Summary

L'échocardiographie et l'imagerie par ultrasons murin

Published: August 08, 2010
doi:

Summary

Cette vidéo montre l'utilisation d'un rail à haute fréquence sonde échographique pour réaliser une échocardiographie d'une souris anesthésiée. Les méthodes de décrire à la fois des mesures conventionnelles à deux dimensions et en mode M de la fonction cardiaque, en plus de nouvelles, des outils plus puissants tels que le Doppler couleur, analyse des contraintes, ainsi que l'imagerie de contraste générales et ciblées.

Abstract

Des modèles de rongeurs physiopathologie cardiaque représentent un précieux outil de recherche pour étudier un mécanisme de la maladie ainsi que de tester de nouvelles thérapies. 1 L'échocardiographie fournit un puissant, non-invasif outil pour évaluer la morphométrie en série et la fonction cardiaques chez un animal vivant. 2 Toutefois, en utilisant cette technique sur des souris pose des défis uniques en raison de la petite taille et la fréquence cardiaque rapide de ces animaux. 3 Jusqu'à récemment, les systèmes à ultrasons ont été rares capable d'effectuer une échocardiographie de qualité sur des souris, et ceux qui manquaient généralement de la résolution de l'image et la cadence nécessaire pour obtenir des mesures quantitatives vraiment . Les systèmes nouvellement libérés comme le Vevo2100 VisualSonics fournir de nouveaux outils pour les chercheurs de soin et de façon non invasive enquêter sur la fonction cardiaque chez la souris. Ce système génère des images à haute résolution et offre des capacités d'analyse semblables à ceux utilisés avec les patients humains. Bien que le Doppler couleur a été disponible pendant plus de 30 ans chez l'homme, cette précieuse technologie a récemment été possible en échographie rongeurs 4,5. Doppler couleur a de larges applications pour l'échocardiographie, y compris la capacité à évaluer rapidement la directionnalité des flux dans les vaisseaux et à travers les soupapes, et d'identifier rapidement la régurgitation valvulaire. Analyse des contraintes est un préalable essentiel qui est utilisé pour mesurer quantitativement la fonction myocardique régionale. 6 Cette technique a le potentiel de détecter des changements dans la pathologie, ou la résolution de la pathologie, plus tôt que les techniques conventionnelles. Couplé avec l'ajout de reconstruction d'image en trois dimensions, l'évaluation volumétrique de l'ensemble du organes est possible, y compris la visualisation et l'évaluation des structures cardiaques et vasculaires. L'imagerie de contraste murine-compatibles peuvent aussi permettre mesures volumétriques et d'évaluation perfusion tissulaire.

Protocol

1. Préparation pour l'imagerie Commencez par la sécurisation d'une souris isoflurane anesthésié pour une plate-forme d'animaux de manipulation en position couchée. Placer un cône de nez sur le nez de l'animal et de la bouche de livrer 0.5-1% d'isoflurane pour maintenir l'anesthésie. Fixez les pattes de la souris pour les électrodes avec gel conducteur. S'assurer que des ECG, la température corporelle à 37 ° C et vérifier la fréquence respiratoire pour l'?…

Discussion

Serial échocardiographie à haute fréquence est apparue comme un outil puissant pour les non-invasive, à haute résolution d'évaluation de la morphologie et la fonction cardiaques, en particulier dans des modèles murins de maladies cardiaques. Maintenir la température du corps physiologiques ainsi que les fréquences cardiaques comparables entre les souris en ajustant le niveau d'anesthésie avant d'acquérir des images, est essentielle à la réussite de cette méthode. Toutes les images doivent être…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les sources de financement: HL084087, HL089885, HL091475, S10RR027946, T32 GM07356

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Vevo 2100 Imaging System (120V)   Visual Sonics VS-11945  
Vevo 2100 Imaging Station 1   Visual Sonics SA-11982  
Ultrasound Gel   Parker Laboratories 01-08  
Isoflurane   Abbott Laboratories 05260-05  
Vevo Compact Dual Anesthesia System   Visual Sonics SA-12055  

References

  1. Patten, R. D., Hall-Porter, M. R. Small animal models of heart failure: development of novel therapies, past and present. Circ Heart Fail. 2, 138-144 (2009).
  2. Li, Y. Quantification and MRI Validation of Regional Contractile Dysfunction in Mice Post Myocardial Infarction Using High Resolution Ultrasound. Ultrasound in Medicine & Biology. 33, 894-904 (2007).
  3. Gardin, J. M., Siri, F. M., Kitsis, R. N., Edwards, J. G., Leinwand, L. A. Echocardiographic Assessment of Left Ventricular Mass and Systolic Function in Mice. Circ Res. 76, 907-914 (1995).
  4. JG, S. t. e. v. e. n. s. o. n., Weiler, T. B. M., EA, H. o. w. a. r. d., Eyer, M. Digital multigate Doppler with color echo and Doppler display – Diagnosis of atrial and ventricular septal defects. Circulation. 60, (1979).
  5. Patten, R. D., Aronovitz, M. J., Bridgman, P., Pandian, N. G. Use of pulse wave and color flow Doppler echocardiography in mouse models of human disease. J Am Soc Echocardiogr. 15, 708-714 (2002).
  6. Hoit, B. D. Echocardiographic characterization of the cardiovascular phenotype in rodent models. Toxicol Pathol. 34, 105-110 (2006).
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Citer Cet Article
Pistner, A., Belmonte, S., Coulthard, T., Blaxall, B. C. Murine Echocardiography and Ultrasound Imaging. J. Vis. Exp. (42), e2100, doi:10.3791/2100 (2010).

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