Summary

Зажим Patch и перфузии Методы изучения ионных каналов, выраженные в Xenopus Ооцитов

Published: January 10, 2011
doi:

Summary

Ионный ток BK каналы записываются с использованием методов патч зажим. BK каналов выражаются в<em> Xenopus ооцитов</em> Путем введения информационной РНК. Внутриклеточного раствора в процессе записи патча зажим контролируется перфузии системы.

Abstract

Протокол, представленный здесь, предназначен для изучения активации большого проводимость, напряжение и Са 2 +-активированной K + (BK) каналов. Протокол также может быть использован для изучения структурно-функциональных отношений для других ионных каналов и рецепторов нейромедиаторов 1. BK каналов широко выражается в различных тканях и был замешан во многих физиологических функций, в том числе регулирование гладких мышц, частота настройки внутренних волосковых клеток и регуляции нейротрансмиттеров выпуск 2-6. BK каналы активируются деполяризацию мембраны и внутриклеточного Са 2 + и Mg 2 + 6-9. Таким образом, протокол предназначен для управления и напряжение мембраны и внутриклеточные решение. В этом протоколе РНК БК каналы вводят в Xenopus laevis ооциты (этап V-VI), а затем на 2-5 дней инкубации при 18 ° С 10-13. Мембранные патчи, которые содержат одну или несколько BK каналы вырезали с наизнанку конфигурации с помощью патча зажим методы 10-13. Внутриклеточной стороне патч озарен искомые решения во время записи, так что канал активации при различных условиях могут быть рассмотрены. Подводя итог, мРНК BK каналы вводят в Xenopus laevis ооциты выразить канала белков на ооцит мембраны; методы патч зажим используется для записи ток, протекающий через каналы в контролируемых напряжением и внутриклеточных решений.

Protocol

1. Введение мРНК в ооциты Inject 0,05 – 50 нг РНК, которая была переписана в пробирке в Xenopus laevis ооциты (этап V-VI) с использованием Nanoject II Auto-Nanoliter Инжектор (Драммонд Научно компании, модель 3-000-204). Повторите инъекции на десятках ооцитов для каждой мРНК. Промойте ооциты вводят д?…

Discussion

Система ооцитов выражение идеально подходит для электрофизиологических характеристик напряжения зависит от ионных каналов из-за относительно низкой фоне эндогенной каналов. Кроме того, так как она является переходным системы экспрессии, она обеспечивает эффективный метод проведен?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Работа выполнена при поддержке Национального института здоровья грантов R01-R01 и HL70393-NS060706 к JCJC является профессор биомедицинской инженерии на Спенсера Т. Олина фонда.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Nanoject II Auto-Nanoliter Injector   Drummond Scientific Company 3-000-204  
P-97 Flaming/Brown Micropipette Puller   Sutter Instruments P-97  
Perfusion System and Electronic Controller   AutoMate Scientific, Inc. ValveLink 16 Inner diameter of perfusion tip: 100 microns
Inverted Microscope   Olympus CKX31  
Glass Pipettes   VWR International 53432-921  
Flaming/Brown Micropipette Puller   Sutter Instrument Co. P-97  
Amplifier   Axon Instruments AXOPATCH 200B  
Computer Interface   INSTRUTECH Corporation ITC-18  
Headstage   Axon Instruments CV 203BU  

References

  1. Methfessel, C. Patch clamp measurements on Xenopus laevis oocytes: currents through endogenous channels and implanted acetylcholine receptor and sodium channels. Pflügers Arch. 407, 577-588 (1986).
  2. Toro, L., Wallner, M., Meera, P., Tanaka, Y. Maxi-K (Ca), Unique Member of the Voltage-Gated K Channel Superfamily. News Physiol. Sci. 13, 112-117 (1998).
  3. Fettiplace, R., Fuchs, P. A. Mechanisms of hair cell tuning. Annu. Rev. Physiol. 61, 809-834 (1999).
  4. Du, W. Calcium-sensitive potassium channelopathy in human epilepsy and paroxysmal movement disorder. Nat. Genet. 37, 733-738 (2005).
  5. Ledoux, J., Werner, M. E., Brayden, J. E., Nelson, M. T., T, M. Calcium-activated potassium channels and the regulation of vascular tone. Physiology (Bethesda). 21, 69-78 (2006).
  6. Salkoff, L. High-conductance potassium channels of the SLO family. Nat. Rev. Neurosci. 7, 921-931 (2006).
  7. Shi, J., Cui, J. Intracellular Mg2+ enhances the function of BK-type Ca2+-activated K+ channels. J. Gen. Physiol. 118, 589-606 (2001).
  8. Magleby, K. L. Gating mechanism of BK (Slo1) channels: so near, yet so far. J. Gen. Physiol. 121, 81-96 (2003).
  9. Latorre, R., Brauchi, S. Large conductance Ca2+-activated K+ (BK) channel: activation by Ca2+ and voltage. Biol. Res. 39, 385-401 (2006).
  10. Cox, D. H., Cui, J., Aldrich, R. W., W, R. Allosteric gating of a large conductance Ca-activated K+ channel. J. Gen. Physiol. 110, 257-281 (1997).
  11. Cui, J., Aldrich, R. W. Allosteric linkage between voltage and Ca2+-dependent activation of BK-type mslo1. K+ channels. Biochemistry. 39, 15612-15619 (2000).
  12. Yang, H. Activation of Slo1 BK channels by Mg2+ coordinated between the voltage sensor and RCK1. 15, 1152-1159 (2008).
  13. Lee, U. S., Cui, J. {beta} subunit-specific modulations of BK channel function by a mutation associated with epilepsy and dyskinesia. J. Physiol. , 587-1481 (2009).

Play Video

Citer Cet Article
Yang, J., Delaloye, K., Lee, U. S., Cui, J. Patch Clamp and Perfusion Techniques for Studying Ion Channels Expressed in Xenopus oocytes. J. Vis. Exp. (47), e2269, doi:10.3791/2269 (2011).

View Video