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Methodenartikel

Effiziente Erzeugung und Bearbeitung von Feeder-freie IPSCs aus menschlichen Zellen der Bauchspeicheldrüse mit dem CRISPR-Cas9-System

9.9K Aufrufe

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DOI:

10.3791/56260

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8. November 2017

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Dieses Protokoll beschreibt im Detail die Generation der Fußabdruck-freie induzierten pluripotenten Stammzellen (iPSCs) aus menschlichen Zellen der Bauchspeicheldrüse in den Feeder-freien Bedingungen, gefolgt von Bearbeitung mit CRISPR/Cas9 Ribonucleoproteins und Charakterisierung der geänderten einzellige Klone.

Zusammenfassung

Embryonalen und induzierte pluripotente Stammzellen können selbst zu erneuern und in mehreren Zelltypen des Körpers differenzieren. Die pluripotenten Zellen sind somit für die Forschung in der regenerativen Medizin begehrt und werden derzeit in klinischen Studien für Augenerkrankungen, Diabetes, Herzkrankheiten und anderen Erkrankungen. Das Potential, sich in spezialisierte Zelltypen, gekoppelt mit der jüngsten Fortschritte im Genom Bearbeitung Technologien einschließlich der CRISPR/Cas-System differenzieren haben zusätzliche Möglichkeiten für die Anpassung des Genoms des iPSC für die verschiedensten Anwendungen zur Verfügung gestellt einschließlich der Krankheit Modellierung, Gentherapie, und Vorspannen Wege der Differenzierung, um nur einige zu nennen. Unter den verfügbaren Bearbeitungen Technologien hat CRISPR/Cas9 von Streptococcus Pyogenes als ein Werkzeug der Wahl für die standortspezifische Bearbeitung des eukaryotischen Genoms entstanden. Das CRISPR sind leicht zugänglich, kostengünstig und höchst effizient in technische gezielte Bearbeitungen. Das System benötigt einen Cas9-Nuklease und ein Führer-Sequenz (20-Mer) spezifisch für die genomische Ziel anschlagenden ein 3-Nukleotid "NGG" Protospacer-neben-Motiv (PAM) für die Ausrichtung der Cas9 auf die gewünschte genomischen Locus, neben einem universellen Cas9 Bindung Tracer RNA ( zusammengerufen einzelne Führer RNS oder SgRNA). Hier präsentieren wir Ihnen eine Schritt-für-Schritt-Protokoll für die effiziente Erzeugung von Feeder-unabhängig und frei von Fußabdruck iPSC und beschreiben Methoden für die Genom-Bearbeitung der iPSC mit Cas9 Ribonucleoprotein (RNP) komplexe. Das Genom Bearbeitung Protokoll ist effektiv und kann leicht durch Pre-Komplexbildner SgRNAs für mehr als ein Ziel mit dem Cas9 Protein und gleichzeitig in die Zellen liefern gemultiplext werden. Schließlich beschreiben wir einen vereinfachten Ansatz zur Identifizierung und Charakterisierung von iPSCs mit gewünschten Bearbeitungen. Zusammengenommen dürften die skizzierten Strategien zur Erzeugung und Bearbeitung von iPSC für vielfältige Anwendungen zu optimieren.

Einleitung

Die Neuprogrammierung der menschlichen Körperzellen zu pluripotenten Zustand durch Überexpression der Neuprogrammierung Faktoren hat Stammzellenforschung mit Anwendungen in der Krankheit Modellierung, regenerative Medizin und Arzneimittelentwicklung revolutioniert. Mehrere nicht-viralen Neuprogrammierung Methoden sind lieferbar Umprogrammierung Faktoren und iPSCs zu generieren, aber der Prozess ist Arbeit intensiv und nicht sehr effizient1. Die virale Methoden sind zwar effizienter, mit Problemen der Virus Integration und Tumorigenität2,3,4. In diesem ....

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Protokoll

1. Umprogrammierung Protokoll

  1. Generation von menschlichen iPSC aus primären menschlichen pankreatischen Zellen
    1. Mantel, ein 6-Well-Platte mit 1,5 mg/mL kalte Kollagen und lassen Sie es bei 37 ° C für 1 h Gel,
    2. Platte frühe Passage menschliche primäre Zellen der Bauchspeicheldrüse in Prigrow III Medium (~ 1-1,5 × 10 5 Zellen) auf einer Kollagen 6-Well-Platte am Tag-2 beschichtet bis etwa 2,5 × 10 5 Zellen oder mindestens 60 % zu erreichen confluency pro auch am Tag der Transduktion (Tag 0). Für die erste Studie Platte mindestens 2-3 Brunnen um einen Brunnen mit gewünschten Konfluenz am Tag 0 zu erhalten....

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Ergebnisse

In dieser Publikation haben wir eine einfache, aber effiziente Protokoll für die Generation der iPSC aus menschlichen Zellen der Bauchspeicheldrüse mit Integration oder Fußabdruck-kostenlose Sendai Virus Vektoren verfolgt. Abbildung 1A zeigt eine schematische Darstellung dieses Neuprogrammierung Protokolls. Die menschlichen Zellen der Bauchspeicheldrüsen waren kommerziell, erworben in Prigrow III Medium kultiviert und ausgestrahlt mit Sendai-Virus wie oben be.......

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Diskussion

Umprogrammierung der menschlichen Körperzellen zu iPSCs hat einen wichtigen Impuls für die Felder der Grundlagenbiologie Forschung, personalisierte Medizin, Krankheit Modellierung, Arzneimittelentwicklung und regenerative Medizin16zur Verfügung gestellt. Viele aktuelle und am weitesten verbreitete Methoden der menschlichen iPSC Generation erfordern den Einsatz von Virus mit dem Risiko einer Integration in das Wirtsgenom oder episomal Vektoren mit geringer Effizienz Umprogrammierung. Hier präsentie.......

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Offenlegungen

BT ist ein Gründungsmitglied der renovieren Biosciences Inc.

Danksagungen

Arbeit im Labor wurde unterstützt von Postdoc Fellowship-Stipendium an Dr. Anjali Nandal und explorative Grant aus Maryland Stem Cell Research Fund zu BT (TEDCO).

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Sendai virale Vektoren - CytoTune-iPS 2.0 KitInvitrogenA16517Auftauen auf Eis; S Nr.: 1
Trypsin EDTAGibco Life Tech25300-0540,05%, 100 ml; S Nr.: 2
Gesteinsinhibitor (Y-27632)MiliporeSCM075Verwendung 10 μ M; S Nr.: 3
DMEM/F-12 MediumInvitrogen11330-032S Nr.: 4
Serumersatz (KSR)Gibco10828028S Nr.: 5
DMEMInvitrogen119600691X; S Nr.: 6
Fötales RinderserumThermo ScientificSH30071.03Aliquot; S Nr.: 7
L-Glutamin (Glutamax, 100X), flüssigThermo Scientific350500611/100; S Nr.: 8
nicht-essentielle AminosäurenGibco11140-0501/100; S Nr.: 9
2-MercaptoethanolGibco2198502355 mM, 1/1.000; S Nr.: 10
Hausser HämazytometerHausser Scientific02-671-54S Nr.: 11
0,1% GelatinelösungSTEMCELL Technologies7903Inkubieren bei 37º C für 1 Stunde; S Nr.: 12
SSEA-4 AntikörperSantacruzsc-217041/100; S Nr.: 13
TRA-1-81Antikörper-Zell-Signalisierung4745S1/200; S Nr.: 14
OCT4 AntikörperSanta Cruzsc-52791/1.000; S Nr.: 15
Kollagen I, Rat TailLife TechnologiesA10483-01Kalt halten; S Nr.: 16
Alexa Fluor fluoreszierend 488/ 568 (Sekundärantikörper)InvitrogenA21202/A100421/2.000; S Nr.: 17
DPBSHycloneSH30028LS1X; S Nr.: 18
100-mm-GewebekulturschaleFalcon353003S Nr.: 20
96-Well-GewebekulturplatteFalcon353078S Nr.: 21
6-Well-GewebekulturplatteFalcon353046S Nr.: 22
Präparierzielfernrohr NikonSMZ745S Nr.: 23
ZupfhaubeNuAireNU-301S Nr.: 24
15  ml ZentrifugenröhrchenGreiner Bio-One188271S Nr.: 25
50  ml ZentrifugenröhrchenGreiner Bio-One227261S Nr.: 26
NatriumpyruvatInvitrogen11360S Nr.: 28
β-mercaptoethanolSigmaM7522S Nr.: 29
Prigrow III mediumABMTM003S Nr.: 31
Countess™ ZellzählerInvitrogenC10227S Nr.: 32
Faxitron RöntgensystemFaxitronCellRadS Nr.: 33
AccutaseInnovative cell TechnologiesAT-104S Nr.: 34
CollagenaseLife Technologies171040191mg/ml Lagerbestand; S Nr.: 35
DispaseSTEMCELL Technologies7923S Nr.: 36
hESC qualifiziertes MatrigelBD Biosciences354277Zum Verdünnen kaltes DMEM/F-12 verwenden; S Nr.: 37
bFGFR & D233-FBSchaft 10 μg/ml; S Nr.: 38
ParaformaldehydEMS157104% Lagerbestand an PBS; S Nr.: 39
TRA-1-60Santa Cruzsc-217051/100; S-Nr.: 40
NANOGReproCELLRCAB0004P-F1/100; S Nr.: 41
Tween 20SigmaP9416-100MLS Nr.: 42
Alkalisches Phosphatase-KitStemgent00-0055S Nr.: 43
Cas9-ProteinPNA BioCP01-50Auftauen und Aliquot; S Nr.: 44
Ziegen- oder EselserumSigmaD9663/G9023S Nr.: 45
Triton X-100SigmaX100-100MLS Nr.: 46
DAPIThermo ScientificD1306S Nr.: 47
TrisSigma9285-100MLS Nr.: 48
NaCLSigmaS7653-250GS Nr.: 49
EDTA SigmaBP2482-500S Nr: 50
T4 DNA-LigaseNEBM0202TS Nr.: 51
Mega Shortscript T7 KitThermo ScientificAM1354S Nr.: 52
Mega Clear KitThermo ScientificAM1908S Nr.: 53
SMC4BD Biosciences354357S Nr.: 54
FibronektinSTEMCELL Technologies7159S Nr.: 55
CloneJET KlonierungskitThermo ScientificK1232S Nr.: 56
FragmentanalysatorTMAdvanced AnalyticalS Nr.: 57
mTeSR1 Medium KitSTEMCELL Technologies5850Warm bis Raumtemperatur; S Nr.: 58
Gefriermedium mFreSR™STEMCELL Technologies5855S Nr.: 59
Gefriermedium CryoStor®STEMCELL Technologies7930S Nr.: 60
MEFsGlobalstemGSC-6301GS Nr.: 61
L-GlutaminInvitrogen25030081S Nr.: 62
Menschliche PankreaszellenABMT0159S Nr.: 63
STEMdiff™ Neuronales InduktionsmediumStemcell Technologies5835S Nr.: 64
RPMIThermofisher11875-093S Nr.: 65
2% B27-InsulinThermofisherA1895601S Nr.: 66
CHIR99021Stemcell Technologies72052S Nr.: 67
IWP4Stemcell Technologies72552S Nr.: 68
2% B27Thermofisher17504044S Nr.: 69
MCDB 131Life Technologies10372019Nr.: 70
NatriumbicarbonatSigma-AldrichS8761-100MLS Nr.: 71
GlukoseSigma-AldrichG8270-100GS Nr.: 72
BSAProliant68700S Nr.: 73
GDF8Pepro-Tech120-00S Nr.: 74
TUJ1 AntikörperEMD MiliporeAB9354S Nr.: 75
NKX2-5 AntikörperSanta CruzSc-14033S Nr.: 76
SOX17 AntikörperR & D systemsAF1924S Nr.: 77
PropidiumiodidThermo ScientificP3566S Nr.: 78
Amaxa 4D-Nukleofektor™LonzaAAF-1002S Nr.: 79
FACSAria II (Zellsortierer)BD biosciencesSORP UVS Nr.: 80

Referenzen

  1. Malik, N., Rao, M. S. A review of the methods for human iPSC derivation. Methods Mol. Biol. 997, 23-33 (2013).
  2. Yu, J., et al. Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells. Science. 318, 1917-1920 (2007).
  3. Takahashi, K., Yamanaka,....

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Nachdrucke und Genehmigungen

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