Summary

マウス尿路感染症の経尿道的誘導

Published: August 05, 2010
doi:

Summary

このビデオでは、経尿道的にマウスの尿路感染症を誘発し、結果として感染症の程度を定量化する方法を紹介します。

Abstract

興味の尿路病原性菌株は、寒天上で増殖されています。一般的に、尿路疾患<em> E.大腸菌</em>(UPEC)と他の株は37℃ルリア – ベルターニ(LB)寒天培地上で一晩成長させることができる·周囲空気中のC。 UPECの菌株は、LB寒天培地上で黄色がかった白色半透明のコロニーとして成長する。適切なコロニー形態の確認後、シングルコロニーを培養液で培養されるに応じて選択されます。 LBブロスは、ほとんどの尿路病原性菌株に使用することができます。二つのシリアル、一晩LBブロス培養物はI型線毛、尿路病原性の細菌のための明確に定義された毒性因子の発現を増強するために用いることができる。ブロス培養物(PBS)リン酸緩衝生理食塩水で所望の濃度に希釈されています。 8〜12週齢の雌マウスは、イソフルラン麻酔下に置き、経尿道的にポリエチレンチューブで覆われた30ゲージのシリンジを使用して細菌を接種されています。経験的にそれぞれの細菌/マウス系統の組み合わせのために決定しなければならない典型的な接種は、10です。<sup> 6</sup> 10〜<sup> 8</sup> CFU PBSの10〜50マイクロリットルのマウスあたり。希望の感染期間(数週間に一日)、尿サンプルと膀胱と両方の腎臓が収穫された後。各臓器は、細かく刻むPBSに入れ、そしてブルーブレットホモジナイザーで均質化する。尿および組織ホモジネートが直列にPBSで希釈し、適切な寒天上で培養されています。翌日は、コロニー形成単位がカウントされます。

Protocol

尿道カテーテルのI.準備各マウスの膀胱及びサンプリングする腎臓の場合は、それぞれ1クライオバイアルチューブ5-6ステンレススチール製ビーズ(膀胱、1.6 mmのサイズまたは0.9〜2.0ミリメートルのブレンド)または酸化ジルコニウムビーズ(腎臓、0.5mmのサイズ)を配置。ビーズを含むチューブをオートクレーブ。 周囲温度に冷却管の後、各ステンレススチールビーズを含むチ…

Discussion

細菌の経尿道的接種によるマウス尿路感染症の誘導は、老舗が技術的な要求手順11です。ハングとHultgrenは最近、マウス尿路感染症13の経尿道的技術の優れたレビューを発表した。本稿では、さらにこの実験的なアプローチの細かい点を説明しよう。

初心者は、膀胱を公開する正中開腹術を行うインドインク(PBS中の1%)の希釈溶液を注入し、膀胱の青色…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

著者は彼らの専門的な技術支援のためにシェリー謝とジェニファーペインに感謝します。この作業は小児泌尿器科とスタンフォード小児研究基金協会からの助成金を戴いています。

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Cryovial tubes, 2.0 ml polypropylene (no caps)   E&K Scientific 640201  
Caps for cryovial tubes, with ‘O’ ring   E&K Scientific 440011-N  
Bullet Blender   Next Advance BBX24  
Zirconium Oxide Beads (0.5mm)   Next Advance ZROB05  
Stainless Steel Beads (1.6mm)   Next Advance SSB16  
Stainless Steel Bead Blend (0.9-2.0mm)   Next Advance SSB14B  
CBA/J Mice, 8-12 week old female   Jackson Laboratories 000656  
Phosphate Buffered Saline (NaCl 137mM, KCl 2.7mM, Na2HPO4 4.3mM, KH2PO4 1.4mM)   EMD EM-SX0420-13 (NaCl) EM-PX1405-1 (KCl) EM1.06585.0 (Na2HPO4) EM-5108-1 (KH2PO4)  
LB agar        
LB broth   EMD 1.10285.0500  
Isoflurane (Aerrane)   Baxter NDC 10019-773-60  
Inoculating loops   Fisher Scientific 22-363-601  
Eosin-methylene blue (EMB) agar powder   Himedia Laboratories MM022-500G  
MacConkey agar powder   Difco 212123  
LB agar powder   Difco 244520  
Intramedic non-radiopaque polyethylene tubing, PE10 [inner dimension 0.28 mm (0.011 inch); outer dimension 0.61 mm (0.024 inch)]   BD Biosciences 427401  
30 gauge needles, 1/2 inch   BD Biosciences 305106  
1 ml tuberculin Slip-Tip syringe   BD Biosciences 309602  
3 ml Luer-Lock syringe   BD Biosciences 309585  

References

  1. Schaeffer, A. J., Schwan, W. R., Hultgren, S. J., Duncan, J. L. Relationship of type 1 pilus expression in Escherichia coli to ascending urinary tract infections in mice. Infect Immun. 55, 373-380 (1987).
  2. Rouschop, K. M. Urothelial CD44 facilitates Escherichia coli infection of the murine urinary tract. J Immunol. 177, 7225-7232 (2006).
  3. Malaviya, R., Ikeda, T., Abraham, S. N. Contribution of mast cells to bacterial clearance and their proliferation during experimental cystitis induced by type 1 fimbriated E. coli. Immunol LettM. 91, 103-111 (2004).
  4. Lane, M. C., Alteri, C. J., Smith, S. N., Mobley, H. L. Expression of flagella is coincident with uropathogenic Escherichia coli ascension to the upper urinary tract. Proc Natl Acad Sci U S A. 104, 16669-16674 (2007).
  5. Hvidberg, H. Development of a long-term ascending urinary tract infection mouse model for antibiotic treatment studies. Antimicrob Agents Chemother. 44, 156-163 (2000).
  6. Hopkins, W. J., Hall, J. A., Conway, B. P., Uehling, D. T. Induction of urinary tract infection by intraurethral inoculation with Escherichia coli: refining the murine model. J Infect Dis. 171, 462-465 (1995).
  7. Hopkins, W. J., Gendron-Fitzpatrick, A., Balish, E., Uehling, D. T. Time course and host responses to Escherichia coli urinary tract infection in genetically distinct mouse strains. Infect Immun. 66, 2798-2802 (1998).
  8. Gunther, N. W. t., Lockatell, V., Johnson, D. E., Mobley, H. L. In vivo dynamics of type 1 fimbria regulation in uropathogenic Escherichia coli during experimental urinary tract infection. Infect Immun. 69, 2838-2846 (2001).
  9. Bishop, B. L. Cyclic AMP-regulated exocytosis of Escherichia coli from infected bladder epithelial cells. Nat Med. 13, 625-630 (2007).
  10. Thumbikat, P., Waltenbaugh, C., Schaeffer, A. J., Klumpp, D. J. Antigen-specific responses accelerate bacterial clearance in the bladder. J Immunol. 176, 3080-3086 (2006).
  11. Hagberg, L. Ascending, unobstructed urinary tract infection in mice caused by pyelonephritogenic Escherichia coli of human origin. Infect Immun. 40, 273-283 (1983).
  12. Hopkins, W. J., Hall, J. A., Conway, B. P., Uehling, D. T. Induction of urinary tract infection by intraurethral inoculation with Escherichia coli: refining the murine model. J Infect Dis. 171, 462-465 (1995).
  13. Hung, C. S., Dodson, K. W., Hultgren, S. J. A murine model of urinary tract infection. Nat Protoc. 4, 1230-1243 (2009).
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Citer Cet Article
Thai, K. H., Thathireddy, A., Hsieh, M. H. Transurethral Induction of Mouse Urinary Tract Infection. J. Vis. Exp. (42), e2070, doi:10.3791/2070 (2010).

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