Summary

Imaging glycans i Zebrafish embryon genom Metabola märkning och Bioorthogonal Klicka Kemi

Published: June 06, 2011
doi:

Summary

Ett klick-kemi baserad metod som möjliggör en snabb, icke-invasiv, och robust märkning av alkyne-märkta glykaner i zebrafisk embryon beskrivs. Fucosylated glykaner i de omgivande lager av zebrafisk embryon i slutet gastrulation skede fanns avbildad i denna studie.

Abstract

Imaging glycans in vivo har nyligen blivit möjligt tack vare en bioorthogonal strategi kemiska reporter genom att behandla celler eller organismer med azide-eller alkyne-taggade monosackarider 1, 2. Den modifierade monosackarider, bearbetas av glycan biosyntetiska maskiner, ingår i Glycoconjugates cellytan. Den bioorthogonal azide eller alkyne taggar kan sedan kovalenta konjugering med fluorescerande prober för visualisering, eller med affinitet givare för anrikning och glycoproteomic analys. Detta protokoll beskriver de förfaranden som vanligtvis används för icke-invasiv avbildning av fucosylated glykaner i zebrafisk embryon, inklusive: 1) mikroinjektion av en-cells embryon skede med BNP-5-alkynylfucose (BNP-FucAl), 2) märkning fucosylated glykaner i kuvertering lagret av zebrafisk embryon med azide-konjugerad fluoroforer via biokompatibla Cu (I)-katalyserad azide-alkyne cycloaddition (CuAAC), och 3) avbildning av konfokalmikroskopi 3. Den metod som beskrivs här kan lätt utvidgas till att visualisera andra grupper av glykaner, t.ex. glycans innehåller sialinsyra 4 och N-acetylgalaktosamin 5, 6, utveckla zebrafisk och andra levande organismer.

Protocol

1. Insamling av ägg och Dechorionation Samla in och överföra zebrafisk ägg till 35 mm petriskål, ta bort så mycket vatten som möjligt och sedan lägga till 1 mg / ml Pronease E i E3 embryo medelstora (5 mM NaCl, 0,17 mM KCl, 0,33 mM CaCl 2 · 2H 2 O, 0,33 mM MgSO 4, pH = 7,4) att smälta chorion. Efter 3-5 minuter, slå ihop skålen i en bägare fylld med fisk vatten (60 mg "instant Ocean" per liter destillerat H 2 O), och försiktigt öve…

Discussion

<p class="jove_content"> Imaging biomolekyler<em> In vivo</em> Ger värdefull kunskap om sin biologiska aktiviteter på sitt eget miljöer. I den här filmen visar vi hur märkning av fucosylated glykaner i de omgivande lager av zebrafisk embryon realiseras genom microinjecting en-cells stadiet embryon med BNP-FucAl och ett andra steg fluoroforen konjugering via BTTES-medierad biokompatibelt CuAAC<sup> 3</sup>. Robust märkning kan uppnås inom 2-3 minuter, och den märkta glycans är mätbara så tidigt som 2,5 HPF. Viktigare, k…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete har delvis stöd av National Institutes of Health (GM093282 till PW, 3U54AI057158-06S1 till RDS) och start medel från Albert Einstein College of Medicine.

Materials

Name of the reagent Company Catalog number
Copper(II) sulfate pentahydrate Sigma-Aldrich 203165
Alexa Fluor 488 azide Invitrogen A10266
dextran, Alexa Fluor 594 Invitrogen D-22913
(+)-Sodium L-ascorbate Sigma-Aldrich A7631
Bathocuproinedisulfonic acid Acros Organics 164060010
Glass bottom microwell dish MatTek P35G-1.5-14-C

References

  1. Laughlin, S. T., Bertozzi, C. R. Imaging the glycome. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 106, 12-17 (2009).
  2. Baskin, J. M., Bertozzi, C. R. Bioorthogonal click chemistry: Covalent labeling in living systems. Qsar Comb. Sci. 26, 1211-1219 (2007).
  3. Soriano del Amo, D. Biocompatible copper(I) catalysts for in vivo imaging of glycans. J. Am. Chem. Soc. 132, 16893-16899 (2010).
  4. Chang, P. V. Metabolic labeling of sialic acids in living animals with alkynyl sugars. Angew. Chem. Int. Ed. 48, 4030-4033 (2009).
  5. Laughlin, S. T., Baskin, J. M., Amacher, S. L., Bertozzi, C. R. In vivo imaging of membrane-associated glycans in developing zebrafish. Science. 320, 664-667 (2008).
  6. Baskin, J. M., Dehnert, K. W., Laughlin, S. T., Amacher, S. L., Bertozzi, C. R. Visualizing enveloping layer glycans during zebrafish early embryogenesis. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 107, 10360-10365 (2010).
  7. Kemp, H. A., Carmany-Rampey, A., Moens, C. Generating chimeric zebrafish embryos by transplantation. J. Vis. Exp. , (2009).
  8. Wang, W. Chemoenzymatic synthesis of GDP-L-fucose and the Lewis X glycan derivatives. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 106, 16096-16101 (2009).
  9. Rosen, J. N., Sweeney, M. F., Mably, J. D. Microinjection of zebrafish embryos to analyze gene function. J. Vis. Exp. , (2009).
  10. Westerfield, M. . THE ZEBRAFISH BOOK, A guide for the laboratory use of zebrafish (Danio rerio). , (2007).
  11. Kimmel, C. B., Warga, R. M., Schilling, T. F. Origin and organization of the zebrafish fate map. Development. 108, 581-594 (1990).
check_url/fr/2686?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Jiang, H., Feng, L., Soriano del Amo, D., Seidel III, R. D., Marlow, F., Wu, P. Imaging Glycans in Zebrafish Embryos by Metabolic Labeling and Bioorthogonal Click Chemistry. J. Vis. Exp. (52), e2686, doi:10.3791/2686 (2011).

View Video