Summary

Bedöma Signalering egenskaper Ectodermal epitel Under Kraniofaciala utveckling

Published: March 24, 2011
doi:

Summary

Den här artikeln beskriver en teknik vävnadstransplantation som var utformat för att testa signalsystemet och egenskaper mönstring av ytor cefaliska ektoderm under kraniofaciala utveckling.

Abstract

Tillgängligheten av aviär embryon har hjälpt experimentell embryologer förstå öden celler under utveckling och roll vävnad interaktioner som reglerar mönstring och morfogenes av ryggradsdjur (t.ex. 1, 2, 3, 4). Här visar vi en metod som utnyttjar denna tillgänglighet för att testa signalering och egenskaper mönstring av ektodermal vävnader vid ansikts utveckling. I dessa försök skapar vi vaktel-chick 5 eller mus-chick 6 chimärer genom att transplantera ytan cefaliska ektoderm som täcker den övre käken från vaktel eller musen på antingen samma region eller en ektopisk region kycklingembryon. Användningen av vaktlar som givare vävnad för transplantation till kycklingar har utvecklats för att dra fördel av en nucleolar markör som finns i vaktlar men inte kycklingembryoceller, vilket gör utredare att skilja värd och vävnader donator 7. Likaså är ett återkommande inslag som finns i musens arvsmassa och uttrycks ubiquitously, som tillåter oss att skilja värd och vävnader givare mus-chick chimärer 8. Att använda musen ektoderm som givare vävnad kommer kraftigt att utöka vår förståelse för dessa vävnad interaktioner, eftersom detta ger oss möjlighet att testa signalering egenskaper ektoderm härleds från olika mutant embryon.

Protocol

1. Förbereda givare Tissue Förbered kulturmedia slipa glas stift, vässa volfram nålar. Samla embryo från Shell, tvätta i iskallt PBS. Använd en 10 ml spruta och en 18 gauge nål bort 1,0 ml av albumin från den spetsiga änden av äggskal. Gör ett litet hål på toppen av skalet med den punkt sax och klipp sedan en rund öppning att exponera embryot Ta bort huvud och placera i DMEM (serum gratis, rumstemperatur) Dissekera Fronto…

Discussion

Med denna transplantation metoden har vi kunnat fastställa att ektoderm innehåller signalering information som reglerar dorsoventral polaritet och proximodistal förlängning av överkäken. Likheten mellan resultat vid användning av vaktel eller musen ektoderm, och bevarandet av molekylära signaler i denna vävnad bland många arter 6,11 indikerar att detta är ett starkt konservativa signalering centrum bland ryggradsdjuren. Dessutom har andra forskare använt liknande tekniker för att testa signalerin…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete har finansierats av R01-DE018234 och R01-DE019638.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
1x PBS   TEK TEKZR114  
DMEM   UCSF CCFDA003  
BSA   SIGMA A7906  
Dispase   GIBCO 17105-041  
35×10 mm Petri dish   Falcon 1008  
No. 5 Dumont forceps   Fine Science Tools 11252-20  
Scissors   Fine Science Tools 14058-11  
Spring Scissors   Fine Science Tools 15010-11  
Needle holder   Fine Science Tools 26016-12  
Tungsten Needle   Fine Science Tools 26000  
Microcapillary tube   Drummond Scientific Company 3-000-225-G  
Pasteur Pipets   Fisher 13-678-6B  
Spring scissors   Fine Science Tools 15010-11  
Blade holder   Fine Science Tools 10052-11  
Razor blade   Fine Science Tools 10050-00  

References

  1. Noden, D. M. The Role of the Neural Crest in Patterning of Avian Cranial Skeletal, Connective, and Muscle Tissues. Biologie du développement. 96, 144-144 (1983).
  2. Bronner-Fraser, M., Stern, C. Effects of Mesodermal Tissues on Avian Neural Crest Cell Migration. Biologie du développement. 143, 213-213 (1991).
  3. Schneider, R. A. Neural crest can form cartilages normally derived from mesoderm during development of the avian head skeleton. Biologie du développement. 208, 441-441 (1999).
  4. Couly, G. Interactions between Hox-negative cephalic neural crest cells and the foregut endoderm in patterning the facial skeleton in the vertebrate head. Development. 129, 1061-1061 (2002).
  5. Evans, D. J., Noden, D. M. Spatial relations between avian craniofacial neural crest and paraxial mesoderm cells. Dev Dyn. , (2006).
  6. Hu, D., Marcucio, R., Helms, J. A. A zone of frontonasal ectoderm regulates patterning and growth in the face. Development. 130, 1749-1749 (2003).
  7. Hu, D., Marcucio, R. S. Unique organization of the frontonasal ectodermal zone in birds and mammals. Dev Biol. 325, 200-200 (2009).
  8. Le Lièvre, C. S., Le Douarin, N. M. Mesenchymal derivatives of the neural crest: analysis of chimaeric quail and chick embryos. Journal of Embryology and Experimental Morphology. 34, 125-125 (1975).
  9. Bollag, R. J. Use of a repetitive mouse B2 element to identify transplanted mouse cells in mouse-chick chimeras. Exp Cell Res. 248, 75-75 (1999).
  10. Korn, M. J., Cramer, K. S. Windowing chicken eggs for developmental studies. J Vis Exp. , (2007).
  11. Eames, B. F., Schneider, R. A. Quail-duck chimeras reveal spatiotemporal plasticity in molecular and histogenic programs of cranial feather development. Development. 132, 1499-1499 (2005).
  12. Odent, S. Expression of the Sonic hedgehog (SHH ) gene during early human development and phenotypic expression of new mutations causing holoprosencephaly. Hum Mol Genet. 8, 1683-1683 (1999).
  13. Szabo-Rogers, H. L. Novel skeletogenic patterning roles for the olfactory pit. Development. 136, 219-219 (2009).
check_url/fr/2557?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Hu, D., Marcucio, R. S. Assessing Signaling Properties of Ectodermal Epithelia During Craniofacial Development. J. Vis. Exp. (49), e2557, doi:10.3791/2557 (2011).

View Video