Ruminants에 창자 루프 Catheterization
Summary
우리는 양의 회장에서 '창자 고리'를 catheterizing위한 새로운 수술 방법을 설명합니다. 일단 동물이 수술에서 회복하고 항생제와 진통제를 통과해야 여러 치료는 카테터를 통해 루프에서 직접 입금하실 수 있습니다.
Abstract
소장뿐만 아니라 영양분의 흡수에 관여하는 복잡한 구조이지만, 또한 개인과 외부 세계 사이의 장벽 역할을합니다. 따라서 소장은 immunosurveillance와 장용 병원균으로부터 보호에 중추적인 역할을합니다. 장 생리 및 면역학을 조사하는 것은 일반적으로 실험 모델로 '창자 고리'를 고용합니다. 이러한 루프 모델의 대부분은 소장에서 단기간 (<24 시간) 변경 (1-3) 학업 이외의 회복 수술 절차입니다. 우리는 이전에 구체적으로 백신, adjuvants, 그리고 바이러스 (4) 양이 다음과 같은 노출의 소장의 장기 (<6 MO) 면역 변화를 측정하기 위해 복구 장 루프 모델을 만들었습니다. 특정 '루프'이 절차는 현지화된 트리 트먼트, 우리가 소장의이 지역을 맛볼 수 있도록합니다. 이 방법의 큰 단점은 치료를 (수술 당시 IE) 관리 기회의 단일 창입니다. 또한 장의 점막과 luminal 내용을 모두 샘플은 프로젝트의 종료에서 찍은 수 있습니다. 위의 모델의 다른 분출 한계 수술 조작하고 필요한 사후 수술 조치 (항생제와 진통제의 예 기업청) 직접 치료 자체 및 /에 영향을 미치거나, 따라서 혼란함을 주죠 결과를 면역 기능을 변경할 수 있습니다. 따라서, 우리는 루프로 장기간 카테터를 삽입하여 장 루프 모델을 수정했습니다. 쉽 절차에서 완전히 회복하고 exteriorized 카테터에 의해 영향을받지 있습니다. 특히, 루프에서 카테터의 설립은 우리가 수술 중에 투여 약물의 수술과 통관의 복구 및 사후 수술 기간에 따라 연장 간격을 통해 여러 치료법을 소개하실 수 있습니다.
Protocol
Discussion
이 절차에서는, 우리는 성공적으로 양 회장 내에 설립된 장 루프에 카테터를 설정할 수 있었다. 엄격한 사후 수술 치료 준수하면서, 동물은 빠르게 절차에서 발견한 및 수술 후 정상적인 활동 5-7일을 재개. 우리는 루프 내에서 카테터의 설립이 장의 점막이나 면역 기능 (데이터가 표시되지 않음)에 영향을주지 않고 동물들이 수술 후 최소한 8 주 살 수있는 결정. 이 절차는 우리가 한 동물 수술에서…
Divulgations
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
연구는 농업과 아그리 – 푸드 캐나다 연구 센터, 레스 브리지, 앨버타, 캐나다의 헌신과 많은 사람의 노력없이 완료되지 않았을 수 있습니다. 그 점에 관해서는, 우리는 감사 : 사전 및 사후 수술 동물의 치료, 수술 준비 및 마취, 샘플의 분석 및 비디오 영상과 함께 도움을 타라 셸턴, 사전 및 사후 수술 치료에 대한 랜디 와일드와 에스텔라 코스타; 샘플 분석을 위해 제니 Gusse, 투관침 이미지 바이런 리 및 양의 축산을위한 브라이언 Egland. 우리는 또한 비디오 장비 및 조언뿐만 아니라 다른 도움을 (즉, 이그 제 큐 티브 생산) 제공 브렌트 셀린저을 (생물 과학학과, 레스 브리지 대학) 감사 및 교육 과정 다시 개발 센터, videography 전문 지식에 대한 레스 브리지 대학. 이 연구는 고급 식품 소재 네트워크 (GDI), 캐나다 앨버타 쇠고기 산업 개발 기금 (GDI), 그리고 농업과 아그리 – 식품 캐나다 (GDI와 JPK)에서 부여에 의해 일부 지원되었다.
Materials
| Category / Item Number | Company | Catalogue |
| Surgeon supplies | ||
| Surgical gloves | WDDCa | 103091 |
| Surgical mask | WDDC | MAX53013 |
| Surgical gown | CDMVb | 3365 |
| OB Apron | WDDC | 900062 |
| Surgical cap | WDDC | 903271 |
| EZ Scrub brush | WDDC | BDC377479 |
| Anesthesia and drugs | ||
| Anesthetic machine | Boyle | — |
| Sodasorb | WDDC | 108638 |
| Laryngoscope | WDDC | — |
| Laryngoscope blade (Miller blade #4) | WDDC | 902667 |
| Endotracheal tube (7.0 – 8.5 mm) | WDDC | — |
| Lidocaine endotracheal spray | WDDC | 103364 |
| Acepromazine | WDDC | AUS01020 |
| Glycopyrrolate | WDDC | SAB2880 |
| Butorphanol tartrate | WDDC | AYE304541 |
| Diazepam | WDDC | sab790 |
| Thiopental sodium | WDDC | 103508 |
| Epinephrine hydrochloride | WDDC | 103856 |
| Doxapram | Strathcona Pharmacy | — |
| Isoflurane | WDDC | 100339 |
| Hemostam | WDDC | 103857 |
| Flunixin | WDDC | sch140100 |
| Enrofloxacin | WDDC | hll0049 |
| Metronidazole | WDDC | 101653 |
| Ampicillin | WDDC | NOV67185-6 |
| Cefazolin | WDDC | nov69397 |
| Surgical equipment and supplies | ||
| Electroscapel | Macan | MV8 |
| Heating mat | Kane | PHMD-48 |
| Stomach tube (Nalgene tubing 5/16″ ID) | Fisher Scientific | — |
| Needle driver | WDDC | 108338 |
| Addison brown forcep | WDDC | 911075 |
| Rat tooth forcep | CDMV | 5275 |
| Kelly forcep | WDDC | 901133 |
| Mosquito hemostat | WDDC | 108471 |
| Carmalt forcep | WDDC | 901225 |
| Scalpel handle | WDDC | 900285 |
| Scalpel blade #22 | WDDC | 900511 |
| Metzenbaum scissor | WDDC | 901166 |
| Sharp-sharp scissor | WDDC | 108264 |
| Towel clamp | WDDC | 901213 |
| Allis tissue forcep | WDDC | 901201 |
| Doyen’s forcep | WDDC | 904226 |
| Stainless steel bowl | WDDC | 903601 |
| Stainless steel trocar (curved) | Local supplier | — |
| Catheter introducer | WDDC | 11440 |
| Surgical towel | CDMV | 7972 |
| Disposable drape | WDDC | 900035 |
| Steri drape | CDMV | 2323 |
| Drape (40 x 40 cm) | CDMV | 8358 |
| Surgical drape (7″ x 11 ¼” opening) | CDMV | 2694 |
| Vicryl (2-0) | WDDC | JJMJ333H |
| Silk 2-0 | WDDC | 105248 |
| Catgut #3 | WDDC | CSL547-2070 |
| Supramid #1 | WDDC | CSL547-3040 |
| Needles (cutting and non-cutting) | WDDC | — |
| Catheter | ||
| Silastic tubing (0.040″ ID, 0.085″ OD) | Fisher Scientific | 11-189-15D |
| Orbeseal ointment | WDDC | 106344 |
| Clear silicone (732 multi-purpose sealant) | Local supplier | — |
| Blunt end needle | WDDC | 905035 |
| Marker (permanent industrial) | Local supplier | — |
| Catheter pouch (constructed of Elastoplast 7.5 cm) | WDDC | 104094 |
| Bandages | ||
| Hospital tape (2″) | WDDC | 103842 |
| Hospital tape (1″) | WDDC | VLMRENF20 |
| Gauze sponge 4×4 | WDDC | 107551 |
| Gauze cling | WDDC | 107633 |
| Elastoplast 7.5cm | WDDC | 104094 |
| Elastoplast rippable bandage | WDDC | 104093 |
| Needles and syringes | ||
| Syringe (60 ml) | WDDC | 104004 |
| Syringe (10 ml) | WDDC | bdc301604 |
| 25G Needle | WDDC | BDC305122 |
| 20G Needle | WDDC | BDC305175 |
| 18G Needle | WDDC | 903353 |
| Intravenous | ||
| Intracath IV catheter (16G 8″) | WDDC | bdc3831621 |
| IV administration set (10 drop) | WDDC | 101797 |
| 0.9% NaCl solution | WDDC | BAXJB1322P |
| Plasmalyte 148 solution | WDDC | BAXJB2534 |
| Dextrose | WDDC | MCT60190 |
| Peristaltic pump | Cole Parmer | 7524-10 |
| Livestock identification tag cement | Local supplier | — |
| Sanatizers / disinfectants | ||
| Germex solution | WDDC | mtc60270 |
| Isopropyl alcohol | WDDC | 104590 |
| Stanhexidine cleanser | WDDC | 109248 |
| Prepodyne solution | WDDC | 105710 |
| Prepodyne scrub | WDDC | 105711 |
aWestern Drug Distribution Center LTD, Edmonton, AB.
bThe Veterinary Medication Distribution Center Inc., St. Hyacinthe, QE.
References
- Vidal, J. E., McClane, B. A., Saputo, J., Parker, J., Uzal, F. A. Effects of Clostridium perfringens beta-toxin on the rabbit small intestine and colon. Infect. Immun. 76, 4396-4404 (2008).
- Santos, R. L., Zhang, S., Tsolis, R. M., Baumler, A. J., Adams, L. G. Morphologic and molecular characterization of Salmonella typhimurium infection in neonatal calves. Vet. Pathol. 39, 200-215 (2002).
- Uzzau, S., Leori, G. S., Petruzzi, V., Watson, P. R., Schianchi, G., Bacciu, D., Mazzarello, V., Wallis, T. S., Rubino, S. Salmonella enterica serovar-host specificity does not correlate with the magnitude of intestinal invasion in sheep. Infect. Immun. 69, 3092-3099 (2001).
- Gerdts, V., Uwiera, R. R. E., Mutwiri, G. K., Wilson, D. J., Bowersock, T., Kindane, A., Babiuk, L. A., Griebel, P. J. Multiple intestinal ‘loops’ provide an in vivo model to analyse multiple mucosal immune responses. J. Immunol. Methods. 256, 19-33 (2001).
- Greibel, P. J., Davis, W. C., Reynolds, J. D. An analysis of the growth and differentiation of b cells isolated from follicles from ileal Peyer’s patch of sheep. Immunology. 75, 601-607 (1992).
- Motyka, G., Greibel, P. J., Reynolds, J. D. Agents that activate protein kinase C resue sheep ileal Peyer’s patch B cells from apoptosis. Eur. J. Immunol. 23, 1314-1321 (1993).
