Summary

Maus Eye Enukleation für Remote High-throughput Phänotypisierung

Published: November 19, 2011
doi:

Summary

Die Dissektionstechnik zeigt Enukleation der Maus Auge für Gewebefixierung um Phänotypisierung in Hochdurchsatz-Screening durchzuführen.

Abstract

Die Maus Auge ist ein wichtiges genetisches Modell für die translationale Erforschung der menschlichen Augenerkrankung. Blendende Erkrankungen beim Menschen, wie Makuladegeneration, Photorezeptordegeneration, Katarakt, Glaukom, Retinoblastom, und diabetische Retinopathie haben in transgenen Mäusen wurde rekapituliert. 1-5 meisten transgenen und Knockout-Mäuse von Laboratorien erzeugt wurden auf nicht-ophthalmologische Krankheiten zu studieren, aber Generhaltung zwischen Organsysteme lässt vermuten, dass viele der gleichen Gene können auch eine Rolle bei der Entwicklung und okulare Krankheit. Daher stellen diese Mäuse eine wichtige Ressource für die Entdeckung neuer Genotyp-Phänotyp-Korrelationen in die Augen. Da diese Mäuse auf der ganzen Welt verstreut sind, ist es schwierig, zu erwerben, zu halten und Phänotyp sie in eine effiziente, kostengünstige Weise. So sind die meisten High-Throughput-ophthalmologische Phänotypisierung Bildschirmen auf wenige Standorte, die vor Ort, ophthalmologische Know-how erfordern beschränkt Augen in lebenden Mäusen zu untersuchen. 6-9 Ein alternativer Ansatz in unserem Labor entwickelt wurde, ist eine Methode für Remote Gewebe-Übernahme, die in großen oder kleinen Erhebungen der transgenen Maus Augen verwendet werden können. Standardisierte Verfahren für Video-basierte chirurgische Fachwissen, Gewebefixierung und Versand ermöglichen jedem Labor zu ganzen Augen von mutierten Tiere zu sammeln und senden Sie sie für molekulare und morphologische Phänotypisierung. In diesem Video Artikel präsentieren wir Techniken, um entkernen und übertragen sowohl fixierten und Perfusion festen Mäuseaugen für Remote Phänotypisierung Analysen.

Protocol

Ein. Blunt Dissection: Enukleation der Maus Auge fixierten Proben Auseinanderziehen die Augenlider, um die Exposition und den Zugang zu den hinteren Globus (Augapfel) Oberfläche zu verbessern. Legen Sie eine gebogene Verband forcep hinter (unter) den Globus in der Umlaufbahn (Augenhöhle). Die Mahajan Sharptip Verband forcep ist ein Brauch Instrument mit Spitzen um diesen Schritt zu erleichtern (siehe Materialien und Reagenzien Tabelle). Schließen Sie die Zange und fassen Sie den Orbital…

Discussion

Die meisten transgenen Mäusen gibt es in Laboratorien, die nicht prüfen müssen die Augen. Unsere Video-Technik stellt eine einfache, standardisierte Methode zur Remote-chirurgischen Fähigkeiten Übertragung von Gewebe Akquisition von Laboratorien mit wenig Erfahrung mit den Augen zu optimieren. Dieses Video-Technik hilft bei der Bewältigung einer großen Sünden in High-Throughput-Phänotypisierung, die Verwendung einer begrenzten Anzahl von Experten Standorten aufgrund der nicht-standardisierten Gewebe Sammlung un…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forschung zur Erblindung verhindern; Bartly J. Mondino MD, Direktor des Jules Stein Eye Institute, UCLA, und Ramiro Ramirez-Solis, Jacqui White, and Jeanne Estabel am Sanger Institute, Wellcome Trust Genome Campus. Diese Forschung entspricht der ARVO Statement für die Verwendung von Tieren in Ophthalmic und Visual Research.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Curved Dressing Forcep Storz Ophthalmics E1408  
Mahajan Sharptip dressing forcep Storz Ophthalmics E1406 (REF SP7-64520)  
Curved Westcott Scissors Storz Ophthalmics E3321 WH  
15° BD Beaver Microsurgical Blade Becton-Dickinson 374881  
0.22 Fine-Castroviejo Suturing Forceps Storz Ophthalmics E1805  
0.12 Colibri forceps Storz Ophthalmics 2/132  
30-gauge needle Becton-Dickinson 305128  
Biohazard Mailer Fisher 03-523-4  
Parafilm Fisher 13-374-10  
Glass scintillation vials Wheaton 4500413033  
PBS, pH 7.4 Invitrogen 70011-044  
16% Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15700  
2.5% Paraformaldehyde/ 2.5% Glutaraldehyde in 0.1M sodium phosphate buffer Electron Microscopy Sciences 15700 & 16300 Mixed in laboratory
50% Glutaraldehyde Electron Microscopy Sciences 16300  
0.25% Formvar Electron Microscopy Sciences 15810  
Copper Slot Grid Electron Microscopy Sciences M2010-CR  
4% Osmium Tetroxide Electron Microscopy Sciences 19140  
Anti-SOD3 antibody Abcam Ab21974  
Goat anti-rabbit Alexa Fluor 488 Invitrogen A11070  
Spurr’s embedding resin Electron Microscopy Sciences 14300  

References

  1. Song, B. J., Tsang, S. H., Lin, C. -. S. Genetic models of retinal degeneration and targets for gene therapy. Gene Ther. Mol. Biol. 11, 229-262 (2007).
  2. Mahajan, V. B., Mondino, B. J., Tsang, S. H. A high-throughput Mouse Eye Phenomics System. Cold Spring Harbor Laboratories, Mouse Genetics Meeting. , (2010).
  3. Smith, R. S., John, S. W. M., Nishina, P. M., Sundberg, J. P. . In Research Methods For Mutant Mice. , (2002).
  4. Chang, B., Hawes, N. L., Hurd, R. E., Davisson, M. T., Nusinowitz, S., Heckenlively, J. R. Retinal degeneration mutants in the mouse. Vision Res. 42, 517-525 (2002).
  5. Anderson, M. G., Smith, R. S., Hawes, N. L., Zabaleta, A., Chang, B., Wiggs, J. L., John, S. W. Mutations in genes encoding melanosomal proteins cause pigmentary glaucoma in DBA/2J mice. Nat. Genet. 30, 81-85 (2002).
  6. Hawes, N. L., Smith, R. S., Chang, B., Davisson, M., Heckenlively, J. R., John, S. W. Mouse fundus photography and angiography: a catalogue of normal and mutant phenotypes. Mol. Vis. 5, 22-22 (1999).
  7. Won, J., Shi, L. Y., Hicks, W., Wang, J., Hurd, R., Naggert, J. K., Chang, B., Nishina, P. M. Mouse model resources for vision research. J. Ophthalmol. 2011, 391384-391384 (2011).
  8. Pinto, L. H., Vitaterna, M. H., Siepka, S. M., Shimomura, K., Lumayag, S., Baker, M., Fenner, D., Mullins, R. F., Sheffield, V. C., Stone, E. M., Heffron, E., Takahashi, J. S. Results from screening over 9000 mutation-bearing mice for defects in the electroretinogram and appearance of the fundus. Vision. Res. 44, 3335-3345 (2004).
  9. Heckenlively, J. R., Winston, J. V., Roderick, T. H. Screening for mouse retinal degenerations. I. Correlation of indirect ophthalmoscopy, electroretinograms, and histology. Doc. Ophthalmol. 71, 229-239 (1989).
  10. Tsang, S. H., Gouras, P., Yamashita, C. K., Kjeldbye, H., Fisher, J., Farber, D. B., Goff, S. P. Retinal degeneration in mice lacking the gamma subunit of the rod cGMP phosphodiesterase. Science. 272, 1026-1029 (1996).
  11. Tsang, S. H., Woodruff, M. L., Jun, L., Mahajan, V., Yamashita, C. K., Pedersen, R., Lin, C. S., Goff, S. P., Rosenberg, T., Larsen, M., Farber, D. B., Nusinowitz, S. Transgenic mice carrying the H258N mutation in the gene encoding the beta-subunit of phosphodiesterase-6 (PDE6B) provide a model for human congenital stationary night blindness. Hum. Mutat. 28, 243-254 (2007).
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Citer Cet Article
Mahajan, V. B., Skeie, J. M., Assefnia, A. H., Mahajan, M., Tsang, S. H. Mouse Eye Enucleation for Remote High-throughput Phenotyping. J. Vis. Exp. (57), e3184, doi:10.3791/3184 (2011).

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