Summary

Isolering av primära celler Mus trofoblaster och trofoblaster Invasion Assay

Published: January 08, 2012
doi:

Summary

I detta protokoll beskriver vi dissektion av efterbörd från musen om graviditet d10.5, följt av isolering av trofoblastceller med en Percoll-gradient. Vi visar då användning av de isolerade cellerna i en Matrigel invasion assay.

Abstract

Moderkakan är ansvarig för transporten av näringsämnen, gaser och tillväxtfaktorer till fostret, liksom eliminering av avfall. Således brister i placenta utveckling har viktiga konsekvenser för fostret och modern, och är en viktig orsak till embryonal dödlighet. Den stora celltyp av fostrets del av moderkakan är trofoblaster. Primära mus placentala trofoblastceller är ett användbart verktyg för att studera normal och onormal moderkakan utveckling, och till skillnad cellinjer, kan isoleras och användas för att studera trofoblaster i vissa stadier av graviditeten. Dessutom kan primära kulturer av trofoblaster från transgena möss användas för att studera rollen av specifika gener i placentaceller. Protokollet som presenteras här är baserat på beskrivningen av Thordarson et al. 1, i vilken en Percoll-gradient används för att erhålla en relativt ren population trofoblast cell från mus isolerade moderkakor. Det liknar mer allmänt användad metoder för mänsklig trofoblaster cellisolering 2-3. Renhet kan bedömas genom immunocytokemisk färgning av de isolerade cellerna för cytokeratin 7 4. Här är de isolerade cellerna analyserades sedan med användning av en Matrigel invasion analys för att bedöma trofoblast invasivitet in vitro 5-6. De invaderade cellerna analyseras med immuncytokemi och färgas för räkning.

Protocol

1. Dissektion av mus moderkakan Ställ in passande par möss. På vart och ett av de följande dagarna, kontrollera närvaron av en copulatory plugg. Den dag då en plugg upptäcks anses 0,5 dagar efter samlag (DPC) 7. Moderkakor kan samlas vid den önskade skede av graviditeten, med en ren dissektion av moderkakan möjliga börjar med utvecklingen av den mogna moderkakan på d. 10,5. Här visar vi 14,5 DPC. Vid givna volymer, kommer 40-60 moderkakor på 10,5 DP…

Discussion

I den här videon visar vi isolering av trofoblastceller från musen moderkakan. Vi visar en in vitro-analys för trofoblast invasion. Med användning av denna procedur, till stor del en, men inte helt, kan ren population av trofoblastceller erhållas. Om ytterligare renhet krävs, kan magnetiska pärlor separation eller flödescytometri utföras, såsom har beskrivits för primära humana trofoblastceller. Rätt längd på kollagenas dissociationssteget måste bestämmas med varje experiment, och kommer att lära med e…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka Creative Services team vid University of Missouri Academic Support Center som producerade denna video. Detta arbete stöddes av Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health & Human Development av National Institutes of Health, licensnummer HD055231

Materials

Specific reagents and equipment:

Wash Solution (filter sterilize after mixing)

Reagent Amount Final concentration
10x Medium 199 50ml 1X
Hepes 2.383 g 0.02M
sodium bicarbonate 0.42 g 0.01M
Penicllin-Streptomycin 5 mL 100 U- 100 μg /ml
Sterile dH20 to 500 mL  

Dissociation solution (make fresh and filter sterilize)

Reagent Amount Final concentration
Wash Solution 100 mL  
DNase 1 vial (2000 U) 20 U/mL
Collagenase 100 mg 125 digestion units/mL
Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Collagenase Sigma C9891 This is Clostridium collagenase. Bovine pancreatic collagenase would likely work as well
NCTC-135 Sigma D4263 Add FBS to 10%
Matrigel invasion chambers BD Biosciences 354481  
10x Medium 199 Sigma M9163  
Penicillin-Streptomycin Invitrogen 15140  
DNase Sigma D4263  
100 μm Cell strainer Fisher 22363549  
Antibody to cytokeratin 7 DAKO M7018 Used at 1:100 dilution

Equipment
Standard cell culture equipment including a CO2 incubator is required. In addition, a centrifuge rotor capable of spinning 50 ml tubes at 30,000 x g is needed. Note that this exceeds the maximum speed of most conical centrifuge tubes and will likely require an Oak Ridge style tube.

References

  1. Thordarson, G., Folger, P., Talamantes, F. Development of a placental cell culture system for studying the control of mouse placental lactogen II secretion. Placenta. 8, 573-585 (1987).
  2. Petroff, M. G., Phillips, T. A., Ka, H., Pace, J. L., Hunt, J. S. Isolation and culture of term human trophoblast cells. Methods. Mol. Med. 121, 203-217 (2006).
  3. Kliman, H. J., Nestler, J. E., Sermasi, E., Sanger, J. M., Strauss, J. F. Purification, characterization, and in vitro differentiation of cytotrophoblasts from human term placentae. Endocrinology. 118, 1567-1582 (1986).
  4. Blaschitz, A., Weiss, U., Dohr, G., Desoye, G. Antibody reaction patterns in first trimester placenta: implications for trophoblast isolation and purity screening. Placenta. 21, 733-741 (2000).
  5. Librach, C. L. 92-kD type IV collagenase mediates invasion of human cytotrophoblasts. J. Cell. Biol. 113, 437-449 (1991).
  6. Schulz, L. C., Widmaier, E. P. The effect of leptin on mouse trophoblast cell invasion. Biol. Reprod. 71, 1963-1967 (2004).
  7. Tanaka, S., Kunath, T., Hadjantonakis, A. K., Nagy, A., Rossant, J. Promotion of trophoblast stem cell proliferation by FGF4. Science. 282, 2072-2075 (1998).

Play Video

Citer Cet Article
Pennington, K. A., Schlitt, J. M., Schulz, L. C. Isolation of Primary Mouse Trophoblast Cells and Trophoblast Invasion Assay. J. Vis. Exp. (59), e3202, doi:10.3791/3202 (2012).

View Video