Summary

Eksplantlar gelen Yetiştirilen İlköğretim İnsan Bronşiyal Epitel Hücreleri

Published: March 26, 2010
doi:

Summary

Burada bir hava-sıvı arayüzü farklılaştırılmış büyüme de dahil olmak üzere insan bronşiyal solunum yolu doku eksplantlar birincil insan bronşiyal epitel hücreleri büyümek için detaylı bir yöntem açıklanmaktadır. Bu yöntem, insan akciğer sağlığı ve hastalıkları, solunum yolu epitel rolünü araştırmak için birincil hücreleri bol miktarda kaynak sağlar.

Abstract

İnsan bronşiyal epitel hücreleri hastalığın hücre modelleri için gerekli olan ve insan epitel hücrelerinin işlevi ve yapısı Yardımcı maddeler ve farmakolojik ajanların etkisini araştırmaktı. Burada akciğer ameliyatı (örneğin akciğer kanseri veya akciğer hacim küçültme ameliyatı) zaman cerrah tarafından hasat bronşiyal solunum yolu doku bronş epitel hücreleri büyüyen yöntemi ayrıntılı olarak açıklar. Etik onayı ve bilgilendirilmiş onam, cerrah patoloji için gerekli olan alır ve hastalıklı alanlar uzak bir bronş kısmı ile bize sunuyor. Dokusu primer bronş epitel hücreleri kültürde yetiştirmek için kullanılabilir eksplant kaynağı olarak kullanılır. 0.5-1cm uzunluğunda ve çapı ≤ 1cm hakkında Bronşiyal kesimleri, soğuk EBSS ve aşırı parankimal doku çıkarılır ile durulanır. Segmentler açık kesilmiş ve içine kıyılmış 2-3mm<sup> 3</sup> Doku parçaları. Adet birincil hücre kaynağı olarak kullanılır. Kollajen bir kombinasyonu (30 mg / ml), fibronektin (10 mg / ml) ve BSA (10 mg / ml) ile 1-2 saat süreyle kaplama 100mm kültür levhalar, plakalar, 4-5 alanlar ve doku çizik % 5 CO adet çizik alanlar yerleştirilir, daha sonra epitel hücre büyümesi için uygun bir kültür ortamı (katkı maddeleri ile DMEM / Ham F-12) eklenir ve levhalar 37 bir kuluçka yerleştirilir ° C<sub> 2</sub> Nemlendirilmiş hava. Kültür ortamı, her 3-4 günde bir değiştirilir. Epitel hücreleri, 3-4 hafta içinde yaklaşık 1,5 cm çapında halkalar oluşturan parçalardan büyür. Eksplantlarındaki yeni ön kaplı levhalar içine taşıyarak 6 kata kadar yeniden kullanılır olabilir. Hücreler sayılır toplanmış tripsin / EDTA, kaldırdı, T75 Cep Bind şişeler ve sayılarını artırmak için yeniden kaplanmıştır. T75 şişeler numaralı seribaşı 2-3 milyon hücre 4 hafta% 80 izdiham birlikte büyümek için. Genişletilmiş birincil insan epitel hücreleri, kültür ve hava-sıvı arayüzü ayırt etmek için izin verilebilir. Yöntem taze izole dokularda insan bronşiyal epitel hücreleri bol kaynak sağlamak ve bu hücrelerin hastalık modelleri olarak eğitim ve farmakoloji ve toksikoloji tarama izin olarak tanımlanmıştır.

Protocol

İnsan Bronşiyal bölümleri birincil bronşiyal epitel hücreleri bol miktarda kaynak sağlar. Bu yazıda, taze izole insan bronşiyal segmentleri İnsan bronşiyal epitel (HBE) hücreleri büyüme ve genişleme için bir protokol açıklar. Bu protokol, beş bölümden oluşmaktadır: Kaplama ve 100mm Kültür Tabaklar Kaşıma Bronş Doku eksplantlar hazırlanması Bronş Doku nakli Passage HBE Hücreler Transwells büyüyen siliyalı HBE Hücreler <p cl…

Discussion

Bu çalışmada, kültür ve primer insan bronş epitel hücreleri genişlemesi için ayrıntılı yöntemler sundu. Biz eksplantlar ve epitel hücre büyümesini teşvik medya kültürü bronşiyal doku, nakli, insan hava yolu epitel hücreleri olmayan diferansiye (batık) ve farklı (hava-sıvı arayüzü üzerinde yetişen) hücre modelleri çalışmaları için sürekli bir kaynak sağlamak nasıl gösterdi . Bu hücreler, kendi gerçek fizyolojik ortamlarda hücreler daha yakından benzediği uyuşturucu testi sist…

Acknowledgements

Yazarların bronşiyal dokular sağlamak için Dr. Richard Inculet müteşekkiriz. Joseph Sağlık Hamilton ve The University of Western Ontario / Londra Sağlık Bilimleri Merkezi (Dr David McCormack), Doku ve Arşivler Komitesi, Patoloji Anabilim Dalı Araştırma Etik Kurul onayı alındı. Ayrıca bazı immün için gerekli malzemelerin sağlanması için ALI kültürlerin dardı ve Daniela Farkas sağlamak için Ernie Spitzer (Elektron Mikroskop, McMaster Üniversitesi) teşekkür ederim. Bu çalışma, Ontario Toraks Derneği Blok vadeli hibe ile finanse edilmiştir; Dr. Esma Yaghi FSORC burs, St Joseph Sağlık, Hamilton, Ontario, Kanada tarafından desteklenmiştir.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Albumin from bovine serum, powder   Sigma A4919 Use for coating solution
COLLAGEN TYPE I 0.1% Solution Sterile-filtered   Sigma C8919 Use for coating solution
Fibronectin from human plasma   Sigma F2006 Use for coating solution
Earle’s Balanced Salt Solution (EBSS, sterile)   Sigma 28888 Use for rinsing tissue and for coating solution
DMEM/Ham F-12   Sigma D8437  
FBS   Sigma F1015 Inactivate, then aliquot and freeze (-20°C); use fresh when needed
Antibiotic-Antimycotic Stabilized   Sigma A5955 Aliquot into 2 ml vials and freeze (-20°C); use fresh when needed
Albumin solution from bovine serum   Sigma A8412 BSA
Pituitary Extract Bovine   Sigma P1476 BPE
Epidermal growth factor   Sigma E9644 EGF
(±)-Epinephrine   Sigma E1635  
Insulin   Sigma I6634  
Tranferrin Human   Sigma T8158  
Triiodo-L-thyronine   Sigma T6397  
Hydorcortisone   Sigma H0888  
Retinoic Acid   Sigma R2625  
Trypsin   Sigma T9935  
EDTA   Sigma E6758 EDTA
Phosphate buffered saline   Sigma P5368 PBS
70% ethanol       Use for disinfecting and cleaning
24 well Transwells   Corning 3470  
Cell Culture Flasks (T75) CLLBND from Corning   Fisher Scientific 05-539-104 These flasks have a Cell Bind coating which promotes cell attachment and growth
Monoclonal Anti-Cytokeratin, pan-FITC antibody   Sigma F3418 Permeabilization: 0.2% TRITON X-100/PBS; Use 1:250 dilution
Antibody: E-Cadherin (H108)   Santa Cruz sc-7870 Do not permeabilize; Use 1:250 dilution and A21207 (Invitrogen) as secondary antibody
Alexa Fluor 594 donkey anti-rabbit IgG   Invitrogen A21207 Use 1:400 dilution
Antibody: Monoclonal mouse Anti- α-Smooth Muscle Actin-Cy3   Sigma- Aldrich C6198 Permeabilization: 0.2% TRITON X-100/PBS; Use 1:100 dilution
Antibody: Vimentin (RV202)   Santa Cruz Sc-32322 Permeabilization: 0.2% TRITON X-100/PBS; Use 1:100 dilution and T2402 (Sigma- Aldrich) as secondary antibody
Rabbit anti-mouse TRITC   Sigma- Aldrich T2402 Use 1:400 dilution
Antibody: CD31 or PECAM-1 (M-20)   Santa-Cruz Sc-1506 Do not permeabilize; Use 1:200 dilution and Donkey anti-goat IgG-FITC as secondary antibody
Donkey anti-goat IgG-FITC   Santa-Cruz   Use 1:100 dilution
Vectashield Mounting medium with DAPI   Vector Laboratories H-1200 Refrigerate in the dark; stains nuclei and retains fluorescence during prolonged storage
Vectashield Mounting medium   Vector Laboratories H-1000 Refrigerate in the dark; retains fluorescence during prolonged storage
Hoechst Stain solution   Sigma H6024 Stains nuclei; use 1:10 dilution and Vectashield H-1000

Other requirements: incubator, biological safety cabinet (BSC), centrifuge, 100mm culture plates, sterile tubes (15 ml, 50 ml, and 2 ml), sterile pipette tips, scalpel handle and blades, small sharp scissors, lab coats and gloves. These can be obtained from your preferred suppliers.

References

  1. Phillips, J. Growing Cells on Transwell Inserts – Tips and Techniques [Internet]. Corning Life Sciences, Technical Resources, Online Training. , (2008).
  2. Turi, J. L. Oxidative stress activates anion exchange protein 2 and AP-1 in airway epithelial cells. Am J Physiol Lung Cell Mol. Physiol. 283, L791-L798 (2002).
  3. Lechner, J. F., Haugen, A., McClendon, I. A., Pettis, E. W. Clonal growth of normal adult human bronchial epithelial cells in a serum-free medium. In Vitro. 18, 633-642 (1982).
  4. Yoshisue, H. Characterization of ciliated bronchial epithelium 1, a ciliated cell-associated gene induced during mucociliary differentiation. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 31, 491-500 (2004).
  5. Wetering, S. v. a. n. Regulation of secretory leukocyte proteinase inhibitor (SLPI) production by human bronchial epithelial cells: increase of cell-associated SLPI by neutrophil elastase. J. Investig. Med. 48, 359-366 (2000).
  6. Tristram, D. A., Hicks, W., Hard, R. Respiratory syncytial virus and human bronchial epithelium. Arch. Otolaryngol. Head Neck Surg. 124, 777-783 (1998).
  7. Mattinger, C., Nyugen, T., Schafer, D., Hormann, K. Evaluation of serum-free culture conditions for primary human nasal epithelial cells. Int. J. Hyg. Environ. Health. 205, 235-238 (2002).
  8. Freshney, R. I., Freshney, R. I. . Culture of epithelial cells. , 1-23 (1992).
  9. Freshney, R. I., Freshney, R. I. Normal human bronchial epithelial cell cultures in Culture of specialized cells series. Culture of epithelial cells. , 181-196 (1992).
check_url/fr/1789?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Yaghi, A., Zaman, A., Dolovich, M. Primary Human Bronchial Epithelial Cells Grown from Explants. J. Vis. Exp. (37), e1789, doi:10.3791/1789 (2010).

View Video