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8.17:

Redémarrage de la fourche de réplication bloquée

JoVE Core
Cell Biology
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Restarting Stalled Replication Forks

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Tout en arrêtant une fourche de réplication, l’ADN polymérase arrête de synthétiser l’ADN naissant. Mais l’hélicase continue à détendre l’ADN double brin pour un court chemin avant de se dissocier. Ensuite, la protéine de réplication A, ou RPA, lie et protège cet excès d’ADN simple brin au niveau de la fourche bloquée.L’ADN simple brin codé par RPA recrute ensuite le complexe Rad9-Rad1-Hus1, ou 9-1-1, qui active à son tour la liaison d’ATR. La liaison d’ATR déclenche la phosphorylation de CHK1. Et CHK1, à son tour, phosphoryle la phosphatase Cdc25.La phosphorylation signifie que Cdc25 ne peut pas accepter d’autres phosphates à partir protéine Cdk1, régulateur du cycle cellulaire. Cdk1 reste donc inactif et le cycle cellulaire est mis en pause. Ensuite, avant le début de la réparation, une protéine de recombinaison, appelée Rad51, remplace la RPA sur le ADN simple brin.Ensuite, pour initier l’inversion de la fourche, Rad51 charge une enzyme, appelé SMARCAL1, sur l’ADN, qui agit comme une hélicase hybride pour déplacer et coller les deux brins nouvellement synthétisés ensemble et former une jonction à quatre voies qui ressemble à un pied de poulet. Ce processus est appelé régression de la fourche. Il y a deux façons de résoudre une régression de la fourche.Dans la première, BRCA2 stabilise le filament nucléaire Rad51 entre les orteils du pied de poulet et protège la fourche réaménagée contre la dégradation par les nucléases. Maintenant, le brin retardé naissant peut servir de matrice pour étendre le brin avancé, contournant ainsi les lésions sur le brin parental. Enfin, SMARCAL1 inverse la fourche de régression en hybridant les brins parentaux.Ici, la lésion reste dans le brin parental, mais la commutation de matrice permet à l’ADN répliqué d’être intact. La deuxième façon de résoudre la régression de la fourche se produit en l’absence de BRCA2. Et ici, la jonction de pied de poulet à quatre voies est clivée par l’endonucléase spécifique à la structure, Mus81, complexée avec une endonucléase de jonction, Mms4.Le clivage génère des cassures à double brin, qui peuvent être réparées par recombinaison homologue.

8.17:

Redémarrage de la fourche de réplication bloquée

La réplication de l’ADN est initiée sur des sites contenant des séquences d’ADN prédéfinies connues sous le nom d’origines de réplication. L’ADN est déroulé sur ces sites par l’hélicase de maintenance des minichromosomes (MCM) et d’autres facteurs tels que Cdc45 et le complexe GINS associé. Les simples brins déroulés sont protégés par la protéine de réplication A (RPA) jusqu’à ce que l’ADN polymérase commence à synthétiser l’ADN à l’extrémité 5 du brin dans le même sens que la fourche de réplication. Pour empêcher la fourche de réplication de se désintégrer, un complexe de protection de la fourche (FPC) se déplace avec la fourche en croissance. Ce complexe protéique conservé se trouve chez les eucaryotes et est composé de protéines telles que Tim, Tipin, And1 et Claspin.

En laboratoire, les fourches de réplication peuvent être bloquées par l’action de l’hydroxyurée. L’hydroxyurée épuise les pools cellulaires de dNTP, qui sont nécessaires à l’ADN polymérase pour la synthèse de l’ADN. Lorsque les dNTP ne sont pas disponibles, la synthèse d’ADN ralentit et s’arrête finalement complètement. Ainsi, le blocage des fourches de réplication dans les cellules vivantes est lié à l’inactivité de l’ADN polymérase.

Le FPC lie l’activité de la polymérase à celle de l’hélicase. Ainsi, même lorsque la polymérase s’arrête, l’hélicase continue de dérouler l’ADN pour produire un excès d’ADN simple brin (ADNsb) avant de s’arrêter. Cet excès d’ADNsb ressemble à des surplombs réséqués d’une réparation de cassure double brin. Pour stabiliser la structure, les protéines RPA se lient à l’ADNsb et recrutent les protéines ATR. La liaison ATR active la protéine régulatrice du cycle cellulaire Chk1 pour bloquer le déclenchement des origines de réplication et bloquer le cycle cellulaire pour la réparation de l’ADN. Ainsi, l’ADNss sert de signal puissant qui relie les dommages à l’ADN à la réparation.

Suggested Reading

  1. Meng, Xiangzhou, and Xiaolan Zhao. "Replication fork regression and its regulation." FEMS yeast research 17, no. 1 (2017).
  2. Quinet, Annabel, Delphine Lemaçon, and Alessandro Vindigni. "Replication fork reversal: players and guardians." Molecular cell 68, no. 5 (2017): 830-833.