Dieses Proktokol zielt darauf ab, eine Methode für die in vitro und in vivo mitochondriale Ca2+ Bildgebung in Astrozyten und Neuronen bereitzustellen.
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Methodenartikel
Dieses Proktokol zielt darauf ab, eine Methode für die in vitro und in vivo mitochondriale Ca2+ Bildgebung in Astrozyten und Neuronen bereitzustellen.
MitochondrialesCa2+ spielt eine entscheidende Rolle bei der Kontrolle der zytosolischenCa2+-Pufferung, des Energiestoffwechsels und der zellulären Signaltransduktion. Die Überlastung des mitochondrialen Ca2+ trägt zu verschiedenen pathologischen Zuständen bei, einschließlich Neurodegeneration und apoptotischem Zelltod bei neurologischen Erkrankungen. Hier stellen wir einen zelltypspezifischen und auf Mitochondrien abzielenden molekularen Ansatz für die mitochondriale Ca2+ Bildgebung in Astrozyten und Neuronen in vitro und in vivovor. Wir konstruierten DNA-Plasmide, die für Mitochondrien kodieren, die auf genetisch kodierte Ca2+ Indikatoren (GECIs) GCaMP5G oder GCaMP6s (GCaMP5G/6s) mit astrozyten- und neuronenspezifischen Promotoren gfaABC1D und CaMKII und mitochondrien-Targeting-Sequenz (mito-) abzielen. Für die in vitro mitochondriale Ca2+ Bildgebung wurden die Plasmide in kultivierten Astrozyten und Neuronen transfiziert, um GCaMP5G/6s zu exprimieren. Für die in vivo mitochondriale Ca2+ Bildgebung wurden adeno-assoziierte virale Vektoren (AAVs) hergestellt und in das Gehirn der Maus injiziert, um GCaMP5G/6s in Mitochondrien in Astrozyten und Neuronen zu exprimieren. Unser Ansatz bietet ein nützliches Mittel, um die mitochondrialeCa2+-Dynamik in Astrozyten und Neuronen abzubilden, um die Beziehung zwischen zytosolischer und mitochondrialerCa2+-Signalgebung sowie Astrozyten-Neuronen-Interaktionen zu untersuchen.
Mitochondrien sind dynamische subzelluläre Organellen und gelten als Zellkraftwerke für die Energieproduktion. Auf der anderen Seite können MitochondrienCa2+ in die Matrix aufnehmen, als Reaktion auf lokale oder zytosolischeCa2+ Anstiege. Die mitochondrialeCa2+-Aufnahme beeinflusst die mitochondriale Funktion, einschließlich Stoffwechselprozesse wie Reaktionen im Tricarbonsäurezyklus (TCA) und oxidative Phosphorylierung, und reguliertCa2+-empfindlicheProteine unter physiologischenBedingungen 1,2,3,4
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Verfahren mit Tieren wurden vom Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) an der University of Missouri-Columbia genehmigt.
1. Aufbau von DNA-Plasmiden
HINWEIS: Für die In-vitro- und In-vivo-Bildgebung werden DNA-Plasmide konstruiert, die für GCaMP5G/6s mit Astrozyten- und Neuronen-spezifischen Promotoren und mitochondrialen Targeting-Sequenzen kodieren.
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Ziel dieser Studie war es, eine Methodik zur Abbildung mitochondrialer Ca2+-Signale unter Verwendung von GECIs in Astrozyten und Neuronen in vitro und in vivo bereitzustellen. Ergebnisse der in vitro und in vivo mitochondrialen Ca2+ Bildgebung werden hier vorgestellt.
In vitro mitochondriale Ca2+ Signalisierung in kultivierten Astrozyten und Neuronen
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In diesem Artikel stellen wir eine Methode und ein Protokoll zur Abbildung mitochondrialer Ca2+-Signale in Astrozyten und Neuronen zur Verfügung. Wir implementierten Mitochondria-Targeting- und zelltypspezifische Strategien, um GECI GCaMP5G/6s zu exprimieren. Um GCaMP5G/6s in Mitochondrien anzugreifen, haben wir eine Mitochondrien-Targeting-Sequenz in die Plasmide aufgenommen. Um GCaMP5G/6s in Astrozyten und Neuronen in vivo zu exprimieren,haben wir einen Astrozyten-spezifischen Promotor gfaABC1D und .......
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Die Autoren haben nichts preiszugeben.
Diese Arbeit wurde vom National Institute of Health unterstützt Das National Institute of Neurological Disorders and Stroke (NINDS) gewährt R01NS069726 und R01NS094539 an SD. Wir danken Erica DeMers für die Audioaufnahme.
....Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.
| Name | Unternehmen | Katalognummer | Kommentare |
|---|---|---|---|
| Künstliche Tränensalbe | Rugby | NDC-0536-6550-91 | 83% weißes Vaseline |
| Cyanoacrylat-Kleber | World Precision Instruments | 3M Vetbond Klebstoff | |
| Präparieren Stereomikroskop | Nikon | SMZ 2B | Chirurgie |
| Dumont Pinzette mit feiner Spitze | Fine Science Tools | 11255-20 | zum Entfernen von Dura |
| Glasabdeckfolien, 0,13-0,17 mm dick | Fisher Scientific | 12-542A | für kraniale Fensterabdeckung |
| Hochgeschwindigkeits-Mikrobohrer | Fine Science Tools | 18000-17 | mit Knochenpolierbohrer |
| Injektionsspritze | Hamilton | 2,5 ml | für die Virusinjektion |
| Ketamin | VEDCO | NDC-50989-996-06 | 100 mg/kg Körpergewicht |
| Agarose mit niedrigem Schmelzpunkt | Sigma-Aldrich | A9793 | Reduzierung von Bewegungsartefakten |
| Metallrahmen | Sonderanfertigung | siehe Abb. 1 | für den Anbau des Gehirns an den Mikroskoptisch |
| MicroSyringe Pump | Controller World Precision Instruments | UMP3 | Injektionsgeschwindigkeitsregler |
| Maus stereotaktisches Gerät | Stoelting | 51725 | zum Halten von Mäusen |
| Perfusionskammer | Warner Instruments | 64-0284 | |
| Persfusionssystem | ALA Scientific Instruments | ALA-VM8 | |
| Selbstregulierendes Heizkissen | Fine Science Tools | 21061 | zur Verhinderung von Unterkühlung von Mäusen |
| Sulforhodamin 101 | Invitrogen | S-359 | roter Fluoreszenzfarbstoff zur Markierung von Astrozyten |
| Chirurgische Schere, 12 cm | Fine Science Tools | 14002-12 | zum Sezieren |
| Trephine | Fine Science Tools | 18004-23 | zum Reinigen von Material |
| Xylazin | VEDCO | NDC-50989-234-11 | 10 mg/kg Körpergewicht |
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