Summary

הערכה Respirometric זרחון חמצוני ב-Saponin permeabilized סיבים לב

Published: February 28, 2011
doi:

Summary

Saponin-permeabilized הכנה סיבים בשילוב עם ניתוח respirometric זרחון חמצוני מספק הערכה אינטגרטיבית של תפקוד המיטוכונדריה. הנשימה מיטוכונדריאלי במדינות פיזיולוגיים ופתולוגיים יכול לשקף השפעות רגולטוריות שונות, כולל אינטראקציות המיטוכונדריה, מורפולוגיה וביוכימיה.

Abstract

חקירת תפקוד המיטוכונדריה מהווה פרמטר חשוב בפיזיולוגיה של הלב כמו המיטוכונדריה מעורבים במטבוליזם של אנרגיה, סטרס חמצוני, אפופטוזיס, הזדקנות, encephalomyopathies המיטוכונדריה רעילות התרופה. לאור זאת, טכנולוגיות למדוד תפקוד המיטוכונדריה לב יש ביקוש. אחת הטכניקות המעסיקה גישה אינטגרטיבית למדוד תפקוד המיטוכונדריה היא respirometric ניתוח חמצוני (OXPHOS) זירחון.

עקרון הערכה OXPHOS respirometric מושתתת על מדידת ריכוז החמצן ניצול אלקטרודה קלארק. כמו חבילת סיבי permeabilized צורכת חמצן, ריכוז החמצן יורדת לחדר סגור. שימוש נבחר מצע מעכבי-uncoupler פרוטוקולים טיטרציה, האלקטרונים ניתנים אתרים ספציפיים של שרשרת הובלת האלקטרונים, המאפשר הערכה של תפקוד המיטוכונדריה. טכניקות הכנה לפני ניתוח respirometric של תפקוד המיטוכונדריה, מכני וכימי מנוצלים permeabilize sarcolemma של סיבי שריר. Permeabilization כימית מעסיקה saponin סלקטיבי לנקב את קרום התא, תוך שמירה על הארכיטקטורה התאית.

מאמר זה מתאר את השלבים ביסודיות מעורבים בהכנת saponin עור סיבי לב עבור מדידות צריכת החמצן להעריך OXPHOS המיטוכונדריה. בנוסף, פתרון בעיות עצה כמו גם מצעים ספציפי, מעכבי ו uncouplers כי ניתן להשתמש כדי לקבוע את תפקוד המיטוכונדריה באתרים ספציפיים של שרשרת הובלת האלקטרונים מסופקים. חשוב לציין, פרוטוקול המתואר ניתן ליישם בקלות ברקמת הלב ואת השלד של מודלים של בעלי חיים שונים דגימות אנושיות.

Protocol

1. מגיב הכנה הפתרון הרפיה ושימור (RP Solution) מוכנה כפי שתואר לעיל עם שינויים קלים 1. בקיצור, פתרון RP מורכב 2.77mM CaK 2 EGTA, 7.23mM K 2 EGTA, imidazole 20mm, 0.5mm dithiothreitol, טאורין 20mm, 50mm K-MES, 6.56 MgCl 2, 5.7mM ATP, phosphocreatine 14.3mM, pH 7.1, מנוכ…

Discussion

הטכניקה saponin-permeabilized סיבים לב מציעה פשרה ייחודית בין במבחנה vivo הערכה של צריכת OXPHOS המיטוכונדריה חמצן. היתרונות של שיטה זו כוללים גדל רלוונטיות פיזיולוגיים לעומת המיטוכונדריה מבודד כמו ארכיטקטורה הסלולר נשמרת. בעוד הממברנה הפלסמטית נפגעת, מבנים תאיים קרום המיטוכ…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

מחקר זה מומן על ידי מכוני הבריאות הקנדי למחקר הגנום קנדה. JS מחזיק תמיכה משכורת פרסים מן המורשת אלברטה קרן למחקר רפואי לב, ושבץ קרן של קנדה איגוד הסוכרת הקנדית. המעבדה רוצה להכיר סיוע טכני של מכשירים Oroboros במהלך רכישת טכניקה saponin-permeabilized סיבים.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
100% Ethanol   Fisher Scientific HC600  
70% Ethanol   Fisher Scientific HC-1000  
Adenosine 5′-diphosphate monopotassium salt dihydrate (ADP)   Sigma A5285  
Albumin from bovine serum essentially fatty acid–free   Sigma A-6003  
Antimycin A   Sigma A8674  
Ascobic acid   Sigma A4403  
Adenosine 5′-triphosphate disodium salt hydrate (ATP)   Sigma A2383  
Atractyloside   Sigma A6882  
Calcium carbonate   Sigma C4830  
Carbonyl cyanide p-(trifluoromethoxy) phenylhydrazone (FCCP)   Sigma C2920  
Cytochrome c   Sigma C7752  
Digitonin   Sigma D141  
Dithiothreitol   Sigma D9779  
Ethylene glycol-bis-(2-aminoethylether)-N,N,N′,N′-tetraacetic acid (EGTA)   Sigma E4378  
Glutamic acid   Sigma 27647  
HEPES   Sigma H4034  
Imidazole   Sigma I5513  
Ketamine   Pfizer   Ketaset
Lactobionic acid   Sigma 153516  
Magnesium chloride (MgCl2)   Sigma M9272  
Magnesium chloride hexahydrate (MgCl2∙6H2O)   Sigma M9272  
Malic acid   Sigma M1000  
MES   Sigma M3671  
N,N,N’,N’-Tetramethyl- pphenylenediamine Dihydrochloride (TMPD)   Sigma T3134  
Oligomycin   Sigma O4876  
Phosphocreatine   Sigma P7936  
Potassium Chloride   Sigma P9541  
Potassium Hydroxide   Sigma P5958  
Potassium cyanide   Fluka 60178  
Potassium phosphate monobasic   Sigma P5655  
Rotenone   Sigma R8875  
Saponin   Sigma 47036  
Sodium Pentobarbital   Ceva Sante Animale 1715 138 Conc. 54.7 mg/ml
Sodium pyruvate   Sigma P2256  
Succinic acid   Sigma S3674  
Sucrose   Sigma S7903  
Taurine   Sigma T8691  
Xylazine   Bayer   Rompun
ddH2O        
Ice        
Oroboros Oxygraph-2k   Oroboros Instruments    
Kimwipes   VWR 21905-026  
15ml polypropylene centrifuge tubes   VWR 89004-368  
50ml polypropylene centrifuge tubes   VWR 89004-364  
Straight Jewelers Forceps   George Tiemann & Co. 160-50B  
Curved Jewelers Forceps   George Tiemann & Co. 160-57B  
Straight Surgery Scissors   George Tiemann & Co. 105-402  
Sterile Surgical Blade   VWR BD371610  
0.45-μm Syringe filters   VWR CA28145-485  
pH meter   VWR CA11388-308  
Glass Petri dishes   VWR 89000-300  
12-well Polystyrene Tissue Culture Plates   VWR 82050-926  
Plate Stirrer   VWR 97042-594  
Fisherbrand Microbars   Fisher Scientific 14-511-67  
Weigh Scale   VWR CA11278-162  
10μl Hamilton Micro Syringe   Fisher Scientific 14-815-1  
25μl Hamilton Micro Syringe   Fisher Scientific 14-824-7  
50μl Hamilton Micro Syringe   Fisher Scientific 14-824-5  
Nalgene Squeeze Bottles   Wilkem Scientific LNA2407-1000  
Polystyrene Weighing Dishes   VWR 89106-750  
Dissecting Microscope   Olympus    

References

  1. Saks, V. A., Veksler, V. I., Kuznetsov, A. V. Permeabilized cell and skinned fiber techniques in studies of mitochondrial function in vivo. Mol Cell Biochem. 184, 81-100 (1998).
  2. Gnaiger, E., Kuznetsov, A. V., Schneeberger, S., Heldmaier, G., Klingenspor, M. Mitochondria in the cold. Life in the Cold. , 431-442 (2000).
  3. Rasmussen, H. N., Rasmussen, U. F. Oxygen solubilities of media used in electrochemical respiration measurements. Anal Biochem. 319, 105-113 (2003).
  4. Visscher, G. D. e., Rooker, S., Jorens, P. Pentobarbital fails to reduce cerebral oxygen consumption early after non-hemorrhagic closed head injury in rats. J Neurotrauma. 22, 793-806 (2005).
  5. Kuznetsov, A. V., Veksler, V., Gellerich, F. N. Analysis of mitochondrial function in situ in permeabilized muscle fibers, tissues and cells. Nat Protoc. 3, 965-976 (2008).
  6. Gnaiger, E. Oxygen conformance of cellular respiration. A perspective of mitochondrial physiology. Adv Exp Med Biol. 543, 39-55 (2003).
  7. Gnaiger, E. Capacity of oxidative phosphorylation in human skeletal muscle: new perspectives of mitochondrial physiology. Int J Biochem Cell Biol. 41, 1837-1845 .
  8. Sena, S., Hu, P., Zhang, D. Impaired insulin signaling accelerates cardiac mitochondrial dysfunction after myocardial infarction. J Mol Cell Cardiol. 46, 910-918 (2009).
  9. Boudina, S., Sena, S., O’Neill, B. T. Reduced mitochondrial oxidative capacity and increased mitochondrial uncoupling impair myocardial energetics in obesity. Circulation. 112, 2686-2695 (2005).
  10. Lenaz, G., Genova, M. L. Structure and organization of mitochondrial respiratory complexes: a new understanding of an old subject. Antioxid Redox Signal. 12, 961-1008 .
  11. Lemieux, H., Hoppel, C. L. Mitochondria in the human heart. J Bioenerg Biomembr. 41, 99-106 (2009).
  12. O, . Retarded diffusion of ADP in cardiomyocytes: possible role of mitochondrial outer membrane and creatine kinase in cellular regulation of oxidative phosphorylation. Biochim Biophys Acta. 1144, 134-148 (1993).
  13. Endo, M., Kitazawa, T., Morad, M. E-C coupling studies in skinned cardiac fibers. Biophysical Aspects of Cardiac Muscle. , 307-327 (1978).
  14. Veksler, V. I., Kuznetsov, A. V., Sharov, V. G. Mitochondrial respiratory parameters in cardiac tissue: a novel method of assessment by using saponin-skinned fibers. Biochim Biophys Acta. 892, 191-196 (1987).
  15. Bangham, A. D., Horne, R. W., Glauert, A. M. Action of saponin on biological cell membranes. Nature. , 196-952 (1962).
  16. Daum, G. Lipids of mitochondria. Biochim Biophys Acta. 822, 1-42 (1985).
  17. Milner, D. J., Mavroidis, M., Weisleder, N. Desmin cytoskeleton linked to muscle mitochondrial distribution and respiratory function. J Cell Biol. 150, 1283-1298 (2000).
  18. Skladal, D., Sperl, W., Schranzhofer, R., Skladal, E., Gellerich, F., Wyss, M. Preservation of mitochondrial functions in human skeletal muscle during storage in high energy preservation solution (HEPS). What is Controlling Life?. , 268-271 (1994).
  19. Kuznetsov, A. V., Wiedemann, F. R., Winkler, K. Use of saponin-permeabilized muscle fibers for the diagnosis of mitochondrial diseases. Biofactors. 7, 221-223 (1998).
  20. Gnaiger, E., Dykens, J., Will, Y. Polarographic oxygen sensors, the oxygraph and high-resolution respirometry to assess mitochondrial function. Drug-Induced Mitochondrial Dysfunction. , 327-352 (2008).
check_url/fr/2431?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Hughey, C. C., Hittel, D. S., Johnsen, V. L., Shearer, J. Respirometric Oxidative Phosphorylation Assessment in Saponin-permeabilized Cardiac Fibers. J. Vis. Exp. (48), e2431, doi:10.3791/2431 (2011).

View Video