Summary

から初代細胞培養ショウジョウバエ原腸胚

Published: February 28, 2011
doi:

Summary

私たちは、から解離初代細胞を調製するための詳細なプロトコルを提供<em> Drosophil</em>胚。その他、分子生化学的および細胞イメージング手法と一緒に、効果的なRNAiの摂動を遂行する能力は、さまざまな質問がで対処できるようになります<em>ショウジョウバエ</em>一次電池。

Abstract

ここでは、 ショウジョウバエの原腸胚からの解離の初代細胞を調製し、培養する方法を説明します。簡単に言えば、大量のは、若くて健康なハエから胚を上演、集め滅菌し、ガラスホモジナイザーを用いて、単一の細胞懸濁液にして物理的に解離されています。培地中の適切な密度で培養プレートまたはチャンバースライドに播種された後、これらの細胞は、さらにそれらの特定の細胞マーカーによって識別することができるいくつかの形態学的に異なる種類の細胞、に分化することができる。さらに、我々は、遺伝子ノックダウンを引き出すために二重鎖(ds)RNAをこれらの細胞を治療するための条件を提示する。 ショウジョウバエ初代細胞の効率的なRNAiは、単純にdsRNAを含有培養培地で細胞を浸すことによって達成される。他の分子、生化学、細胞イメージング解析とともに、効果的なRNAiの摂動を遂行する能力は、特にショウジョウバエ初代細胞、差別化された筋肉や神経細胞に関連するもので答えられるさまざまな質問ができるようになります。

Protocol

1。フライケージの準備例えば32オンスの昆虫のカップとして便利な容器にショウジョウバエを (そのようなオレゴン- Rまたは遺伝子型などの野生型株)成長する。 大胚コレクションケージに新しくeclosedハエを転送したり、人口のケージを飛ぶ。 〜25℃、湿度〜光12時間と暗12時間のサイクルで65%の同期胚の収集を容易にするための温度と部屋にケージを移動し?…

Discussion

ショウジョウバエの細胞の初代培養の発達パターンは、一次細胞調製の過程でいくつかの変数が原因の可能性が、大きく異なります。まず第一に、ハエ産卵のために使用される(古い週間以内)と健康(ウイルス性または細菌感染の自由)若いはずです。彼らは無用であり、それらの胚に由来する細胞が分化することができず、わずか1〜2日間、存続するとして、未受精卵または感染?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

JBは、デイモンラニヨンがん研究財団フェローシップDRG – 1716 – 02サポートされていました。 JZは、NIH / NIGMSフェローシップF32 GM082174 – 02によってサポートされていました。 NPは、ハワードヒューズ医学研究所の研究者でもある。

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Shields and Sang M3 medium   Sigma S3652  
Fetal bovine serum   JRH Biosciences 12103-500M  
Insulin from bovine pancreas   Sigma I-6634  
Large embryo collection cages   Genesee Scientific 59-101  
#25 US standard testing sieve   VWR 57334-454  
#45 US standard testing sieve   VWR 57334-462  
#120 US standard testing sieve   VWR 57334-474  
Dounce tissue grinder, Wheaton 7 mL   VWR 62400-620  
Dounce tissue grinder,Kontes 40 mL   VWR KT885300-0040  
Dounce tissue grinder,Kontes 40 mL   VWR KT885300-0100  
Costar, 384-well plate   VWR 29444-078  
Lab-Tek II Chambered coverglass   Fisher Scientific 171080  

References

  1. Ashburner, M., Roote, J., Sullivan, W., Ashburner, M., Hawley, R. S. . Laboratory culture of Drosophila. , 588-599 (1999).
  2. Bai, J., Hartwig, J. H., Perrimon, N. S. A. L. S. a WH2-domain-containing protein, promotes sarcomeric actin filament elongation from pointed ends during Drosophila muscle growth. Dev. Cell. 13, 828-842 (2007).
  3. Bai, J. RNA interference screening in Drosophila primary cells for genes involved in muscle assembly and maintenance . Development. 135, 1439-1449 (2008).
  4. Sepp, K. J. Identification of neural outgrowth genes using genome-wide RNAi. PloS. Genet. 4, e1000111-e1000111 (2008).
  5. Donady, J. J., Fyrberg, E. Mass culturing of Drosophila embryonic cells in vitro. TCA Manual. 3, 685-687 (1977).
  6. Seecof, R. L., Alleaume, N., Teplitz, R. L., Gerson, I. Differentiation of neurons and myocytes in cell cultures made from Drosophila gastrulae. Exp. Cell Res. 69, 161-173 (1971).
  7. Bai, J., Sepp, K. J., Perrimon, N. Culture of Drosophila primary cells dissociated from gastrula embryos and their use in RNAi screening. Nature Protocols. 4, 1502-1512 (2009).
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Citer Cet Article
Perrimon, N., Zirin, J., Bai, J. Primary Cell Cultures from Drosophila Gastrula Embryos. J. Vis. Exp. (48), e2215, doi:10.3791/2215 (2011).

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