Summary

मॉनिटरिंग शाही सेना संरचना में 'Peroxidative' और 'ऑक्सीडेटिव' हाइड्रॉक्सिल कट्टरपंथी footprinting द्वारा संतुलन परिवर्तन

Published: October 17, 2011
doi:

Summary

इस प्रोटोकॉल का वर्णन कैसे मात्रा ठहराना करने के लिए (द्वितीय) मिलीग्राम निर्भर हाइड्रॉक्सिल कट्टरपंथी footprinting की दो विधियों द्वारा शाही सेना तृतीयक संरचना के गठन.

Abstract

शाही सेना अणु जीव विज्ञान में एक आवश्यक भूमिका निभाते हैं. आनुवांशिक जानकारी संचारण के अलावा, शाही सेना अद्वितीय तृतीयक नियामक, बांधने की मशीन, या उत्प्रेरक के रूप में एक विशिष्ट भूमिका जीवविज्ञान पूरा संरचनाओं में गुना कर सकते हैं. तृतीयक संपर्क गठन के बारे में सूचना शाही सेना अणु के समारोह को समझने के लिए आवश्यक है. हाइड्रॉक्सिल कण (OH •) में अपने उच्च जेट और छोटे आकार के कारण न्यूक्लिक एसिड की संरचना का अनूठा जांच कर रहे हैं 1. जब एक footprinting जांच के रूप में इस्तेमाल किया, हाइड्रॉक्सिल कण के साथ 1 डीएनए और आरएनए 2 के phosphodiester रीढ़ की विलायक सुलभ सतह नक्शा के रूप में एकल nucleotide संकल्प के रूप में ठीक है. हाइड्रॉक्सिल कट्टरपंथी footprinting के लिए एक intermolecular संपर्क सतह के भीतर है, जैसे 1 डीएनए प्रोटीन और आरएनए प्रोटीन परिसरों में nucleotides की पहचान करने के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है. 3 संतुलन और संक्रमण 4 गतिज soluti के एक समारोह के रूप में हाइड्रॉक्सिल कट्टरपंथी footprinting आयोजन द्वारा निर्धारित किया जा सकता है हैपर चर या समय क्रमशः. Footprinting की एक प्रमुख विशेषता है कि जांच करने के लिए सीमित जोखिम (जैसे, 'एकल मारा कैनेटीक्स) बहुलक के प्रत्येक nucleotide की वर्दी नमूना में परिणाम है 5 .

इस वीडियो लेख में, हम P4-P6 Tetrahymena ribozyme के डोमेन का उपयोग करने के लिए शाही सेना नमूना तैयार करने और मिलीग्राम (द्वितीय) मध्यस्थता तह isotherms का निर्धारण वर्णन. हम अच्छी तरह से जाना जाता हाइड्रॉक्सिल कट्टरपंथी footprinting प्रोटोकॉल है कि एच 2 2 हे (हम peroxidative 'प्रोटोकॉल कहते) और एक मूल्यवान है, लेकिन व्यापक रूप से नहीं जाना जाता विकल्प है, कि का उपयोग करता है स्वाभाविक रूप से भंग 2 हे है ( हम फोन की आवश्यकता का उपयोग का वर्णन इस ' 'oxidative प्रोटोकॉल). डेटा कमी, परिवर्तन और विश्लेषण की प्रक्रिया के एक सिंहावलोकन प्रस्तुत किया है.

Protocol

1. Footprinting अभिकर्मकों की तैयारी एक 10x प्रतिक्रिया बफर 100 मिमी सोडियम cacodylate, 1 मिमी EDTA, और 1 एम KCl युक्त तैयार. 7.4 पीएच को समायोजित करें. फ़िल्टर बफर 0.2 सुक्ष्ममापी एसीटेट फिल्टर डिवाइस (Nalgene) का उपयोग. टिप्पणी: pipet शाह?…

Discussion

हाइड्रॉक्सिल कट्टरपंथी footprinting nucleic एसिड की सॉल्वैंट सुलभ सतह क्षेत्र का आकलन करने के लिए एक मूल्यवान उपकरण है. तृतीयक 14 संरचना के गुणात्मक और मात्रात्मक गठन आयन प्रकार और एकाग्रता, पीएच, तापमान, बंधनक…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

यह काम स्वास्थ्य RO1 – GM085130 के राष्ट्रीय संस्थान और राष्ट्रीय विज्ञान फाउंडेशन MCB0929394 से अनुदान द्वारा समर्थित किया गया था. हम उसे आतिथ्य के लिए और फिल्म के लिए हमें उसे प्रयोगशाला में अनुमति देने के लिए डॉ. मैरियन श्मिट धन्यवाद.

Materials

Name Company Cat#
Sodium Cacodylate (Caution! Toxic) Sigma C4945-25g
EDTA (0.5 M) Ambion AM9260G
DEPC treated water Ambion AM9915G
Sodium Acetate (3 M) Ambion AM9740
MgCl2 (1 M) Ambion AM9530G
Urea Ambion AM9902
Sodium Citrate Sigma W302600
tRNA Sigma R-7876
Sodium-L-ascorbate Sigma A7631-25g
Fe(NH4)2(SO4)2 . 6 H2O Sigma F1543-500g
RNase T1 Fermentas EN0541
Hydrogen Peroxide (30%) Sigma 349887

References

  1. Tullius, T. D., Dombroski, B. A. Hydroxyl radical “footprinting”: high-resolution information about DNA-protein contacts and application to lambda repressor and Cro protein. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 83, 5469-5473 (1986).
  2. Celander, D. W., Cech, T. R. Iron(II)-ethylenediaminetetraacetic acid catalyzed cleavage of RNA and DNA oligonucleotides: similar reactivity toward single- and double-stranded forms. Biochimie. 29, 1355-1361 (1990).
  3. Celander, D. W., Cech, T. R. Visualizing the higher order folding of a catalytic RNA molecule. Science. 251, 401-407 (1991).
  4. Sclavi, B., Sullivan, M., Chance, M. R., Brenowitz, M., Woodson, S. A. RNA folding at millisecond intervals by synchrotron hydroxyl radical footprinting. Science. 279, 1940-1943 (1998).
  5. Tullius, T. D., Dombroski, B. A., Churchill, M., Kam, L. Hydroxyl radical footprinting: a high-resolution method for mapping protein-DNA contacts. Methods. Enzym. 155, 537-558 (1987).
  6. Milligan, J. F., Groebe, D. R., Witherell, G. W., Uhlenbeck, O. C. Oligoribonucleotide synthesis using T7 RNA polymerase and synthetic DNA templates. Nucleic. Acids. Res. 15, 8783-8798 (1987).
  7. Schlatterer, J. C., Brenowitz, M. Complementing global measures of RNA folding with local reports of backbone solvent accessibility by time resolved hydroxyl radical footprinting. Methods. 49, 142-147 (2009).
  8. Sambrook, J., Russell, D. W. . Molecular Cloning: A Laboratory Manual. , (2001).
  9. Zaug, A. J., Grosshans, C. A., Cech, T. R. Sequence-specific endoribonuclease activity of the Tetrahymena ribozyme: enhanced cleavage of certain oligonucleotide substrates that form mismatched ribozyme-substrate complexes. Biochimie. 27, 8924-8931 (1988).
  10. Knapp, G. Enzymatic approaches to probing of RNA secondary and tertiary structure. Methods. Enzym. 180, 192-212 (1989).
  11. Slatko, B. E., Albright, L. M. Denaturing gel electrophoresis for sequencing. Curr. Protoc. Mol. Biol. Chapter 7, Unit 7.6-Unit 7.6 (2001).
  12. Das, R., Laederach, A., Pearlman, S. M., Herschlag, D., Altman, R. B. SAFA: semi-automated footprinting analysis software for high-throughput quantification of nucleic acid footprinting experiments. RNA. 11, 344-354 (2005).
  13. Simmons, K., Martin, J. S., Shcherbakova, I., Laederach, A. Rapid quantification and analysis of kinetic *OH radical footprinting data using SAFA. Methods. Enzym. 468, 47-66 (2009).
  14. Uchida, T., He, Q., Ralston, C. Y., Brenowitz, M., Chance, M. R. Linkage of monovalent and divalent ion binding in the folding of the P4-P6 domain of the Tetrahymena ribozyme. Biochimie. 41, 5799-5806 (2002).
  15. Cate, J. H., Gooding, A. R., Podell, E., Zhou, K., Golden, B. L., Kundrot, C. E., Cech, T. R., Doudna, J. A. Crystal structure of a group I ribozyme domain: principles of RNA packing. Science. 273, 1678-1685 (1996).
  16. Petri, V., Brenowitz, M. Quantitative nucleic acids footprinting: thermodynamic and kinetic approaches. Curr. Opin. Biotechnol. 8, 36-44 (1997).
  17. Takamoto, K., Das, R., He, Q., Doniach, S., Brenowitz, M., Herschlag, D., Chance, M. R. Principles of RNA compaction: insights from the equilibrium folding pathway of the P4-P6 RNA domain in monovalent cations. J. Mol. Biol. 343, 1195-1206 (2004).
  18. Brenowitz, M., Senear, D. F., Shea, M. A., Ackers, G. K. Quantitative DNase footprint titration: a method for studying protein-DNA interactions. Methods. Enzym. 130, 132-181 (1986).
  19. Shcherbakova, I., Mitra, S. Hydroxyl-radical footprinting to probe equilibrium changes in RNA tertiary structure. Methods. Enzym. 468, 31-46 (2009).
  20. Howlett, G. J., Minton, A. P., Rivas, G. Analytical ultracentrifugation for the study of protein association and assembly. Curr. Opinion. Chem. Biol. 10, 430-436 (2006).
  21. McGinnis, J. L., Duncan, C. D., Weeks, K. M. High-throughput SHAPE and hydroxyl radical analysis of RNA structure and ribonucleoprotein assembly. Methods. Enzym. 468, 67-89 (2009).
  22. Jonikas, M. A., Radmer, R. J., Laederach, A., Das, R., Pearlman, S., Herschlag, D., Altman, R. B. Coarse-grained modeling of large RNA molecules with knowledge-based potentials and structural filters. RNA. 15, 189-199 (2009).

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Citer Cet Article
Bachu, R., Padlan, F. S., Rouhanifard, S., Brenowitz, M., Schlatterer, J. C. Monitoring Equilibrium Changes in RNA Structure by ‘Peroxidative’ and ‘Oxidative’ Hydroxyl Radical Footprinting. J. Vis. Exp. (56), e3244, doi:10.3791/3244 (2011).

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