusthautlappens, die Verabreichung von injizierbaren Farbstoffen oder Proteinen mittels Schwanzvenenkatheter und die Aufnahme von Zeitrafferbildern. Die mit dieser Methode erhaltenen Zeitraffersequenzen erleichtern die Visualisierung und Quantifizierung der Kinetik zellulärer Ereignisse der Motilität und Gefäßpermeabilität in der Tumormikroumgebung.

Einleitung

Verbreitung von Tumorzellen von der primären Mammatumor wurde nicht nur Tumorzellen gezeigt einzubeziehen, aber Host stromalen Zellen, einschließlich Makrophagen und Endothelzellen. Darüber hinaus ist Tumorgefäße mit einer erhöhten Permeabilität 1 abnormal. Somit bestimmen, wie Tumorzellen, Makrophagen und endothelialen Zellen in Wechselwirkung treten Gefäßpermeabilität und Tumorzell intravasation in dem primären Tumor-Mikroumgebung zu vermitteln, ist wichtig für das Verständnis der Metastasierung. die Kinetik der vaskulären Permeabilität, Tumorzelle intravasation und dem darunterliegenden Signalisierungsmechanismus von mehrzelligen Interaktionen im Tumorm....

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Protokoll

Alle beschriebenen Verfahren müssen mit den Richtlinien und Vorschriften für den Einsatz von Wirbeltieren, einschließlich der vorherigen Zustimmung des Albert Einstein College of Medicine Institutional Animal Care und Use Committee entsprechend durchgeführt werden.

1. Erstellen von fluoreszenzmarkierten Tumoren und Tumor-assoziierten Makrophagen

  1. Generieren Sie fluoreszenzmarkierten Tumorzellen durch die spontane, autochthonen, gentechnisch veränderte Maus Brustkrebsmodell Kreuzung , wo die Maus - Mammatumorvirus long terminal repeat den Polyoma Mitte - T - Antigen (MMTV-PyMT) mit transgenen Mäusen mit fluoreszierenden Reporter - Laufwerke [dh

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Ergebnisse

Erweiterte Zeitraffer-Mikroskopie ermöglicht einzelne intravital Zellauflösende Bildgebung von mehrzelligen Prozesse im Tumormikromilieu. Durch fluoreszenz Markierung von Tumorzellen, Makrophagen, den vaskulären Raum und Visualisieren des Kollagenfasernetzwerk der zweiten Harmonischen Erzeugungssignal, mehrere Kompartimente in der Tumor-Mikroumgebung verwendet werden gleichzeitig während der Bildgebung verfolgt. Tumorzellen mit fluoreszierenden Proteinen markiert können in transgenen Mäu.......

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Diskussion

Zelluläre Interaktionen, die sich spontan in der Tumor-Mikroumgebung auftreten können, auf Veränderungen in der Tumorzellbeweglichkeit und intravasation führen. Hochauflösende intravital Bildgebung von lebenden Tumorgewebe ermöglicht die Visualisierung von mehrzelligen Dynamik , die hochtransienten 10,13,24 sein kann. End-Punkt in - vivo - Tests oder Zeitraffer-Bilder mit diskreten Zeitpunkten erworben wesentlichen Informationen über die molekularen Mechanismen von Prozessen in der Tumor - M.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts zu offenbaren.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde durch das Department of Defense Breast Cancer Research Program unter Verleihungsnummer (ASH, W81XWH-13-1-0010), NIH CA100324, PPG CA100324 und dem Integrated Imaging-Programm unterstützt.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
155 kDa Dextran-Tetramethylrhodamin-IsothiocyanatSigma AldrichT1287rekonstituiert bei 20 mg/ml in 1x PBS
70 kDa Dextran-Texas RedLife TechnologiesD-1830rekonstituiert bei 10 mg/ml in 1x PBS
10 kDa Dextran-Fluorescein-IsothyocyanatSigma AldrichFD10Srekonstituiert bei 20 mg/ml in 1x PBS
Qdot 705 ITK Amino (PEG) Quantum DotsLeben TechnologienQ21561MPVerwässerung 25 μ l in 175 μ l von 1x PBS zur Injektion
MMTV-PyMT MäuseJackson Laboratory2374
Csf1r-ECFP Mäuse (Csf1r-Gal4/VP16,UAS-ECFP)Jackson Laboratory26051
Csf1r-EGFP MäuseJackson Laboratory18549
1x PBSLife Technologies
Isoethesia (Isofluran)Henry Schein Animal Health50033250 ml
OxygenAirTech
1 ml Spritze, Tuberkulin-AufsteckspitzeBD309659
30 G x 1 (0,3 mm x 25  mm) NadelBD305128
Mikro-Medizinschlauch aus Polyethylen Scientific Commodities IncBB31695-PE/1Innendurchmesser 0,28 mm x 0,64 mm Außendurchmesser
Mikroskop-DeckglasCorning2980-225Dicke 1,5, 22 x 50  mm
PhysioSuite MouseSTAT Pulsoximeter, Software und SensorenKent Scientific
LaborbandFisher Scientific159015R
WeichgummiauflageMcMaster-Carr8514K62Ultraweiche Polyurethanfolie, 3/16" Dicke, 12" x 12", 40 Oo Durometer, glatte Rückseite
HartgummiauflageMcMaster-Carr8568K615Hochfeste Neopren-Gummiplatte 1/4" dick, 12" x 12", 50  Ein Durometer-Mikroskop
OlympusDas Mikroskop ist ein speziell angefertigtes Zwei-Laser-Multiphotonenmikroskop, das auf einem Olympus IX-71 Stativ basiert und ein 20X 1,05NA Objektiv verwendet.
7er LochsatzMcMaster-Carr3429A121/4" auf 1" Lochdurchmesser, für Hammerlocher

Referenzen

  1. Gerlowski, L. E., Jain, R. K. Microvascular permeability of normal and neoplastic tissues. Microvasc Res. 31 (3), 288-305 (1986).
  2. Wang, H. -L., Lai, T. W. Optimization of Evans blue quantitation in limited rat tissue samples. Sci Rep. 4, (2014).
  3. Dvorak, ....

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Nachdrucke und Genehmigungen

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