Summary

Microfluïdische Co-cultuur van epitheliale cellen en bacteriën voor het onderzoeken van Oplosbaar Signal-gemedieerde interacties

Published: April 20, 2010
doi:

Summary

Dit protocol beschrijft een microfluïdisch co-cultuur model voor gelijktijdige en gelokaliseerde cultuur van epitheliale cellen en bacteriën. Dit model kan gebruikt worden voor het onderzoeken van de rol van verschillende oplosbare moleculaire signalen op pathogenese en het scherm van de effectiviteit van de vermeende probiotische bacteriestammen.

Abstract

De menselijke gastro-intestinale (GI) stelsel is een unieke omgeving waarin darmepitheelcellen en niet-pathogene (commensale) bacteriën naast elkaar bestaan. Men heeft voorgesteld dat de micro-omgeving die de pathogeen ontmoetingen in de commensale laag is van belang bij het bepalen van de mate van kolonisatie. Huidige cultuur methoden voor onderzoek pathogeen kolonisatie zijn niet goed geschikt voor het onderzoeken van deze hypothese omdat zij co-cultuur van bacteriën en epitheelcellen niet in staat stellen op een wijze die het maag-darmkanaal micro-omgeving nabootst. Hier beschrijven we een microfluïdisch co-cultuur model dat onafhankelijke cultuur van eukaryote cellen en bacteriën mogelijk maakt, en het testen van het effect van de commensale micro-omgeving op de ziekteverwekker kolonisatie. De co-cultuur model wordt aangetoond door het ontwikkelen van een commensale<em> Escherichia coli</em> Biofilm onder HeLa cellen, gevolgd door de introductie van enterohemorragische<em> E. coli</em> (EHEC) in de commensale eiland, in een volgorde die de volgorde van gebeurtenissen in het maagdarmkanaal infectie nabootst.

Protocol

1. Fabricage van silicium meesters met behulp van standaard SU-8 fotolithografie een (niet getoond in deze video). Gebruik standaard SU-8 fotolithografie methoden om een ​​SU-8 "masters" (SU-8 2050, Microchem, Newton, MA) voor het fabriceren van de verschillende componenten (PDMS membranen van verschillende dikte, co-cultuur kamer) in een cleanroom. Creëren Deze master-mallen kunnen worden vervaardigd op een microfabricage faciliteit (bijv. Stanford Microfluidics Foundry; <a…

Discussion

Conventionele testen voor pathogeen bevestiging en kolonisatie gebruik maken van een monolaag van eukaryote cellen in weefselculturen platen waarin ziekteverwekkers worden toegevoegd. Deze modellen zijn fysiologisch niet relevant zijn als ze niet een commensale bacteriële biofilm ontwikkeld op eukaryote cellen te nemen. Eenvoudige toevoeging van een pre-volwassen bacteriecultuur aan eukaryote cellen is onwaarschijnlijk dat leiden tot deze bevestiging als biofilms zijn zeer georganiseerde structuren die zich ontwikkelen…

Acknowledgements

Dit werk werd mede ondersteund door de National Science Foundation (cbet 0.846.453) en de National Institutes of Health (1R01GM089999).

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
SU-8 2050   Microchem Corp, MA    
high-resolution (16,256 dpi) photolithography mask   Fineline-Imaging Inc, CO    
Trichloro(3,3,4,4,5,5,6,6,7,7,8,8,8-tridecafluorooctyl)silane   Sigma-Aldrich 77279  
PDMS   Dow Corning, WI 184 SIL ELAST KIT 0.5KG  
DMEM   Thermo Scientific SH30002.02  
Programmable spin coater   Laurell Tech Corp WS0650S  
Mask aligner   Neutronix-Quintel, PA Q4000  
Oxygen plasma etcher   March Plasma System, CA CS-1701  
Syringe pump   Harvard Apparatus, MA    
Live/Dead Viability/Cytotoxicity Kit   Invitrogen L-3224  

References

  1. McDonald, J. C. Prototyping of microfluidic devices in poly(dimethylsiloxane) using solid-object printing. Anal Chem. 74, 1537-1545 (2002).
  2. Jeon, N. L. Design and fabrication of integrated passive valves and pumps for flexible polymer 3-dimensional microfluidic systems. Biomed Microdevices. 4, 117-121 (2002).
  3. Baek, J. Y., Park, J. Y., Ju, J. I., Lee, T. S., Lee, S. H. A pneumatically controllable flexible and polymeric microfluidic valve fabricated via in situ development. J Micromech Microeng. 15, 1015-1020 (2005).
  4. Grover, W. H., Ivester, R. H., Jensen, E. C., Mathies, R. A., A, R. Development and multiplexed control of latching pneumatic valves using microfluidic logical structures. Lab Chip. 6, 623-631 (2006).
  5. Lee, J., Jayaraman, A., Wood, T. K., K, T. Indole is an inter-species biofilm signal mediated by SdiA. BMC Microbiol. 7, 42-42 (2007).
  6. Hsu, C. H., Folch, A. Microfluidic devices with tunable topographies. Appl Phys Lett. 86, 023508-023508 (2005).
  7. Hui, E. E., Bhatia, S. N. Micromechanical control of cell-cell interactions. Proc Natl Acad Sci USA. 104, 5722-5726 (2007).
  8. Lee, J. Y. Integrating sensing hydrogel microstructures into micropatterned hepatocellular cocultures. Langmuir. 25, 3880-3886 (2009).
  9. Kim, J., Hegde, M., Jayaraman, A. Co-culture of epithelial cells and bacteria for investigating host-pathogen interactions. Lab-on-Chip. , (2009).
check_url/fr/1749?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Kim, J., Hegde, M., Jayaraman, A. Microfluidic Co-culture of Epithelial Cells and Bacteria for Investigating Soluble Signal-mediated Interactions. J. Vis. Exp. (38), e1749, doi:10.3791/1749 (2010).

View Video