减少伊曲康唑的浓度和持续时间是成功的治疗<em> Batrachochytrium壶菌</em>感染两栖动物
Summary
Batrachochytrium壶菌感染两栖动物可以使用缩小浓度（0.0025％）和伊曲康唑的持续时间较短（5分钟浴六天），比一般用被淘汰。采用这种改性的治疗方案更少的死亡率和较少副作用进行观察。
Abstract
两栖动物遇到任何脊椎动物类的最大跌幅和这些下降的主要原因是真菌病原体，Batrachochytrium壶菌（BD），从而导致疾病的壶菌病。圈养保证菌落受威胁的两栖动物物种的重要全球范围内，可为那些面临灭绝的关键威胁的唯一生命线。维持无病殖民地，是圈养管理者优先级，为所有物种和整个生命阶段还没有安全有效的治疗方法尚未确定。最广泛使用的化学治疗是伊曲康唑，尽管通常使用的剂量可能是有害的一些个体和物种。我们进行了临床治疗试验，以评估伊曲康唑的低，但更安全有效剂量是否能找到治愈波特感染。我们发现，从0.01-0.0025％，减少了治疗浓度，减少治疗时间从115分钟浴-6日，青蛙可以用较少的副作用，减少治疗相关死亡率治愈波特感染。
Introduction
两栖类动物正在经历的所有脊椎动物类群1的生物多样性的最大跌幅。壶菌病，引起壶真菌病原体Batrachochytrium壶菌（BD）一种皮肤疾病，是这些戏剧性的下滑2的主要原因之一波特是最糟糕的病原体上记录造成生物多样性丧失。它感染了600种两栖动物和有造成下跌超过300种，其中有多达200种已成为极度濒危或灭绝2,3。两栖动物壶菌是不特定于主机的，目前尚不清楚什么样的素质的主机允许波特感染进步导致严重的疾病。壶菌病引起的死亡通过破坏离子通道的皮肤，造成电解质损失和心脏衰竭4。此外， 屋宇署上清液（不含波特游动孢子），导致蝌蚪的免疫反应5 leadin克研究者认为波特产生的副产品6有毒。
由于许多物种正在迅速下降，俘虏保证殖民地和育种计划是重要的保护措施，并可能对某些物种的唯一生命线。建立和维持无病殖民地，是两栖动物管理设施是一个挑战。目前的化疗方法治疗波特感染，虽然有效，可能会损害正在接受治疗的动物，并没有单一的治疗方法一直是跨物种和两栖类7龄级成功。
对波特感染治疗几个临床试验已经完成7。治疗的三种最常用的方法有热疗法，氯霉素和伊曲康唑。热疗是，似乎有一些副作用，可以在多个生命阶段中使用的nonchemotherapeutic治疗选择，并是根儿盟友有效。在治疗试验中，查特菲尔德和Richards-Zawacki 8发现，治疗动物的96％被安置在30℃下10天之后清除了感染。虽然这次审判是不是100％成功的，它提供给别人评价热疗法为他们自己种的基准。热疗法，虽然有效的许多物种，是不切实际的，可以不保持在高温环境中长时间许多高山物种。氯霉素，抗菌，已经成功地用于治疗波特在许多物种中，并在体外抑制真菌的生长。作为抗菌，氯霉素不攻击真菌特别，但已经知道导致细胞凋亡在真核细胞9。据推测，氯霉素治疗引起细胞凋亡的皮肤，造成细胞内的孢子囊，但确切的作用机制尚不清楚。虽然没有临床试验已经进行，因此，剂量和治疗时间没有被评估，当前的治疗方案通常需要浸没为两至四个星期10,11，使得这种治疗不切实际的地面两栖动物。氯霉素也被限制在一些国家的兽医使用，因为人体暴露已经与再生障碍性贫血12一种罕见形式的关联。
伊曲康唑，唑类抗真菌，是目前最广泛地用于在圈养两栖动物治疗波特感染。最广泛使用的协议是入浴动物每天连续11天五分钟0.01％伊曲康唑溶液。这个协议是来自用于哺乳动物施用的标准，并且，同时有效两栖类，它不基于在两栖动物11,13的临床试验。这个协议可以导致某些物种的负面影响，特别是在属蛙和蝌蚪和最近metamorphs 11。蝌蚪治疗已经成功使用伊曲康唑的浓度低得多（0.0005％），但用色素脱失14相关联。这同样浓度造模上最近metamorphs，结果为不成功在治疗感染15。因为有一个负面影响与伊曲康唑治疗的风险，一些从业者已经使用一半的通常浓度（0.005％），连续11天，发现这是成功的固化波特感染16。
本研究是使用伊曲康唑治疗波特感染15临床治疗试验的总结。该协议描述，试图找到最低剂量和治疗时间，既安全，有效的治疗波特感染动物与伊曲康唑。在这项研究中使用的动物是最近的墨西哥湾沿岸蟾蜍metamorphs，Incilius nebulifer。
Protocol
Representative Results
Discussion
使用此协议，我们能够安全，有效地降低两栖动物伊曲康唑治疗波特的治疗剂量和时间。最低治疗剂量和时间（六天0.0025％）是一次成功的治疗亚临床感染一nebulifer。这两个较低的剂量和治疗时间的效果表明，有必要为临床治疗试验的波特感染的治疗，因为目前用于两栖类的所有物种和年龄阶层没有安全有效的治疗方法。
死亡由伊曲康唑治疗造成的原因?…
Divulgaciones
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
我要感谢CL理查兹-Zawacki帮助概念化的实验设计和协助材料，A. Pessier帮助制定治疗方案和尸检分析，MWH查特菲尔德，MJ Robak，K.塔斯克和D Lenger在帮助实验室和支持和M.麦克法登和P.哈洛在Taronga动物园的拍摄过程中使用其空间。该项目是通过授予洛杉矶Brannelly路易斯安那州环境教育委员会授予和生命技术部分资金由野生动物和渔业的路易斯安那部门。
Materials
| 0.1% Aqueous Itraconazole, Sporonox | Janssen Pharmaceutica Inc. | |
| NaCl | Fisher Scientific | S640-500 |
| KCl | Fisher Scientific | BP366-1 |
| CaCl2 | Fisher Scientific | BP510-100 |
| NaHCO3 | Fisher Scientific | BP328-500 |
| Sterile cotton swabs | Medical and Wire Equipment | MW113 |
| 1.5 ml micro tubes | Sarstedt | 73.703.217 |
| Qiagen DNEasy Blood and Tissue Kit | Qiagen | 69581 |
| 7500 Real-time PCR | Applied Biosystems | 4351104 |
| VIC IPC | Applied Biosystems | 4308323 |
| BSA | Applied Biosystems | AM2618 |
| Agar | Invitrogen | 30391023 |
| Tryptone | Invitrogen | Q10029 |
| Penicillin-streptomycin | Invitrogen | 15070-063 |
| Petri Dish | Sigma Aldrich | CLS430589 |
Referencias
- Stuart, S. N., et al. Status and trends of amphibian declines and extinctions worldwide. Science. 306 (5702), 1783-1786 (2004).
- Skerratt, L. F., et al. Spread of chytridiomycosis has caused the rapid global decline and extinction of frogs. EcoHealth. 4, 125-134 (2007).
- Wake, D. B., Vredenburg, V. T. Colloquium paper: are we in the midst of the sixth mass extinction? A view from the world of amphibians. PNAS. 105, 11466-11473 (2008).
- Voyles, J., et al. Electrolyte depletion and osmotic imbalance in amphibians with chytridiomycosis. Dis. Aquat. Org. 77 (2), 113-118 (2007).
- Ramsey, J. P. Amphibian immune defenses against Batrachochytrium dendrobatidis: A war between host and pathogen. , (2011).
- McMahon, T. A., et al. Chytrid fungus Batrachochytrium dendrobatidis has nonamphibian hosts and releases chemicals that cause pathology in the absence of infection. PNAS. 110 (1), 210-215 (2013).
- Berger, L., Speare, R., Pessier, A., Voyles, J., Skerratt, L. F. Treatment of chytridiomycosis requires urgent clinical trials. Dis. Aquat. Org. 92, 165-174 (2010).
- Chatfield, M. W. H., Richards-Zawacki, C. L. Elevated temperature as a treatment for Batrachochytrium dendrobatidis infection in captive frogs. Dis. Aquat. Org. 94 (3), 235-238 (2011).
- Karbowski, M., et al. Free radical-induced megamitochondria formation and apoptosis. Free Rad. Biol. Med. 26 (98), 396-409 (1999).
- Bishop, P. J., et al. Elimination of the amphibian chytrid fungus Batrachochytrium dendrobatidis by Archey’s frog Leiopelma archeyi. Dis. Aquat. Org. 84 (1), 9-15 (2009).
- Pessier, A. P., Mendelson, J. . A Manual For Control of Infectious Diseases in Amphibian Survival Assurance Colonies and Reintroduction Programs. , (2009).
- Page, S. W. Chloramphenicol 1. Hazards of use and the current regulatory environment. Aus. Vet. J. 68 (1), 1-2 (1991).
- Yoon, H. -. J., Seo, M. H., Kim, J. -. K. . Pharmaceutical formulations for itraconazole. , (2005).
- Garner, T. W. J., Garcia, G., Carroll, B., Fisher, M. C. Using itraconazole to clean Batrachochytrium dendrobatidis infection, and subsequent depigmentation of Alytes muletensis tadpoles. Dis. Aquat. Org. 83, 257-260 (2009).
- Brannelly, L. A., Richards-Zawacki, C. L., Pessier, A. P. Clinical trials with itraconazole as a treatment for chytrid fungal infections in amphibians. Dis. Aquat. Org. 101 (2), 95-104 (2012).
- Jones, M. E. B., Paddock, D., Bender, L., Allen, J. L., Schrenzel, M. S., Pessier, A. P. Treatment of chytridiomycosis with reduced-dose itraconazole. Dis. Aquat. Org. 99 (3), 243-249 (2012).
- Boyle, D. G., Boyle, D. B., Olsen, V., Morgan, J. A. T., Hyatt, A. D. Rapid quantitative detection of chytridiomycosis (Batrachochytrium dendrobatidis) in amphibian samples using real-time Taqman PCR assay. Dis. Aquat. Org. 60 (2), 141-148 (2004).
- Martel, A., et al. Developing a safe antifungal treatment protocol to eliminate Batrachochytrium dendrobatidis from amphibians. Med. Mycol. 49 (2), 143-149 (2011).
- Bowerman, J., Rombough, C., Weinstock, S. R., Padgett-Flohr, G. E. Terbinafine hydrochloride in ethanol effectively clears Batrachochytrium dendrobatidis in amphibians. J. Herpetol. Med. Surg. 20 (1), 24-29 (2010).
- Young, S., Speare, R., Berger, L., Skerratt, L. F. Chloramphenicol with fluid and electrolyte therapy cures terminally ill green tree frogs (Litoria caerulea) with chytridiomycosis. J. Zoo Wildlife Med. 43 (2), 330-337 (2012).
