الخنزير كنموذج تدريبي للتعمير ميكروفاسكولار الرأس والعنق
Summary
وهنا يقدم بروتوكول لاستخدام رفرف مخرز شريان شرسوفي متفوقة خنزير كوحدة نمطية تعلم للتعمير ميكروفاسكولار الرأس والرقبة.
Abstract
النماذج الحية التي تشبه الحالات الجراحية من البشر هناك حاجة للتدريب مجاناً رفرف الحصاد وملامسة. لم تتوافر نماذج حيوانية لأغراض التدريب لمدة سنوات في العديد من المجالات الجراحية. كنا الأنثى (لأنها سهلة للتعامل مع الإجراء) يوركشاير الخنازير لتعمير الرأس والرقبة بحصاد مخرز شريان شرسوفي العميق أقل شأنا أو رفرف مخرز شريان شرسوفي متفوقة. تم إعداد الموقع ملامسة (عيب الجلد العنق أو عيب الجدار الرغامى) عبر تشريح الشريان السباتي المشترك وحبل الوريد الداخلي، في × 3.5 التي استخدمت التكبير العدسة اللاصقة لملامسة كما أننا نستخدم في الحالات البشرية في الحياة الحقيقية. هذا الإجراء يوضح طريقة تدريب جديدة باستخدام نموذج تعلم يمكن الاعتماد عليها، ويوفر تشريح مفصل في سيناريو حية. ركزنا على الوقت الاسكيمية، الحصاد، ملامسة السفينة، وتصميم رفرف لتناسب الموقع عيب. هذا النموذج ويحسن التعامل مع الأنسجة ومع استخدام الأدوات المناسبة يمكن أن تتكرر مرات عديدة حيث أن الجراح واثقة تماما قبل البدء عملية جراحية على البشر.
Introduction
إعادة البناء في أعقاب عملية جراحية للرأس والرقبة الأمراض الخبيثة إجراء صعبة المرتبطة باعتلال كبير. Microvascular رفرف مجاناً التعمير قد أنشئت أيضا كمنهج موحد لإعادة الإعمار لما يزيد على 20 سنة1،،من23. نقل رفرف مجاناً تلعب دوراً هاما في تحسين إدارة الرأس والعنق في مرضى السرطان وإصابات ما بعد الصدمة مما دفع حدود الاستئصال الجراحي للمرض خارج التقنيات السابقة، أدى إلى زيادة المريض نوعية الحياة، والبقاء على قيد الحياة أطول معدل1،،من23. اللوحات المختلفة لإعادة الإعمار تشمل التناوب، graft، والحرة اللوحات.
ووسعت دور اللوحات مجاناً في تعمير الرأس والرقبة. وهو رفرف الأكثر صعوبة للعمل مع، التي تتطلب المعالجة الدقيقة وغير المهرة. فشل رفرف حدث كارثية، مع اعتلال كبير4،5. وهكذا، مطلوب الوقت قدر كبير من التدريب لتطوير الدقة اللازمة لنتائج العمليات الجراحية الناجحة3،4،5،6،،من78، 9. يمكن التأثير على نتيجة للمرضى حاد منحنى التعلم المرتبطة بمثل هذه جراحة وتؤثر على معاملة إدارة3،4،5،،من67، 8،9. لتقليل وقت التدريب ومنحني التعلم لجراحي جديد، ونموذج تدريب المسبق الذي يحاكي البيولوجيا البشرية وتوفر شروط مشابهة الحقل الجراحي8.
والهدف من هذه الدراسة إظهار رؤية لحم الخنزير كوحدة تدريبية جيدة لإعادة ميكروفاسكولار الرأس والرقبة تشبه حالة الإنسان مع تحسين المهارات بطريقة نشطة.
حققت هذه الدراسة استخدام نموذج الخنزير لتكملة تدريب الزملاء الجدد في الرأس والرقبة ميكروفاسكولار إعادة إعمار لنقل رفرف مجاناً لتقديم فعالية من حيث التكلفة وأقل إرهاقاً للتدريب الميداني السريري مع موثوق بها مماثلة ميزات لإجراءات رفرف مجاناً. وقد استخدمت الخنازير للعديد من الدراسات والتدريس نماذج لإعادة البناء الجراحية المختلفة، مثل إعادة بناء الثدي؛ 5 ومع ذلك، لم يتم استخدام الخنازير لتعمير الرأس والرقبة ما عدا في دراستنا للتعمير الرغامى سبب تضيق الرغامى10.
بدأت الفكرة بعد بودين فريدريك7، الذي وصف رفرف مماثلة لإعادة بناء الثدي. والميزة الرئيسية لهذه الدراسة على وحدة أخرى من التدريب microvascular هو الوحدة النمطية ليفينينج النشطة مع نتيجة فورية حقيقية للإجراء.
Protocol
Representative Results
Discussion
الاعتلال كبيرة وعيوب يمكن أن تحدث في الرأس والرقبة مرضى الورم الخبيث أثناء إدارة العمليات الجراحية. وأصبح نقل الأنسجة الحرة microvascular الأساسية لإعادة الإعمار في معظم الحالات. استمرارية رفرف قضية حساسة، تتطلب الثبات، دقة التعامل مع بيديكلي والإحساس باللمس، وقدرة فيسوسباتيال، وتدفق المنطو?…
Divulgaciones
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
تمويل هذا العمل ويدعمه “برنامج بحوث العلوم الأساسية” عبر الوطنية بحوث مؤسسة من كوريا (جبهة الخلاص الوطني) تموله وزارة العلوم وتكنولوجيا المعلومات والاتصالات وتخطيط المستقبل (2015R1C1A1A01051907). وأيد هذا العمل أيضا “برنامج بحوث العلوم الأساسية” عبر الوطنية بحوث مؤسسة من كوريا (جبهة الخلاص الوطني) تموله وزارة العلوم وتكنولوجيا المعلومات والاتصالات وتخطيط المستقبل (جبهة الخلاص الوطني-2016M3A9E9941746).
Materials
| Pigs XP Bio, Seoul, South Korea | |||
| Surgical Hair Removal shaver | 3M | ||
| 22 gage catheter | B.BRAUN | ||
| syring with needle size 18 | Jung Rim Medical | ||
| Intramuscular alfaxan | Careside | 10ml/VAL | |
| Intramuscularxylazine | Bayer | ||
| Intramuscular azaperone | Sigma-aldrich | 34223 | |
| Intramuscular atropine | Daewon | 0.5mg/A | |
| Intramuscular cefazolin | Yuhan | 1g | |
| intravenous Ketorolac | Hana Pharm | 30mg | |
| Swine ansthesia mask | DRE | 1392 | |
| endotracheal cuff tube 6.5 mm | SMITH medical | 100/150/065 | |
| ansthesia Machine | Dräger | PRIMUS IE | |
| 2% lidocaine topical solution | Taejoon | ||
| vet ointment | Pfizer | terramycin |
|
| eye cover patch | Innomed | S-universal010S | |
| betadine solution 1%. | Korea Pharma | ||
| gauze 4*4 | First Medical | 22*30CM 320S | |
| blade No. 23 | Paragon | 23 | |
| lahey retractor | V.Mueller | SU3960 | |
| kelly tissue scissors | SOLCO | 05-1990 | |
| blade No. 11 | Paragon | 11 | |
| surgical marking pen | Aspen Surgical | Regular #2750 | |
| allis | V.Mueller | SU4055 | |
| tie suture | Covidein | non-needle | |
| 3.5× surgical loupe | zeiss | eyemag smart | |
| double clamp without frame | V.Mueller | CH7155 | |
| microscissors | AESCULAP | FD038R | |
| Ringer's lactate | Daehan | 500ml/1bag | |
| amoxicillin–clavulanate | Ilsung | 0.6g/V | |
| Meloxicam | Samil | 7.5mg | |
| propofol | Dong Kook | 120mg/V | |
| intravenous KCl solution | Daehan | 20ml/50P | |
| mosquito curved | SOLCO | 013-0111 | |
| mosquito straight | SOLCO | 05-1050 | |
| ethilone 10-0 suture | ethicone | 10/0W1756 | |
| Vicryl 3-0. | ethicone | 3/0W9890 | |
| buprenorphine | Hanlim | 0.3mg |
Referencias
- Chen, C. L., Zenga, J., Roland, L. T., Pipkorn, P. Complications of double free flap and free flap combined with locoregional flap in head and neck reconstruction: A systematic review. Head & Neck journal of the Science and Specialties of the Head and Neck. 40 (3), 632-646 (2018).
- Smith, R. K., Wykes, J., Martin, D. T., Niles, N. Perforator variability in the anterolateral thigh free flap: a systematic review. Surgical and Radiologic Anatomy. 39 (7), 779-789 (2017).
- Bauer, F., Koerdt, S., Hölzle, F., Mitchell, D. A., Wolff, K. D. Eight free flaps in 24 hours: a training concept for postgraduate teaching of how to raise microvascular free flaps. British Journal of Oral and Maxillofacial. 54 (1), 35-39 (2016).
- Schoeff, S., Hernandez, B., Robinson, D. J., Jameson, M. J., Shonka, D. C. Microvascular Anastomosis Simulation Using a Chicken Thigh Model: Interval Versus Massed Training. The Laryngoscope. 127 (11), 2490-2494 (2017).
- Bodin, F., Diana, M., Koutsomanis, A., Robert, E., Marescaux, J., Bruant-Rodier, C. Porcine model for free-flap breast reconstruction training. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 68 (10), 1402-1409 (2015).
- Rodriguez, J. R., Yañez, R., Cifuentes, I., Varas, J., Dagnino, B. Microsurgery Workout: A Novel Simulation Training Curriculum Based on Nonliving Models. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 138 (4), 739e-747e (2016).
- Carey, J. N., et al. Simulation of plastic surgery and microvascular procedures using perfused fresh human cadavers. Plastic and Reconstructive Surgery journal. 67 (2), e42-e48 (2014).
- Chan, W., Niranjan, N., Ramakrishnan, V. Structured assessment of microsurgery skills in the clinical setting. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 63 (8), 1329-1334 (2010).
- Matsumura, N. A newly designed training tool for microvascular anastomosis techniques: Microvascular Practice Card. Surgical Neurology Journal. 71 (5), 616-620 (2010).
- Kim, W. S., et al. Tracheal reconstruction with a free vascularized myofascial flap: preclinical investigation in a porcine model to human clinical application. Scientific Reports. 7 (1), 10022 (2017).
