Summary

マウス神経堤幹細胞の培養のためのニワトリ胚抽出物の製造

Published: November 27, 2010
doi:

Summary

in vitroで神経堤幹細胞(NCSC)を育成するために、特殊な培地(NCSCM)が必要です。 NCSCMの本質的な部分は、ニワトリ胚抽出物(CEE)です。ここでは、分離、浸軟、遠心分離、およびろ過プロセスなどの詳細を含む、純粋で高品質CEEの最大化量を、生成する正確なテクニックを説明します。

Abstract

神経堤は、胚発生中に神経外胚葉から発生し、一時的にしか保持されます。初期の実験は、すでに神経堤1の重要部分であると多能性前駆細胞をへのドア。表現型、神経堤幹細胞(NCSC)を同時に神経堤2,3,4,5から、その移行中にP75(低アフィン神経成長因子受容体、LNGFR)とSOX10の発現によって定義されます。これらの前駆細胞は平滑筋細胞、クロム親和性細胞、神経細胞とグリア細胞だけでなく、メラノサイト、軟骨や骨6,7,8,9に分化することができる。 in vitroで NCSCを育成するために、特別な神経堤幹細胞の培地(NCSCM)が10必要です。 NCSCMの最も複雑な部分は、NCSCのためだけでなく、神経外植片の他の種​​類の成長因子の本質的なソースを表すニワトリ胚抽出物(CEE)の準備です。 CEEの横にある他のNCSCM成分は市販されている。それは分離、浸軟、遠心分離、およびろ過プロセスなどの挑戦的な詳細を知るために非常に重要であるCCE使用して実験室の標準機器を生産。このプロトコルでは、純粋かつ高品質CEEの最大化の量を生産するために、正確なテクニックを説明します。

Protocol

動物実験は動物実験で定められている実験的な手続きと規制のための動物の管理と使用に関するNI​​Hのガイドラインに従って、欧州共同体理事会指令(86/609/EEC)に準拠して行われたという著者らの状態ケアとデュースブルク – エッセン大学(ドイツ)での委員会(IACUC)を使用してください。 パート1:(ビデオで示されていない)の設定 (インキ?…

Discussion

このプロトコルは過去10,11に記載されている手順の変更に基づいています。前者の出版物に加えて、我々はここで、プロセスの個々の異なるステップより多くの拡張を示します。これが正しい手続きで信頼性の高い成果を保証する重要な詳細と実験者をサポートしています。さらに、解剖プロセスとして我々は細部に卵黄の袋から胚を取り出すの手順を記述するCEEの抽出の重要な部分…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

マルクスPajtlerとロバートボーラーのサポートやアドバイスは、このプロトコルの可視化のための非常に貴重でした。

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
11 days incubated chicken eggs   Sörries-Trockels Vermehrungszucht GmbH & Co.KG    
Alcoholic disinfection spray   Schülke & Mayr GmbH    
DMEMGlutamax   GIBCO Invitrogen    
Syringe sterile (60 ml)   BD Biosciences    
Tubes sterile (50; 15 ml)   Greiner Bio-One GmbH    
Pipet tips sterile   Starlab GmbH    
Hyaluronidase typeIV-S   Sigma-Aldrich    
Milipore stericups sterile (0.45; 0.22 μl)   Fisher Scientific AG    
Pipettes sterile (25; 10; 5 ml)   Greiner Bio-One GmbH    
Centrifuge L5-50   Rotor type Ti-45    

References

  1. Bronner-Fraser, M., Fraser, S. E. Cell lineage analysis reveals multipotency of some avian neural crest cells. Nature. 335, 161-164 (1988).
  2. Stemple, D. L., Anderson, D. J. Isolation of a stem cell for neurons and glia from the mammalian neural crest. Cell. 71, 973-985 (1992).
  3. Rao, M. S., Anderson, D. J. Immortalization and controlled in vitro differentiation of murine multipotent neural crest stem cells. J Neurobiol. 32, 722-746 (1997).
  4. Paratore, C., Goerich, D. E., Suter, U., Wegner, M., Sommer, L. Survival and glial fate acquisition of neural crest cells are regulated by an interplay between the transcription factor Sox10 and extrinsic combinatorial signaling. Cell. 128, 3949-3961 (2001).
  5. Kim, J., Lo, L., Dormand, E., Anderson, D. J. SOX10 maintains multipotency and inhibits neuronal differentiation of neural crest stem cells. Neuron. 38, 17-31 (2003).
  6. Anderson, D. J., Groves, A., Lo, L., Ma, Q., Rao, M., Shah, N. M., Sommer, L. Cell lineage determination and the control of neuronal identity in the neural crest. Review Cold Spring Harb Symp Quant Biol. 62, 493-504 (1997).
  7. Dorsky, R. I., Moon, R. T., Raible, D. W. Environmental signals and cell fate specification in premigratory neural crest. Review Bioessays. 22, 708-716 (2000).
  8. Sieber-Blum, M. Factors controlling lineage specification in the neural crest. Int Rev Cytol. 197, 1-33 (2000).
  9. Dupin, E., Real, C., Ledouarin, N. The neural crest stem cells: control of neural crest cell fate and plasticity by endothelin-3. Int Rev Cytol. 73, 533-545 (2001).
  10. Maurer, J., Fuchs, S., Jäger, R., Kurz, B., Sommer, L., Schorle, H. Establishment and controlled differentiation of neural crest stem cell lines using conditional transgenesis. Differentiation. 75, 890-891 (2007).
  11. Wu, Y. Y., Mujtaba, T., Rao, M. S. Isolation of stem and precursor cells from fetal tissue. Methods Mol Biol. 198, 29-40 (2002).
check_url/fr/2380?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Pajtler, K., Bohrer, A., Maurer, J., Schorle, H., Schramm, A., Eggert, A., Schulte, J. H. Production of Chick Embryo Extract for the Cultivation of Murine Neural Crest Stem Cells. J. Vis. Exp. (45), e2380, doi:10.3791/2380 (2010).

View Video