Summary

Transretinal ERG Opptak fra Mouse Retina: Rod og Cone Photoresponses

Published: March 14, 2012
doi:

Summary

Vi beskriver en relativt enkel metode for transretinal elektroretinogrammet (ERG) opptak for å få stang og kjegle photoresponses fra intakt mus netthinnen. Denne tilnærmingen tar nytte av blokken av synaptiske overføring fra fotoreseptorene å isolere sine lette svar og ta dem med i felten elektroder plassert over den isolerte flat-montert netthinnen.

Abstract

Det er to forskjellige klasser av image-forming fotoreseptorene i virveldyr netthinnen: stenger og kjegler. Stenger er i stand til å oppdage enkelte fotoner av lys, mens kjegler kontinuerlig drift i henhold til raskt skiftende skarpe lysforhold. Absorpsjon av lys ved stang-og membran-spesifikke visuelle pigmenter i de ytre deler av fotoreseptorene utløser en phototransduction kaskade som til slutt fører til nedleggelse av sykliske nukleotid-gated kanaler på plasmamembranen og celle hyperpolariseringen. Denne lys-indusert endring i membranen nåværende og potensielle kan registreres som en photoresponse, enten klassisk suging elektrode opptaksteknikk 1,2 eller ved transretinal elektroretinogrammet opptak (ERG) fra isolerte netthinne med farmakologisk blokkerte postsynaptiske respons komponenter 3-5. Den siste metoden tillater narkotika-tilgjengelige langvarige opptak fra mus fotoreseptorene og er spesielt nyttig for å oppnå stabile photoresponses from de knappe og skjøre mus kjegler. I tilfelle av kjegler, kan slike eksperimenter utføres både i mørke tilrettelagte forhold og følgende intens belysning som blekemidler i hovedsak all visuell pigment, til å overvåke prosessen med kjeglen fotosensitivitet utvinning i løpet av mørk tilpasning 6,7. I denne videoen viser vi hvordan du utfører stang-og M / L-kjegle-drevet transretinal opptak fra mørk-tilpasset mus netthinnen. Rod opptak vil bli gjennomført ved hjelp av netthinnen av vill type (C57Bl / 6) mus. For enkelhets skyld vil kjegle opptak hentes fra genmodifisert stang transducin α-subenheten knockout (Tα – / -) mus som mangler stang signalering 8.

Protocol

1. Å gjøre Elektroder Forbered glass elektroder. Vei 120 mg agar og bland det i 10 ml destillert vann (endelig agar konsentrasjon 1,2%). Smelt agar løsningen i varmt vannbad. Fyll glasset kapillærer (vi bruker Word Presision Instrumenter TW100-4 kapillærer med følgende dimensjoner: lengde = 100 mm, OD / ID = 1/0.75 mm, og innvendig volum = 44 mL) med agar løsningen ved hjelp av plast sprøyte. Stivne i agar ved romtemperatur i 10 min. Dermed opp til ~ 200 kapillærene kan fylles (resten av agar blandin…

Discussion

Metoden for stang-og membran-drevet transretinal ERG opptak beskrevet ovenfor blir et kraftig verktøy for å undersøke funksjonen av mus fotoreseptorene både villtype og genmodifiserte dyr. I tillegg til enkel karakterisering av grunnleggende photoresponse egenskaper, gir denne enkle teknikken god respons stabilitet under langvarige eksperimenter utført på nært til intakte netthinnen preparater. Både mørk-tilpasset stang maksimal respons amplitude og fotosensitivitet i villtype mus er stabile innen minst 1t fra …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Støttet av Career Development Award fra forskning for å forhindre blindhet, NIH tilskudd EY19312 og EY19543 (VJK), samt av ubegrenset tilskudd fra forskning for å hindre blindhet og EY02687 (Department of Ophthalmology og Visual Sciences ved Washington University).

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
DL-AP-4   TOCRIS bioscience 0101  
All other reagents   Sigma-Aldrich    
Glass capillaries   World Precision Instruments TW100-4 For making electrodes
Filter paper HARG Millipore HABG01300  
Photometer   UDT Instruments S350 For light calibration
Radiometric silicon sensor   UDT Instruments 221 For light calibration
Anti-vibration table   Technical Manufacturing Corporation TMC 78-239-02R, TMC63-26012-01 To minimize mechanical noise
Air compressor Panther P 15TC   Werther International P 15TC Connected to anti-vibration table
Stereomicroscope   LEICA MZ9.5 For mouse eye dissection
Infrared image converters   B.E.Meyers ProwlerTM Bound to stereomicroscope
Differential amplifier
DP-311
  Warner Instruments DP-311  
Axon Digidata 1440A Digitizer   Molecular Devices 1440A  
Dual Channel 8-pole Filter   KROHN-HITE Corporation 3382  
Ceramic resistor   TE Connectivity CGS SBCHE618RJ For reheating the perfusion solution
Thermocouple T Physitemp Instruments IT-18  
Temperature monitor   Omega DPi32 Connected to thermocouple
LED 505 nm   TT Electronics/ Optek Technology Digi-key P/N 365-1185-ND To apply test flashes/bleaching light
Cautery pen   Bovie AA25 For marking the dorsal part of the mouse eyeball
pCLAMP 10 Electrophysiology Data Acquisition and Analysis Software   Molecular Devices    

References

  1. Yau, K. W., Lamb, T. D., Baylor, D. A. Light-induced fluctuations in membrane current of single toad rod outer segments. Nature. 269, 78-80 (1977).
  2. Nikonov, S. S., Kholodenko, R., Lem, J., Pugh, E. N. Physiological features of the S- and M-cone photoreceptors of wild-type mice from single-cell recordings. J. Gen. Physiol. 127, 359-374 (2006).
  3. Nymark, S., Heikkinen, H., Haldin, C., Donner, K., Koskelainen, A. Light responses and light adaptation in rat retinal rods at different temperatures. J. Physiol. 567, 923-938 (2005).
  4. Heikkinen, H., Nymark, S., Koskelainen, A. Mouse cone photoresponses obtained with electroretinogram from the isolated retina. Vision Res. 48, 264-272 (2008).
  5. Frank, R. N., Dowling, J. E. Rhodopsin photoproducts: effects on electroretinogram sensitivity in isolated perfused rat retina. Science. 161, 487-489 (1968).
  6. Wang, J. S., Kefalov, V. J. An alternative pathway mediates the mouse and human cone visual cycle. Curr. Biol. 19, 1665-1669 (2009).
  7. Kolesnikov, A. V., Tang, P. H., Parker, R. O., Crouch, R. K., Kefalov, V. J. The mammalian cone visual cycle promotes rapid M/L-cone pigment regeneration independently of the interphotoreceptor retinoid-binding protein. J. Neurosci. 31, (2011).
  8. Calvert, P. D. Phototransduction in transgenic mice after targeted deletion of the rod transducin alpha -subunit. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 97, 13913-13918 (2000).
  9. Applebury, M. L. The murine cone photoreceptor: a single cone type expresses both S and M opsins with retinal spatial patterning. Neuron. 27, 513-523 (2000).
  10. Sillman, A. J., Ito, H., Tomita, T. Studies on the mass receptor potential of the isolated frog retina. I. General properties of the response. Vision Res. 9, 1435-1442 (1969).
  11. Vinberg, F., Koskelainen, A. Calcium sets the physiological value of the dominant time constant of saturated mouse rod photoresponse recovery. PLoS One. 5, e13025-e13025 (2010).
  12. Bolnick, D. A., Walter, A. E., Sillman, A. J. Barium suppresses slow PIII in perfused bullfrog retina. Vision Res. 19, 1117-1119 (1979).
check_url/fr/3424?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Kolesnikov, A. V., Kefalov, V. J. Transretinal ERG Recordings from Mouse Retina: Rod and Cone Photoresponses. J. Vis. Exp. (61), e3424, doi:10.3791/3424 (2012).

View Video