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Methodenartikel

Chromatin Immunopräzipitation (ChIP) Protokoll für Low-Fülle embryonalen Proben

15.8K Aufrufe

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DOI:

10.3791/56186

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29. August 2017

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Hier beschreiben wir eine Chromatin Immunopräzipitation (ChIP) und ChIP-Seq Bibliothek Vorbereitung Protokoll zum globalen epigenomischen Profile aus Low-Fülle Huhn embryonalen Proben zu generieren.

Zusammenfassung

Chromatin Immunopräzipitation (ChIP) ist eine weit verbreitete Technik zur Kartierung der Lokalisierung von posttranslational modifizierte Histone, Histon-Varianten, Transkriptionsfaktoren oder Chromatin-modifizierende Enzyme, die an einen bestimmten Ort oder auf einer genomweiten Skala. Die Kombination von ChIP-Assays mit Next Generation Sequencing (z.B. ChIP-Seq) ist ein leistungsfähiger Ansatz weltweit genregulatorischer Netzwerke aufzudecken und die funktionale Anmerkung von Genomen, insbesondere von nicht-kodierenden regulatorischen Sequenzen zu verbessern. ChIP-Protokolle erfordern normalerweise große Mengen von Zellmaterial, damit die Anwendbarkeit dieser Methode zu untersuchen, seltene Zelltypen oder kleine Gewebebiopsien entgegensteht. Um die ChIP-Assay kompatibel mit der Menge des biologischen Materials vornehmen, die in der Regel in Vivo in der frühen Embryogenese vertebrate gewonnen werden können, beschreiben wir hier eine vereinfachte ChIP-Protokoll, in dem die Anzahl der Schritte erforderlich, um abzuschließen, die Assay wurden reduziert, um die Probenverlust zu minimieren. Dieses ChIP-Protokoll wird erfolgreich eingesetzt, um verschiedene Histon-Modifikationen in verschiedenen embryonalen und adulten Maus Geweben mit niedrigen bis mittleren Zellzahlen (5 x 104 - 5 x 105 Zellen) zu untersuchen. Wichtig ist, dieses Protokolls ist kompatibel mit ChIP-Seq-Technologie mit Standardbibliothek Zubereitungsmethoden, wodurch globale epigenomischen-Karten von hochaktuellen embryonalen Gewebe.

Einleitung

Post-translationalen Modifikationen der Histone sind verschiedene Chromatin-abhängige Prozesse, einschließlich Transkription, Replikation und DNA-Reparatur1,2,3direkt beteiligt. Darüber hinaus verschiedene Histon Änderungen zeigen positive (z. B. H3K4me3 und H3K27ac) oder negativ (z. B. H3K9me3 und H3K27me3) Korrelationen mit Genexpression und kann im großen und ganzen definiert als aktivierende oder repressive Histon markiert, bzw.2,3. Infolgedessen sind globale Histon Änderung Karten, auch bezeichn....

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Protokoll

nach den Richtlinien der deutschen Tierpflege, keine institutionelle Tier Pflege und Nutzung Committee (IACUC) Zulassung war notwendig, um das Huhn Embryo Experimente durchführen. Nach den lokalen Richtlinien genehmigungspflichtig nur Experimente mit HH44 (18 Tage) Hühnerembryos und ältere IACUC. In dieser Studie verwendeten Embryonen waren jedoch alle in früheren Stadien der embryonalen Entwicklung (d. h. HH19 (72 h)).

Hinweis: der Zweck dieses Protokolls ist eine detaillierte Beschreibung des ChIP-Tests liefern, so dass es mit qPCR oder Next Generation Sequencing (z.B. ChIP-Seq) zu untersuchen, Histon Änderungen effekt....

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Ergebnisse

Um die Leistung unserer ChIP-Protokoll zu veranschaulichen, haben wir ChIP-Seq-Experimente mit gepoolten SNT Abschnitte von HH19 Hühnerembryos, maxillaris Protuberanzen HH22 Embryonen, und Bühne-HH3 Hühnerembryos zu untersuchen, die verbindliche Profile von Huhn verschiedenen Histon-Modifikationen (z. B. H3K4me2, H3K27ac, H3K4me3 und H3K27me3). Das gewonnene ChIP DNAs waren wurde die Beschallung Effizienz durch Agarose-Gelelektrophorese der entsprechenden Eingabe DNAs (

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Diskussion

Epigenomischen Profilierung der Histon-Modifikation mit ChIP-Seq kann verwendet werden, zur Verbesserung der funktionellen Annotations vertebrate Genom in verschiedenen zellulären Kontexten4,5,18. Diese epigenomischen-Profile eingesetzt werden, unter anderem um zu identifizieren, Enhancer-Elemente, um die rechtliche Definition des Enhancer (d. h. aktiv, grundiert, oder bereit) und großen Zelle Identität Regulierungsbehö.......

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Offenlegungen

Die Autoren müssen keine finanzielle Interessenkonflikte offen gelegt werden.

Danksagungen

Die Autoren danken Jan Appel für seine hervorragende technische Unterstützung bei der Schaffung dieses Protokolls. Die Arbeit im Labor Rada-Iglesias stützt sich auf CMMC intramuralen Finanzierung, DFG Research Grants (RA 2547/1-1, RA 2547/2-1 und TE 1007/3-1), Gruppe der UoC fortgeschrittene Forscher Grant und CECAD Grant.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
ReagenzBSA-Pulver
Carl Roth3737.3
Phosphat-Kochsalzpuffer (PBS)Sigma AldrichD8537
Tris-HCL pH 8.0Sigma AldrichT1503
NaClCarl Roth3957.2
EDTACarl Roth8043.2
EGTACarl Roth3054.2
Na-DesoxycholatSigma AldrichD6750-24
N-LauroylsarcosinSigma Aldrich61743-25G
HepesApplichemA3724,0250
LiClCarl Roth3739.2
NP-40Sigma AldrichI3021-100ml
SDSCarl Roth1833
Protein G/magnetische KügelchenInvitrogen1004D
37% FormaldehydSigma Aldrich252549-1L
Glycin
RNasePeqlab12-RA-03
Proteinase KSigma Aldrich46,35 E
Na-ButyratSigma Aldrich
Proteinase-HemmerRoche5892791001
SYBRgreen Mixbiozym617004
dH2OSigma AldrichW4502
1 Kb LeiterThermofisherSM1333
Orange GSigma Alrich03756-25
AgaroseInvitrogen16500-500
0,25% Trypsin-EDTA (1x)Gibco25200-072
Octylphenolethoxylat (Triton x 100)Roth3051.4
DMEM (Dulbecco&akut; s Modified Eagle Medium)Gibco31331-028
Gel-Ladespitzen MultiflexA.HartensteinGS21
qPCR PlattenSarstedt721.985.202
384 wellSarstedt721.985.202
1,5 mL RöhrchenSarstedt72.706
100 - 1.000 µ L FilterspitzenSarstedt70,762,211
2 - 20 µ L FilterspitzenSarstedt70,760,213
2 - 200 µ L FilterspitzenSarstedt70,760,211
0,5 - 10 µ L FilterspitzenSarstedt701,116,210
H3K27me3 AntikörperActive Motif39155
H3K27ac AntikörperActive Motif39133
H3K4me3 AntikörperActive Motif39159
H3K4me2 AntikörperActive Motif39141
End Repair MixIlluminaFC-121-4001
Paramagnetische BeadsBeckman CoulterA63881
ResuspensionspufferIlluminaFC-121-4001
A-Tailing MixIlluminaFC-121-4001
Ligation MixIlluminaFC-121-4001
RNA Adapter IndexesIlluminaRS-122-2101
Stop LigationBuffer IlluminaFC-121-4001
PCR-Primer-CocktailIlluminaFC-121-4001
Erweiterter PCR-MixIlluminaFC-121-4001
Genomische DNA-LeiterAgilent5067-5582
ElutionspufferAgilent19086
ProbenpufferAgilent5067-5582
BibliotheksquantifizierungskitKapa BiosystemsKK4835 – 07960204001
Fruchtbare HühnereierLSL Rhein MainKN: 15968
Nadel (Neoject)A.Hartenstein10001
Spritze (Ecoject 10 mL)Dispomed witt oHG21010<
strong>NameUnternehmen<strong>KatalognummerKommentare
Ausrüstung
ZentrifugeHermleZ 216 MK
ThermoshakerITABISMKR13
SonicatorActive MotiveEpiShear Sonde Sonicator
SonicatorDiagenodeBioruptor Plus
RotatorStuartSB3
Variables Volumen (5 – 1.000 μ L) PipettenEppendorfN/A
TimerSigmaN/A
MagnethalterThermo FisherDynaMag-2 12321D
TischspinnerHeathrow ScientificSprossenmischer
LMSVTX 3000L
Real-Time PCR CyclerRocheLight Cycler; Serial Nr.5662
PCR CyclerApplied BiosystemsGene Amp PCR System 9700
DNA- und RNA-QualitätskontrollsystemAgilentAgilent 4200 TapeStation System
PinzetteDumont5-Inox-H
Perforierter LöffelWorld Präzisionsinstrumente501997
SLB2659V: , ,

Referenzen

  1. Jenuwein, T., Allis, C. D. Translating the histone code. Science. 293 (5532), 1074-1080 (2001).
  2. Kouzarides, T. Chromatin modifications and their function. Cell. 128 (4), 693-705 (2007).
  3. Wang, Z., Schones, D. E., Zhao, K.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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