Summary

Productie van biologisch verkregen Injecteerbare Materialen voor myocard Tissue Engineering

Published: December 20, 2010
doi:

Summary

Werkwijzen voor het bereiden een injecteerbare gel matrix van gedecellulariseerde weefsel en het injecteren van het in rat myocardium<em> In vivo</em> Beschreven.

Abstract

Dit protocol biedt methoden voor de bereiding van een injecteerbare extracellulaire matrix (ECM) gel voor myocard tissue engineering toepassingen. In het kort, is gedecellulariseerde weefsel gevriesdroogde, gemalen, enzymatisch verteerd, en vervolgens naar fysiologische pH. Het vriesdrogen verwijdert alle water uit het weefsel, wat resulteert in droge ECM die kunnen tot een fijn poeder gemalen worden met een kleine molen. Na het malen wordt het ECM poeder verteerd met pepsine om een ​​injecteerbare matrix vormen. Na correctie tot pH 7,4, kan het vloeibare matrix-materiaal worden geïnjecteerd in het myocard. Resultaten van eerdere karakterisering assays hebben aangetoond dat matrix gels uit gedecellulariseerde pericardiale en myocardweefsel inheemse ECM componenten, waaronder diverse eiwitten, peptiden en glycosaminoglycanen te behouden. Gezien het gebruik van dit materiaal voor tissue engineering, in vivo karakterisering is vooral nuttig, hier, een methode voor het uitvoeren van een intramurale injectie in de linker ventrikel (LV) vrije wand wordt gepresenteerd als een middel om het analyseren van de gastheer respons op de matrix gel in een klein diermodel. De toegang tot de borstholte wordt verkregen door het diafragma en de injectie wordt gemaakt iets boven de apex in de LV vrije wand. De biologisch verkregen steiger kan worden gevisualiseerd door biotine-labeling vóór de injectie en vervolgens kleuren van het weefsel secties met een mierikswortel peroxidase-geconjugeerde neutravidin en visualiseren via diaminobenzidine (DAB) kleuring. Analyse van de injectie regio kan ook worden gedaan met histologische en immunohistochemische kleuring. Op deze manier werden de eerder onderzochte pericardiale en myocard matrix gels aangetoond dat vezelig, poreuze netwerken te vormen en bloedvatvorming te bevorderen binnen de injectie regio.

Protocol

1. Pre-processing Tissue Voorbereiding Voor het gebruik van dit protocol, moet men al gedecellulariseerde het weefsel van de keuze. Voor dit voorbeeld, zijn vers varkens-en menselijke hartzakje monsters gedecellulariseerde met behulp van hypotoon en hypertoon spoelingen in gedeïoniseerd (DI) water en natriumdodecylsulfaat (SDS). In het bijzonder, eerst de varkens pericard wassen in DI water gedurende 30 minuten, vervolgens continu roer er 1% SDS in fosfaat gebufferde zoutoplossing (P…

Discussion

Deze methode maakt het mogelijk voor de productie van biologisch verkregen, injecteerbare steigers voor myocardiale tissue engineering. Hoewel deze methoden werden in eerste instantie ontwikkeld voor de fabricage en in vivo testen van een myocard-matrix gel en hier gepresenteerd met een pericardiale matrix gel, dit protocol kan worden aangepast voor gebruik met elk weefsel, op voorwaarde dat het weefsel juiste manier kan worden gedecellulariseerde. Decellularisatie dient te worden uitgevoerd en voorafgaand aan …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit onderzoek werd mede ondersteund door New Innovator Award van de NIH directeur Program, een deel van de NIH Roadmap for Medical Research, de vorm van subsidieovereenkomsten nummer 1-DP2-OD004309-01. SBS-N. wil de NSF bedanken voor een Graduate Research Fellowship.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Reagents:        
Pepsin   Sigma-Aldrich p6887-1G Lyophilized
Biotin   Thermo Scientific 21217  
Neutravidin-HRP   Thomas Scientific 21130  
Equipment:        
Wiley Mini Mill   Thomas Scientific 3383L10  
Labconco Lyophilizer   Labconco, Inc 7670520  
Surgical supplies:        
Betadine   Purdue Products, L.P. 67618-154-16  
Lactated Ringers Solution   MWI 003966  
KY Jelly   MWI 28658  
Lidocaine, 2%   MWI 17767  
Buprenorphine hydrochloride   Reckitt Benckiser Healthcare (UK) Ltd. 12496-0757-1  
Artificial tear ointment   Fisher NC9860843  
Triple antibiotic ointment   Fisher 19082795  
Isoflurane   MWI 60307-120-25  
Otoscope   MWI 008699  
Stop cock   MWI 006245  
3-0 Vicrile suture   MWI J327H  
5-0 Proline suture   MWI s-1173  
Reverse cutting (RC) needle   Ethicon 8684G  
Microhemostats   Fine Science Tools 13013-14  
Rat tooth microforceps   Fine Science Tools 11084-07  
No. 10 scalpel   Fine Science Tools 10110-01  
Blunt scissors   Fine Science Tools 14108-09  
Sharp, curved scissors   Fine Science Tools 14085-08  
Large, serrated forceps   Fine Science Tools 1106-12  
PE160 suction tubing   BD 427430  
Clippers   MWI 21608  
Skin staples/stapler   Ethicon PRR35  
General supplies:        
Stir plates        
0.1 M HCl        
1 M NaOH        
10x PBS        
1x PBS        
70% Ethanol        
0.1 mL syringes        
10 mL syringe        
Q-tips        
Surgical glue        
Surgical drape        
Towel clamps        
Small hand-held vacuum        

References

  1. Seif-Naraghi, S. B., Salvatore, M. A., Magoffin-Schup, P. J., Hu, D. P., Christman, K. L. Design and characterization of an injectable pericardial matrix gel: A potentially autologous scaffold for cardiac tissue engineering. Tissue Engineering. , (2009).
  2. Freytes, D. O., Martin, J., Velankar, S. S., Lee, A. S., Badylak, S. F. Preparation and rheological characterization of a gel form of the porcine urinary bladder matrix. Biomaterials. 29, 1630-1630 (2008).
  3. Gilbert, T. W., Sellaro, T. L., Badylak, S. F. Decellularization of tissues and organs. Biomaterials. 27, 3675-3675 (2006).
  4. Liao, J., Joyce, E. M., Sacks, M. S. Effects of decellularization on the mechanical and structural properties of the porcine aortic valve leaflet. Biomaterials. 29, 1065-1065 (2008).
  5. Singelyn, J. M., DeQuach, J. A., Seif-Naraghi, S. B., Littlefield, R. B., Schup-Magoffin, P. J., Christman, K. L. Naturally derived myocardial matrix as an injectable scaffold for cardiac tissue engineering. Biomaterials. 30, 5409-5409 (2009).
  6. Christman, K. L., Vardanian, A. J., Fang, Q., Sievers, R. E., Fok, H. H., Lee, R. J. Injectable fibrin scaffold improves cell transplant survival, reduces infarct expansion, and induces neovasculature formation in ischemic myocardium. J Am Coll Cardiol. 44, 654-654 (2004).
  7. Christman, K. L., Fok, H. H., Sievers, R. E., Fang, Q., Lee, R. J. Fibrin glue alone and skeletal myoblasts in a fibrin scaffold preserve cardiac function after myocardial infarction. Tissue Eng. 10, 403-410 (2004).
  8. Huang, N. F., Sievers, R. E., Park, J. S., Fang, Q., Li, S., Lee, R. J. A rodent model of myocardial infarction for testing the efficacy of cells and polymers for myocardial reconstruction. Nat Protoc. (1), 1596-1609 (2006).
  9. Ott, H. C., Matthiesen, T. S., Goh, S. K., Black, L. D., Kren, S. M., Netoff, T. I. Perfusion-decellularized matrix: using nature’s platform to engineer a bioartificial heart. Nat Med. 14, 213-221 (2008).
  10. Badylak, S. F. The extracellular matrix as a biologic scaffold material. Biomaterials. 28, 3587-3593 (2007).
check_url/fr/2109?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Seif-Naraghi, S., Singelyn, J., DeQuach, J., Schup-Magoffin, P., Christman, K. Fabrication of Biologically Derived Injectable Materials for Myocardial Tissue Engineering. J. Vis. Exp. (46), e2109, doi:10.3791/2109 (2010).

View Video