Summary

Agar-Block Microcosmi per decomposizione controllata tessuti vegetali da Funghi aerobica

Published: February 03, 2011
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Summary

Questo video dimostra un approccio controllato ambiente per studiare la degradazione dei tessuti vegetali lignocellulosici da funghi aerobico. La capacità di controllare le fonti di nutrienti e l'umidità è un vantaggio chiave di agar-block microcosmi, ma l'approccio produce spesso alterne fortune. Ci rivolgiamo insidie ​​critici cedere riproducibile, a bassa variabilità dei risultati.

Abstract

I due metodi principali per lo studio biodegradazione fungine dei tessuti vegetali lignocellulosiche sono stati sviluppati per i test del legno (suolo-block; agar-block). E 'ben accettato che il suolo-block microcosmi rendimenti più elevati tassi di decadimento, meno problemi di umidità, bassa variabilità tra gli studi, e soglie più elevate di tossicità conservante. Suolo-block test è quindi la tecnica più utilizzata ed è stato standardizzato dalla American Society for Testing and Materials (ASTM) (metodo D 1413-07). Il terreno blocco design è inconvenienti, però, utilizzando fonti suolo localmente variabile e nel limitare il controllo delle sostanze nutritive esterna (esogena) ai tessuti in decomposizione. Questi svantaggi sono emersi come un problema per l'applicazione di questo metodo per gli altri, ha come obiettivo la ricerca sempre più popolare. Questi obiettivi includono moderni legnocellulosa degradante per la ricerca per la bioenergia, il collaudo biorisanamento di co-metabolizzata sostanze tossiche, valutando i meccanismi ossidativi e il monitoraggio elementi traslocato lungo le reti ifale. Suolo blocchi non prestano abbastanza controllo in queste applicazioni. Un raffinato agar-block approccio è necessario.

Qui usiamo il marciume bruno legno degradanti fungo lacrymans Serpula a degradare legno in agar-blocco microcosmi, con profondo Petri con basso contenuto di calcio agar. Testiamo il ruolo di esogeni gesso su decadimento in una serie temporale, per dimostrare l'utilità e la variabilità attesa. Isolati da una singola scheda rip (taglio longitudinale) sono condizionati, pesato, in autoclave, e introdotto in modo asettico in cima a una rete di plastica. Vaccinazioni fungine sono in ogni faccia del blocco, con esogena gesso aggiunti alle interfacce. Raccolti sono asettiche fino al raccolto finale distruttivo. Questi microcosmi sono progettati per evitare il contatto blocco con agar o pareti piastra di Petri. Condensa è ridotto al minimo durante piatto versa e durante l'incubazione. Infine, l'inoculo / gesso / legno spazio è ridotto al minimo, ma senza permettere contatto. Questi aspetti meno tecnici di agar-block design sono anche le cause più comuni di fallimento e la principale fonte di variabilità tra gli studi. Pubblicazione del video è quindi utile in questo caso, e dimostriamo a bassa variabilità, risultati di alta qualità.

Protocol

Questo protocollo si applica a substrati legnosi e non legnosi, come indicato, oltre al materiale forno o aria secca. Leggere il primo protocollo, tuttavia, prima di set-up. Ci sono diversi punti sollevati che potrebbero valere per il vostro studio, e questi punti (sottolineato) richiedono una pianificazione. Si noti inoltre che ci sono due pubblicati agar-block metodi che sono a volte utilizzati, uno dei British Standard 838 e un altro a seguito di un gruppo di ricerca internazionale per la protezione del legno (IRG-WP…

Discussion

Utilizzando il nostro agar-block set-up (Figura 1) lacrymans Serpula cresciuto a diretto contatto con le superfici in gesso e in blocchi di legno (Figura 2), portando a oltre il 60% di perdita di peso nel marrone-decomporsi controllo blocchi di pino (Figura 3 ). Questo soddisfa facilmente l'obiettivo standard ASTM di decadimento> 50% e il coefficiente medio di variazione (C V) nel decadimento in era 0,055 alla settimana 16. Questi dati vengono pubblicati in Schilling 7. Ancora una v…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Petri dishes   Nunc 4014 25 x 150 mm
Agar, Type A   Sigma A4550  
Ammonium nitrate, NH4NO3   Millinckrodt 3436-12  
Potassium phosphate, KH2PO4   J.T. Baker 3246-01  
Magnesium sulfate 7-hydrate, MgSO4•7H2O   Sigma 230391  
D-(+)-Glucose   Sigma G8270 Dextrose
Boric acid, H3BO4   Mallinckrodt 2549-04  
Zinc sulfate 7-hydrate, ZnSO4•7H2O   Mallinckrodt 8880-12  
Manganous chloride 4-hydrate, MnCl2•4H2O   J.T. Baker 2540-04  
Copper(II) sulfate 5-hydrate, CuSO4•5H2O   Sigma 209198  
Ammonium heptamolybdate 4-hydrate, (NH4)6Mo7O24•4H2O   Sigma-Aldrich 431346  
Calcium chloride dihydrate, CaCl2•2H2O   Mallinckrodt 4160-12  
Sodium chloride, NaCl   Mallinckrodt 7581-12  
Ferrous sulfate 7-hydrate, FeSO4•7H2O   Mallinckrodt 5056-12  
Pipet-aid   Drummond 4-000-110 Cordless
EtOH the surface
10 ml sterile polystyrene pipette   BD Biosciences 357551  
Gutter Guard   Thermwell Products Co. VX620 Pre-scrubbed with soap
Hardware store
Calcium sulfate hemihydrate, CaSO4•0.5H2O   Acros Organics 385355000  
#4 cork borer   Boekel 1601  
Parafilm “M”   Pechiney PM-996  

References

  1. ASTM D1413-07. Standard test method for testing wood preservatives by laboratory soil-block cultures. . Annual Book of ASTM Standards. , 185-192 (2007).
  2. Bravery, A. F. . A miniaturized wood block for the rapid evaluation of wood preservative fungicides. , (1978).
  3. Low, G. A., Young, M. E., Martin, P., Palfreyman, J. W. Assessing the relationship between the dry rot fungus Serpula lacrymans and selected forms of masonry. Int. Biodeterior. Biodegrad. 46, 141-150 (2000).
  4. Nicolas, D. Volume I (One/1) – Degradation and Protection of Wood (Syracuse Wood Science Series #5). Wood Deterioration and Its Prevention by Preservative Treatments. , (1973).
  5. Schilling, J. S. Effects of calcium-based materials and iron impurities on wood degradation by the brown rot fungus Serpula lacrymans. Holzforschung. 64, 93-99 (2010).
check_url/fr/2283?article_type=t

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Citer Cet Article
Schilling, J. S., Jacobson, K. B. Agar-Block Microcosms for Controlled Plant Tissue Decomposition by Aerobic Fungi. J. Vis. Exp. (48), e2283, doi:10.3791/2283 (2011).

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