Summary

Primaire celculturen van Drosophila Gastrula Embryo's

Published: February 28, 2011
doi:

Summary

Wij bieden een gedetailleerd protocol voor het bereiden van primaire cellen los van<em> Drosophil</em> Een embryo's. De mogelijkheid om het uitvoeren van de effectieve RNAi verstoring, samen met andere moleculaire, biochemische en cell imaging methoden zal een aantal vragen die moeten worden aangepakt<em> Drosophila</em> Primaire cellen.

Abstract

Hier beschrijven we een methode voor het bereiden en het kweken van primaire cellen los te zien van Drosophila gastrula embryo's. Kortom, een grote hoeveelheid geënsceneerde embryo's van jonge en gezonde vliegen zijn verzameld, gesteriliseerd en vervolgens fysiek gescheiden in een enkele celsuspensie met een glazen homogenisator. Na te zijn uitgeplaat op kweekplaten of kamer dia's op een passende dichtheid in een kweekmedium, kunnen deze cellen verder te differentiëren in verschillende morfologisch-verschillende soorten cellen, die kunnen worden geïdentificeerd door hun specifieke cel-markers. Daarnaast presenteren we de voorwaarden voor de behandeling van deze cellen met dubbelstrengs (ds) RNA's tot gen knockdown te lokken. Efficiënte RNAi in Drosophila primaire cellen wordt bereikt door simpelweg het wassen van de cellen in dsRNA-bevattende kweekmedium. De mogelijkheid om uitvoering van een doeltreffend RNAi verstoringen, samen met andere moleculaire, biochemische, cell imaging analyses, zal een groot aantal vragen worden beantwoord in Drosophila primaire cellen, in het bijzonder die met betrekking tot gedifferentieerde spier-en neuronale cellen.

Protocol

1. Voorbereiding van de fly kooien Grow Drosophila (wild-type stammen, zoals Oregon-R of een genotype) in handige verpakkingen zoals een 32-oz insect cups. Overdracht nieuw eclosed vliegt naar grote embryo-collectie kooien of vliegen de bevolking kooien. Verplaats de kooien in een kamer met een temperatuur van ~ 25 ° C en de luchtvochtigheid ~ 65% in een lichte 12-h en een donkere 12-h-cyclus met het verzamelen van synchrone embryo's te vergemakkelijken. Houden de v…

Discussion

De ontwikkeling patroon van primaire culturen van Drosophila-cellen kan sterk variëren, mogelijk als gevolg van de verschillende variabelen tijdens de primaire cel voorbereidingsproces. Allereerst vliegen gebruikt voor eieren leggen moet worden jonge (binnen een week oud) en gezond (vrij van virale of bacteriële infectie). Onbevruchte of geïnfecteerde embryo's moet worden vermeden, want ze zijn nutteloos en cellen afkomstig van die embryo's niet kan onderscheiden en zal alleen overleven voor 1-2 dage…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

JB werd gesteund door de Damon Runyon Cancer Research Foundation Fellowship DRG-1716-1702. JZ werd ondersteund door NIH / NIGMS Fellowship F32 GM082174-02. NP is een onderzoeker van de Howard Hughes Medical Institute.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Shields and Sang M3 medium   Sigma S3652  
Fetal bovine serum   JRH Biosciences 12103-500M  
Insulin from bovine pancreas   Sigma I-6634  
Large embryo collection cages   Genesee Scientific 59-101  
#25 US standard testing sieve   VWR 57334-454  
#45 US standard testing sieve   VWR 57334-462  
#120 US standard testing sieve   VWR 57334-474  
Dounce tissue grinder, Wheaton 7 mL   VWR 62400-620  
Dounce tissue grinder,Kontes 40 mL   VWR KT885300-0040  
Dounce tissue grinder,Kontes 40 mL   VWR KT885300-0100  
Costar, 384-well plate   VWR 29444-078  
Lab-Tek II Chambered coverglass   Fisher Scientific 171080  

References

  1. Ashburner, M., Roote, J., Sullivan, W., Ashburner, M., Hawley, R. S. . Laboratory culture of Drosophila. , 588-599 (1999).
  2. Bai, J., Hartwig, J. H., Perrimon, N. S. A. L. S. a WH2-domain-containing protein, promotes sarcomeric actin filament elongation from pointed ends during Drosophila muscle growth. Dev. Cell. 13, 828-842 (2007).
  3. Bai, J. RNA interference screening in Drosophila primary cells for genes involved in muscle assembly and maintenance . Development. 135, 1439-1449 (2008).
  4. Sepp, K. J. Identification of neural outgrowth genes using genome-wide RNAi. PloS. Genet. 4, e1000111-e1000111 (2008).
  5. Donady, J. J., Fyrberg, E. Mass culturing of Drosophila embryonic cells in vitro. TCA Manual. 3, 685-687 (1977).
  6. Seecof, R. L., Alleaume, N., Teplitz, R. L., Gerson, I. Differentiation of neurons and myocytes in cell cultures made from Drosophila gastrulae. Exp. Cell Res. 69, 161-173 (1971).
  7. Bai, J., Sepp, K. J., Perrimon, N. Culture of Drosophila primary cells dissociated from gastrula embryos and their use in RNAi screening. Nature Protocols. 4, 1502-1512 (2009).
check_url/fr/2215?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Perrimon, N., Zirin, J., Bai, J. Primary Cell Cultures from Drosophila Gastrula Embryos. J. Vis. Exp. (48), e2215, doi:10.3791/2215 (2011).

View Video