Summary

Purification chromatographique des ribosomes de levure hautement active

Published: October 24, 2011
doi:

Summary

La contamination des préparations de ribosomes eucaryotes purifié par les méthodes traditionnelles par les co-purifiant nucléases et protéases une incidence négative sur l'aval des analyses biochimiques et structurelles. Une méthode de purification chromatographique rapide et simple est utilisée pour résoudre ce problème en utilisant des ribosomes levure comme système modèle.

Abstract

Ribosomes eucaryotes sont beaucoup plus labiles par rapport à leurs homologues eubactériennes et archael, posant ainsi un défi important pour les chercheurs. Particulièrement gênant est le fait que la lyse des cellules libère un grand nombre de protéases et nucléases qui peut dégrader les ribosomes. Ainsi, il est important de séparer les ribosomes de ces enzymes aussi rapidement que possible. Malheureusement, les méthodes classiques ultracentrifugation différentielle feuilles ribosomes exposés à ces enzymes pour des périodes trop longues de temps, des répercussions sur leur intégrité structurelle et la fonctionnalité. Pour résoudre ce problème, nous utilisons une méthode chromatographique en utilisant une cystéine chargé Sulfolink résine. Cette application simple et rapide réduit considérablement la co-purifiant activités protéolytiques et nucléolytique, produisant des rendements élevés intacte, les ribosomes levure hautement biochimiquement active. Nous suggérons que cette méthode devrait également être applicable aux ribosomes de mammifères. La simplicité dela méthode, et la pureté améliorée et l'activité des ribosomes purifié par Chromatographie représente un progrès technique important pour l'étude des ribosomes eucaryotes.

Protocol

1. Préparation d'une cystéine chargé Sulfolink de résine Préparer Sulfolink résine (Pierce) à température ambiante. Placer un total de 10 ml d'une suspension de 50% de gel de couplage Sulfolink tel que fourni par le fabricant dans deux flacons de 10 ml en plastique, avec 5 ml distribué dans chaque flacon. Centrifuger brièvement flacons à 850 xg et retirez soigneusement surnageants. Lavez les trois gel de fois dans le tampon de couplage (50 mM Tris, pH 8,5, EDTA…

Discussion

Protocoles de purification ribosome essentiellement impliquent lyse des cellules, la récolte d'une fraction cytosolique d'une vrille à basse vitesse, puis granulation ribosomes par centrifugation à grande vitesse 1. Bien qu'un peu de nouvelles méthodes ont été utilisées pour la purification de ribosomes bactériens, le même n'avait pas été vrai pour les eucaryotes 2-4. Bien que des mesures supplémentaires ont été ajoutés au fil des années, se lave le sel par exemple, …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous tenons à remercier tous les membres du laboratoire Dinman, y compris Ashton Belew, Karen Jack, Sharmishtha Musalga, Sergey Sulima, Shivani Reddy, et Michael Rhodin pour leur aide et leur participation à ce projet. Ce travail a été soutenu par des subventions à l'AM de l'American Heart Association (AHA 0630163N) et à partir du JDD National Institutes of Health (5R01 GM058859-12). JAL a été soutenue par un réinvestissement américains et Recovery Act de 2009 supplément à la subvention des parents (3R01GM058859-11S1).

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number
Sulfolink Coupling resin Pierce 20402
Mini bead-beater 16 Biospec 607
Optima Max E ultracentrifuge Beckman Coulter  
Legend RT Sorvall  
0.5 mm Glass beads Biospec 11079105
Tris Sigma-Aldrich 252859
EDTA Sigma-Aldrich E9884
DTT Sigma-Aldrich 43815
HEPES Sigma-Aldrich 54459
NH4Cl Sigma-Aldrich A9434
KCl Sigma-Aldrich 60128
Mg(OAc)2 Sigma-Aldrich M5661
KOH Sigma-Aldrich 221473
Glycerol Sigma-Aldrich G5516
Puromycin Sigma-Aldrich P7255
GTP Fermentas R0461

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Citer Cet Article
Meskauskas, A., Leshin, J. A., Dinman, J. D. Chromatographic Purification of Highly Active Yeast Ribosomes. J. Vis. Exp. (56), e3214, doi:10.3791/3214 (2011).

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