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Artículo de método

Aislamiento de mitocondrias a partir de cantidades mínimas de ratón músculo esquelético para mediciones de alto rendimiento de microplacas Respiratorias

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DOI:

10.3791/53217

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13 de noviembre de 2015

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En este artículo

Resumen

Aquí, presentamos una modificación de un método previamente reportado que permite el aislamiento de mitocondrias purificadas y de alta calidad a partir de cantidades más pequeñas de músculo esquelético de ratón. Este procedimiento da como resultado mitocondrias altamente acopladas que respiran con alta función durante los ensayos respirometirc basados en microplacas.

Resumen

Mitocondrias del músculo esquelético disfuncionales juegan un papel en el metabolismo alterado observado con el envejecimiento, la obesidad y la diabetes tipo II. Ensayos respirométricos mitocondrial de preparaciones mitocondriales aislados permiten la evaluación de la función mitocondrial, así como la determinación del mecanismo (s) de acción de los fármacos y las proteínas que modulan el metabolismo. Procedimientos de aislamiento actuales requieren a menudo grandes cantidades de tejido para producir las mitocondrias de alta calidad necesarias para los ensayos de respirométricos. Los métodos presentados en este documento describen cómo de alta calidad mitocondrias purificadas (~ 450 g) se puede aislar a partir de cantidades mínimas (~ de 75-100 mg) de músculo esquelético de ratón para su uso en mediciones respiratorias de alto rendimiento. Se determinó que nuestro método de aislamiento produce 92,5 ± 2,0% mitocondrias intactas midiendo la actividad de la citrato sintasa espectrofotometría. Además, el análisis Western blot en mitocondrias aisladas resultó en la expresión débil del cytosoproteína lic, GAPDH, y la expresión robusta de la proteína mitocondrial, COXIV. La ausencia de una banda de GAPDH prominente en las mitocondrias aisladas es indicativo de poca contaminación de fuentes no mitocondriales durante el procedimiento de aislamiento. Lo más importante, la medición de la tasa de consumo de O 2 con tecnología basada en micro-placa y la determinación de la relación del control respiratorio (RCR) para los ensayos de respirométricos acoplado muestra altamente acoplado (RCR;> 6 para todos los ensayos) y las mitocondrias funcionales. En conclusión, la adición de una etapa de picar carne separada y reduciendo significativamente impulsado por motor de velocidad homogeneización de un método reportado previamente ha permitido el aislamiento de alta calidad y mitocondrias purificada a partir de cantidades más pequeñas de ratón músculo esquelético que da como resultado en las mitocondrias altamente acoplados que respiran con alta función durante ensayos respirometirc basado en una microplaca.

Introducción

La función principal de las mitocondrias es producir ATP a partir de la fosforilación oxidativa. Sin embargo, las mitocondrias tienen muchas otras funciones celulares importantes, que incluyen, entre otras: la producción y desintoxicación de especies reactivas de oxígeno, la regulación del calcio citoplasmático y mitocondrial, el tráfico de orgánulos, la homeostasis iónica y la participación en la apoptosis1,2. Por lo tanto, no es de extrañar que las mitocondrias disfuncionales desempeñen un papel en muchas patologías patológicas, como el envejecimiento, las enfermedades neurodegenerativas, las enfermedades cardiovasculares, el cáncer, la obesidad y la diab....

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Protocolo

Los estudios en animales se realizaron bajo un protocolo aprobado por el Cuidado de Animales institucional y el empleo Comisión en el Instituto Politécnico de Virginia y la Universidad Estatal.

1. Configuración (Tiempo: ~ 45 min)

  1. Tiendas Descongele de 0,25% de tripsina, Aislamiento Buffer de mitocondrias (IBM) 1 y IBM2 en un baño de agua a 37 ° C.
  2. Enjuague la cristalería y los instrumentos de disección en etanol al 70%, seguido de agua de alta pureza.
  3. Preparar una solución de tripsina al 0,05% desde 0,25% de tripsina stock de diluir 1 parte de tripsina en 4 partes IBM1.
  4. Mezclar proteasa e inhibidor....

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Resultados

La actividad de la citrato sintasa sirve como medida para la integridad de la membrana desde la citrato sintasa se ​​encuentra en la membrana mitocondrial interna, y por lo tanto no debe estar presente en las suspensiones de las mitocondrias con membranas intactas. La figura 1 representa la actividad de la citrato sintasa en muestras no se sonicaron mitocondriales en comparación con sonicado muestras de la misma aislamiento. Sonicando los resultados mitocondrias en un aumento estadísticamente significat.......

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Discusión

Los métodos presentados en este documento proporcionan una descripción detallada de un procedimiento de aislamiento mitocondrial a partir de cantidades mínimas (~ de 75-100 mg) de músculo esquelético de ratón. Este procedimiento de aislamiento es capaz de producir de alto funcionamiento, las mitocondrias pura (~ 450 g) como lo demuestra O 2 tasas de consumo, valores RCR, máxima actividad de la citrato sintasa y de expresión de proteínas de inmunotransferencia. Es importante destacar que las mitocondrias aisla.......

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Divulgaciones

George Rogers es un empleado de Seahorse Bioscience que produce el instrumento para el que se modificó este protocolo.

Agradecimientos

El Instituto de Investigación de Ciencias de la Vida Fralin y el Núcleo de Fenotipado Metabólico de Virginia Tech apoyaron este trabajo.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Esencialmente grasoSigma AldrichA6003N/A
Libre de ácido- BSA
Tris/HClPromegaH5123N/A
KCLSigma AldrichP9541N/A
Tris BasePromegaH5135N/A
EDTASigma AldrichE6511N/A
EGTASigma AldrichE4378N/A
SacarosaSigma AldrichS7903N/A
D-ManitolSigma Aldrich63559N/A
Tripsina-EDTA (0,25%), rojo fenolThermo Scientific25200-056N/A
Cloruro de sodio
Cristales blancos o polvo cristalino
≥ 99.0 %
Fisher ScientificBP3581N/A
Dodecil sulfato de sodioSigma AldrichL3771 N/A
Desoxicolato de sodioSigma AldrichD6750 N/A
Éter de polioxietileno (12) nonilfenil, ramificadoSigma Aldrich238651N/A
Hojas de afeitar de un solo filoFisher Scientific12-640N/A
Falcon- 100 uM Coladores de células de nailonFisher Scientific352360N/A
Stop Proteasa & Cóctel de inhibidor de fosfato ThermoScientific1861284N/A
Tubos de microcentrífuga de 1,5 ml con tapón de roscaThermo Scientific3474N/A
Perlas de óxido de circonioFisher ScientificC9012112N/A
Anticuerpo GAPDH (1D4)Santa Cruz Biotechnologysc-59540N/A Anticuerpo
Anti-COXIVSeñalización Celular4844sCualquier proteína de la membrana interna mitocondrial será suficiente
Peroxidasa conjugada affinipure Burro, Anti Conejo IgG (H + L)Jackson ImmunoResearh711-035-152N/A
Peroxidasa conjugada affinipure Cabra, Anti Ratón IgG (H + L)Jackson ImmunoResearh115-001-003N/A
Triton-X100Sigma AldrichX100N/A
Pierce BCA Protein Kit  Thermo Scientific23225N/A
Ácido pirúvico, 98%Sigma Aldrich107360Almacenar en 4 & grados; C, pH a 7.4 con KOH antes de usar en el ensayo respirométrico
Ácido succínicoSigma AldrichS9512Almacene a temperatura ambiente, pH a 7.4 con KOH antes de usar en el ensayo respirométrico
L(-) Ácido málico, BioXtra, ≥ 95%Sigma AldrichM6413Almacenar a temperatura ambiente, a 7.4 con KOH antes de usar en el ensayo respirométrico
Ácido L-glutámicoSigma AldrichG1251Almacenar a temperatura ambiente, a 7.4 con KOH antes de usar en el ensayo respirométrico, a 7.4 con KOH antes de usar en el ensayo
Palmitoil Cloruro de L-carnitinaSigmaAldrich P1645Almacenar a -20 °C
Oligomicina A, ≥ 95% (HPLC)Sigma Aldrich75351Tienda a -20 ° C
Cianuro de carbonilo 4-(trifluorometoxi)Sigma AldrichC2920Almacenar en 2-8 ° C
fenilhidrazona
≥ 98% (TLC), polvo [FCCP]
Antimicina A de streptomyces sp.Tienda Sigma AldrichA8674a -20 ° C
Adenosina 5′-difosfato sal monopotásica deshidratada [ADP]Sigma AldrichA5285Almacenar en -20 ° C, hasta 7,4 con KOH antes de su uso en el ensayo
RotenonaSigma AldrichR8875Almacenar a temperatura ambiente
respirométrico respirométrico

Referencias

  1. Brand, M., Nicholls, D. Assessing mitochondrial dysfunction in cells. Biochem. J. 435, 297-312 (2011).
  2. Nicholls, D. G., Ferguson, S. Bioenergetics. , Academic Press. (2013).
  3. Nunnari, J., Suomalainen, A.

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