Summary

Singel Drosophila Ommatidium Dissection och Imaging

Published: August 19, 2011
doi:

Summary

Den begränsande faktorn i användningen av den vuxna<em> Drosophila</em> Öga för att studera neurodegeneration och cellbiologi är svårt avbildning av intracellulära processer. Vi beskriver dissektion av enstaka ommatidia att generera ett ärligt uppsåt primära neuronala cellodling, som kan bli föremål för behandling och avancerad bildbehandling.

Abstract

Bananfluga Drosophila melanogaster har gjort ovärderliga bidrag till neurovetenskaplig forskning och har använts allmänt som en modell för neurodegenerativa sjukdomar på grund av dess kraftfulla genetik 1. Flugan ögat i synnerhet har orgeln i valet för neurodegeneration forskning, är den mest lättillgängliga och livet onödigt del av Drosophila nervsystemet. Men den stora varning av intakt ögon är svårigheten, på grund av den intensiva autofluorescens av pigment, i bildbehandling intracellulära förlopp, såsom autophagy dynamik 2, som är utomordentligt viktig för förståelsen av neurodegeneration.

Vi har nyligen använt dissekering och kultur av enstaka ommatidia 3 det har varit viktigt för vår förståelse av autophagic dysfunktioner i en fluga modell av Dentatorubro-Pallidoluysian Atrofi (DRPLA) 3, 4.

Vi rapporterar nu en omfattande beskrivning av denna teknik (Figur 1), anpassat från elektrofysiologiska studier 5, vilket sannolikt kommer att öka dramatiskt möjligheten att flyga modeller för neurodegeneration. Denna metod kan anpassas till bilden leva subcellulära händelser och för att övervaka effektivt läkemedel administration på ljusmätare celler (Fig. 2). Om den används i kombination med mosaik tekniker 6-8, kan svaren från genetiskt olika celler analyseras parallellt (Fig. 2).

Protocol

1. Dissekering av Drosophila näthinnan Fyll en en brunn i en 3-Tja glasskiva med fosfatbuffrad koksaltlösning (PBS 1X) och sedan söva flugor av CO 2. Både hanar och honor kan användas för detta experiment. När flugorna är sövd, plocka upp en enda fluga med hjälp av pincett och släppa den i den lilla skålen med PBS. Enligt en dissekera omfattning, klämma snabel med pincett, och sedan bort huvudet från kroppen genom att bryta nacken med en andra uppsättning…

Discussion

Den enda ommatidium dissektion som presenteras här gör att insamlingen av djupare cellbiologiska information om processer som neurodegeneration, när modelleras i Drosophila ögat. Den fotoreceptor nervceller är mer lättillgängliga än andra nervceller och de cytoplasman är särskilt stor, och därför lämplig att studera vesikler dynamik, i samma celler som används skickligt i många modeller för att kvantifiera neurodegeneration in vivo. Den kritiska aspekten av dissektion är främst förm?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Bernard Charroux för diskussioner. Detta arbete har finansierats av KCL Biomedicinska School.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
Portable CO2 Dispenser Flystuff 59-150 Refills also available
DUMONT Tweezer No 5 AGAR Scientific T5034  
3-Well Glass Slide EMS 71561-01  
Micro scissors VWR HAMMHSB516-09  
Schneider’s Medium VWR 733-1663  
LysoTracker Red DND-99 Invitrogen L7528  
Superfrost Slides VWR 631-0108  
Vectashield with Dapi Vector Labs H-1200  
Coverslips VWR 631-1336  

References

  1. Marsh, J. L., Thompson, L. M. Drosophila in the study of neurodegenerative disease. Neuron. 52, 169-178 (2006).
  2. Mizushima, N., Levine, B., Cuervo, A. M., Klionsky, D. J. Autophagy fights disease through cellular self-digestion. Nature. 451, 1069-1075 (2008).
  3. Nisoli, I. Neurodegeneration by polyglutamine Atrophin is not rescued by induction of autophagy. Cell Death Differ. 17, 1577-1587 (2010).
  4. Charroux, B., Fanto, M. The fine line between waste disposal and recycling: DRPLA fly models illustrate the importance of completing the autophagy cycle for rescuing neurodegeneration. Autophagy. 6, 667-669 (2010).
  5. Hardie, R. C. Voltage-sensitive potassium channels in Drosophila photoreceptors. J Neurosci. 11, 3079-3095 (1991).
  6. Lee, T., Luo, L. Mosaic analysis with a repressible cell marker (MARCM) for Drosophila neural development. Trends in neurosciences. 24, 251-254 (2001).
  7. Xu, T., Rubin, G. M. Analysis of genetic mosaics in developing and adult Drosophila tissues. Development. 117, 1223-1237 (1993).
  8. Gambis, A., Dourlen, P., Steller, H., Mollereau, B. Two-color in vivo imaging of photoreceptor apoptosis and development in Drosophila. Dev Biol. 351, 128-1234 (2011).
  9. Napoletano, F. Polyglutamine Atrophin provokes neurodegeneration in Drosophila by repressing fat. The EMBO journal. 30, 945-958 (2011).
  10. Ravikumar, B. Inhibition of mTOR induces autophagy and reduces toxicity of polyglutamine expansions in fly and mouse models of Huntington disease. Nature. 36, 585-595 (2004).
  11. Zou, S., Meadows, S., Sharp, L., Jan, L. Y., Jan, Y. N. Genome-wide study of aging and oxidative stress response in Drosophila melanogaster. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 97, 13726-13731 (2000).
check_url/fr/2882?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Volpi, V., Mackay, D., Fanto, M. Single Drosophila Ommatidium Dissection and Imaging. J. Vis. Exp. (54), e2882, doi:10.3791/2882 (2011).

View Video