Summary

Assay för Neural induktion i Chick Embryo

Published: February 13, 2009
doi:

Summary

Neural induktion är det första steget i bildandet av hjärnan. Det är en mekanism genom vilken Hensen nod (arrangör), instruerar kringliggande vävnad att anta ett neuralt öde, dvs att ge upphov till nervsystemet. Denna video visar en analys av neurala induktion i kycklingembryo.

Abstract

Den kycklingembryo är ett värdefullt verktyg i studiet av tidiga embryonala utvecklingen. Dess öppenhet, tillgänglighet och enkel manipulation, gör det ett idealiskt verktyg för att studera bildning och första anläggningen av nervsystemet. Denna video visar hur du ympa arrangör vävnad i en värd, en metod som Hensen s nod (arrangören i kycklingembryo) är ympade på en värd behörig ektoderm. Arrangören graft instruerar överliggande na har vävnad för att anta ett neuralt öde via neurala förmå signaler. Denna mekanism kallas neurala induktion, och utgör det första steget i bildandet av hjärnan och ryggmärgen i amnioternas. Denna metod är i huvudsak används för karakterisering av förmodade neurala förmå molekyler i chick. Denna video visar de olika stegen i analysen för neural induktion, det första är donnor embryot uttagna och fästs på ett fat. Sedan är värd embryot förberedd för ny kultur. Transplantatet är censurerade och transplanteras till värden området pellucida marginal. Värden är odlade på 18-22 timmar. Monteringen är fast och bearbetas för ytterligare tillämpningar (t.ex. in situ hybridisering). Denna metod var ursprungligen utformades av Waddington<sup> 1,2</sup> Och Gallera<sup> 3,4</sup>.

Protocol

I. Schematisk översikt: Denna video visar de olika stegen i analysen för neurala induktion i kycklingembryo. För det första är värd embryot explanterade i New kultur [NI1]. Sedan är det donnor embryot uttagna i koksaltlösning och Hensen nod (den "organisatör" i chick) är märkta med fluorescerande färg DII [NI2]. Hensen nod skärs från d…

Discussion

Denna video visar de olika stegen för att utföra ett test för neural induktion; Denna analys är i huvudsak används för karakterisering av förmodade neurala förmå molekyler i chick, och därmed kan användas för en mängd olika tillämpningar, från embryologiska micromanipulations 1-4; 6 att reda nytt signalsystem kaskader 7,8, som syftar till förståelse av det första steget i bildandet av hjärnan och övriga nervsystemet.

Acknowledgements

DP är mottagare av Ruth Kirschstein Award 1F32 DA021977-01A1 från National Institute on Drug Abuse. Detta arbete stöddes av Margaret M. Alkek Foundation för att RHF.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Eggs Animal Charles River Laboratories Premium Fertile Fertilized, HH3+ (14 hr)
Stereomicroscope Microscope Leica Microsystems MZ9.5 or similar  
Hybridization Incubator Equipment Robbins Scientific M1000 Use with inverted Pyrex dish and 500 ml ddH2O beaker
Marsh Automatic Incubator Equipment Lyon RX  
Pyrex dish        
Watchmaker’s glass 50mm Tool VWR 66112-060  
Glass rings Tool Physical Plant facility   cut 4 mm thick sections of glass tubing (27 mm outer diam, 25 mm inner diam). Do not fine polish.
Curved Forceps (1) Tool Electron Microscopy Sciences 72991-4C  
Forceps (2) Tool Fine Science Tools 11002-13 blunt ended using sharpening Stone and 100ul mineral oil
Fine scissors Tool Fine Science Tools 14161-10  
Plastic dishes Tool Falcon 353001  
Rubber Bulb Tool Electron Microscopy Sciences 70980  
DiI Reagent Invitrogen D-282  
Aspirator tube assembly Tool Sigma A5177-5EA  
Microelectrode puller Equipment Sutter Instruments Sutter Instruments P-97 Flaming/Brown Micropipette  
Pasteur Capillary Pipette Tool Electron Microscopy Sciences 70950-12 round edge under flame
Culture chamber Tool Pioneer Plastics 030C  
Microcapillary tube Tool Sigma P1049-1PAK  
Microdissecting knife Tool Fine Science Tools 10056-12 Use to puncture cavities prior to in situ hybridization
Minuten pins 0.2mm diam Tool Fine Science Tools 26002-20 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
Diethylpyrocarbonate (depc) Reagent Electron Microscopy Sciences 15710  
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and Base   Dow Corning 0001986475 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
Diethylpyrocarbonate (depc)   Acros Organics 10025025 Add 1ml depc to 1l PBS; shake; autoclave
16% PFA   Electron Microscopy Sciences 15710  

References

  1. Waddington, C. H. Experiments on the development of chick and duck embryos, cultivated in vitro. Phil. Trans. R. Soc. Lond. B. 221, 179-230 (1932).
  2. Waddington, C. H. Induction by the primitive streak and its derivatives in the chick. J. Exp. Biol. 10, 38-46 (1933).
  3. Gallera, J. Excision et transplantation des diff&eacute;rentes r&eacute;gions de la ligne primitive chez le poulet. C. R. Ass. Anat. 49, 632-639 (1964).
  4. Gallera, J. Primary induction in birds. Adv. Morph. 9. , 149-180 (1971).
  5. Serbedzija, G. N., Fraser, S. E., Bronner-Fraser, M. Pathways of neural crest cell migration in the mouse embryo as revealed by vital dye labeling. Development 108. , 605-612 (1990).
  6. Psychoyos, D., Stern, C. D. Restoration of the organizer after radical ablation of Hensen’s node and the anterior primitive streak in the chick embryo. Development 122. , 3263-3273 (1996).
  7. Joubin, K., Stern, C. D. Molecular interactions continuously define the organizer during the cell movements of gastrulation. Cell. 98, 559-571 (1999).
  8. Streit, A., Berliner, A. J., Papanayotou, C., Sirulnik, A., Stern, C. D. Initiation of neural induction by FGF signaling before gastrulation. Nature. , 406-474 (2000).
  9. Psychoyos, D., Finnell, R. Method for Culture of Early Chick Embryos ex vivo (New Culture. JoVE. 20, 10-3791 (2008).
check_url/fr/1027?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Psychoyos, D., Finnell, R. Assay for Neural Induction in the Chick Embryo. J. Vis. Exp. (24), e1027, doi:10.3791/1027 (2009).

View Video