Summary

Ensayo de inducción neural en el embrión de pollo

Published: February 13, 2009
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Summary

Inducción neural es el primer paso en la formación del cerebro. Se trata de un mecanismo por el cual el nodo de Hensen (organizador), instruye a los tejidos adyacentes a la adopción de un destino neuronal, es decir, para dar lugar al sistema nervioso. Este video muestra un ensayo de inducción neural en el embrión de pollo.

Abstract

El embrión de pollo es una herramienta valiosa en el estudio del desarrollo embrionario temprano. Su transparencia, accesibilidad y facilidad de manipulación, lo convierten en una herramienta ideal para el estudio de la formación inicial y los patrones del sistema nervioso. Este video muestra la forma de tejido organizador del injerto en un huésped, un método por el cual nódulo de Hensen s (el organizador en el embrión de pollo) se injerta a un ectodermo competente de acogida. El injerto organizador instruye cubre na he tejido para adoptar un destino neuronal a través de señales de inducción neural. Este mecanismo se conoce como inducción neural, y constituye el paso inicial en la formación del cerebro y la médula espinal en amniotas. Este método se utiliza esencialmente para la caracterización de las moléculas de supuesta inducción neural en el pollo. Este video muestra los diferentes pasos en el ensayo de inducción neural; En primer lugar, el embrión es donnor explantados y puestas en un plato. Luego, el embrión de acogida se prepara para la nueva cultura. El injerto se extirpa y se trasplanta a la zona pelúcida margen de acogida. El anfitrión se cultiva durante 18-22 horas. El conjunto se fija y se procesaron para otras aplicaciones (por ejemplo, hibridación in situ). Este método fue concebido originalmente por Waddington<sup> 1,2</sup> Y la Gallera<sup> 3,4</sup>.

Protocol

I. Esquema general: Este video muestra las diferentes etapas de ensayo para la inducción neural en el embrión de pollo. En primer lugar, el embrión de acogida es explantados en la cultura de Nuevo [NI1]. Luego, el embrión es donnor explantados en solución salina y el nodo de Hensen (el "organizador" de pollo) está marcada con fluorescente DII…

Discussion

Este video muestra los diferentes pasos en la realización de un ensayo para la inducción neural; Este ensayo se utiliza esencialmente para la caracterización de las moléculas de supuesta inducción neural en el pollo, y por lo tanto puede ser utilizado para una amplia variedad de aplicaciones, que van desde micromanipulaciones embriológico 1-4; 6 para desentrañar nuevas cascadas de señalización 7,8, todos con el objetivo de la comprensión de la etapa inicial en la formación del cerebro y …

Acknowledgements

DP es receptor de Ruth Premio Kirschstein DA021977 1F32-01A1 del Instituto Nacional sobre Abuso de Drogas. Este trabajo fue apoyado por la Fundación Margaret M. Alkek a RHF.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Eggs Animal Charles River Laboratories Premium Fertile Fertilized, HH3+ (14 hr)
Stereomicroscope Microscope Leica Microsystems MZ9.5 or similar  
Hybridization Incubator Equipment Robbins Scientific M1000 Use with inverted Pyrex dish and 500 ml ddH2O beaker
Marsh Automatic Incubator Equipment Lyon RX  
Pyrex dish        
Watchmaker’s glass 50mm Tool VWR 66112-060  
Glass rings Tool Physical Plant facility   cut 4 mm thick sections of glass tubing (27 mm outer diam, 25 mm inner diam). Do not fine polish.
Curved Forceps (1) Tool Electron Microscopy Sciences 72991-4C  
Forceps (2) Tool Fine Science Tools 11002-13 blunt ended using sharpening Stone and 100ul mineral oil
Fine scissors Tool Fine Science Tools 14161-10  
Plastic dishes Tool Falcon 353001  
Rubber Bulb Tool Electron Microscopy Sciences 70980  
DiI Reagent Invitrogen D-282  
Aspirator tube assembly Tool Sigma A5177-5EA  
Microelectrode puller Equipment Sutter Instruments Sutter Instruments P-97 Flaming/Brown Micropipette  
Pasteur Capillary Pipette Tool Electron Microscopy Sciences 70950-12 round edge under flame
Culture chamber Tool Pioneer Plastics 030C  
Microcapillary tube Tool Sigma P1049-1PAK  
Microdissecting knife Tool Fine Science Tools 10056-12 Use to puncture cavities prior to in situ hybridization
Minuten pins 0.2mm diam Tool Fine Science Tools 26002-20 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
Diethylpyrocarbonate (depc) Reagent Electron Microscopy Sciences 15710  
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and Base   Dow Corning 0001986475 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
Diethylpyrocarbonate (depc)   Acros Organics 10025025 Add 1ml depc to 1l PBS; shake; autoclave
16% PFA   Electron Microscopy Sciences 15710  

References

  1. Waddington, C. H. Experiments on the development of chick and duck embryos, cultivated in vitro. Phil. Trans. R. Soc. Lond. B. 221, 179-230 (1932).
  2. Waddington, C. H. Induction by the primitive streak and its derivatives in the chick. J. Exp. Biol. 10, 38-46 (1933).
  3. Gallera, J. Excision et transplantation des diff&eacute;rentes r&eacute;gions de la ligne primitive chez le poulet. C. R. Ass. Anat. 49, 632-639 (1964).
  4. Gallera, J. Primary induction in birds. Adv. Morph. 9. , 149-180 (1971).
  5. Serbedzija, G. N., Fraser, S. E., Bronner-Fraser, M. Pathways of neural crest cell migration in the mouse embryo as revealed by vital dye labeling. Development 108. , 605-612 (1990).
  6. Psychoyos, D., Stern, C. D. Restoration of the organizer after radical ablation of Hensen’s node and the anterior primitive streak in the chick embryo. Development 122. , 3263-3273 (1996).
  7. Joubin, K., Stern, C. D. Molecular interactions continuously define the organizer during the cell movements of gastrulation. Cell. 98, 559-571 (1999).
  8. Streit, A., Berliner, A. J., Papanayotou, C., Sirulnik, A., Stern, C. D. Initiation of neural induction by FGF signaling before gastrulation. Nature. , 406-474 (2000).
  9. Psychoyos, D., Finnell, R. Method for Culture of Early Chick Embryos ex vivo (New Culture. JoVE. 20, 10-3791 (2008).
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Citer Cet Article
Psychoyos, D., Finnell, R. Assay for Neural Induction in the Chick Embryo. J. Vis. Exp. (24), e1027, doi:10.3791/1027 (2009).

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