Summary

Isolatie en zuivering van kinesine uit Drosophila Embryo's

Published: April 27, 2012
doi:

Summary

Dit is een protocol om actief volle lengte Kinesine isoleren van<em> Drosophila</em> Embryo's voor single-molecule biofysische studies. We laten zien hoe om embryo's te verzamelen, maken het embryo lysaat, en dan polymeriseren microtubuli (MT). Kinesine wordt gezuiverd door immobiliseren van het op de MTS, te stoppen met draaien de kinesine-MT complexen, en dan het vrijgeven van de kinesine van het MT via ATP toevoeging.

Abstract

Motor eiwitten bewegen ladingen langs microtubuli, en vervoeren ze naar specifieke sub-cellulaire locaties. Omdat de gewijzigde vervoer wordt voorgesteld om een ​​verscheidenheid van neurodegeneratieve ziekten ten grondslag liggen, het begrijpen van microtubuli gebaseerd gemotoriseerd transport en de verordening zal waarschijnlijk uiteindelijk leiden tot een betere therapeutische benaderingen. Kinesine-1 is een eukaryote motor eiwit dat beweegt in een anterograde (plus-end) richting langs microtubuli (MT), aangedreven door ATP hydrolyse. Hier hebben we verslag een gedetailleerde zuivering protocol om actief volle lengte kinesine isoleren van Drosophila embryo's, waardoor de combinatie van Drosophila genetica met single-molecule biofysische studies. Te beginnen met ongeveer 50 kopjes leggen, met ongeveer 1000 vrouwen per kopje, voerden we 's nachts collecties. Dit leverde ongeveer 10 ml verpakte embryo's. De embryo's werden bleekmiddel dechorionated (hetgeen ongeveer 9 gram embryo) en gehomogeniseerd. After verstoring is het homogenaat verduidelijkt met een lage snelheid rotatie gevolgd door een snelle centrifugeren. De geklaarde supernatant werd behandeld met GTP en taxol aan de MT polymeriseren. Kinesine geïmmobiliseerd op gepolymeriseerde MT door de toevoeging ATP analoge 5'-adenylaat imidodiphosphate bij kamertemperatuur. Na kinesine bindend, werden microtubuli gesedimenteerd via hoge snelheid centrifugeren door een sucrose kussen. De microtubuli pellet werd vervolgens opnieuw opgeschort, en dit proces werd herhaald. Tot slot is ATP toegevoegd aan de kinesine los te maken van het MT. Hoge snelheid centrifugeren dan afgedraaid de MTS, waardoor de kinesine in het supernatant. Deze kinesine werd onderworpen aan een centrifugaal filter met 100 KD afgesneden filter voor verdere zuivering, in hoeveelheden verdeeld, snap bevroren in vloeibare stikstof en bij -80 ° C. SDS gelelektroforese en Western blotting werd uitgevoerd met het gezuiverde monster. De motorische activiteit van gezuiverde monsters vóór en na de laatste filtratiestap centrifugalewerd geëvalueerd met behulp van een in vitro enkel molecuul microtubule assay. De kinesine fracties vóór en na de centrifugale filtratie heeft processivity zoals eerder in de literatuur. Verdere experimenten worden gedaan om de interactie tussen kinesine en andere transportmiddelen verwante eiwitten te evalueren.

Protocol

Stammen van vliegen kan worden gekocht en versterkt in het lab. Afhankelijk van de hoeveelheid van Drosophila cultuur flacons ontvangen, dient men regelmatig 'flip' de cultuur flacons, zodra de flesjes heeft een maximale capaciteit bereikt. De versterking gaat door tot ongeveer 50 Drosophila cultuur flacons worden gevuld. Men maakt dan 'vliegen cups' met 100 ml tricorn bekers (Fly cup maken wordt besproken in de volgende paragraaf). Na 24 uur gebruik maken van embryo's van deze beke…

Discussion

Bovine hersenen de meest gebruikte uitgangsmateriaal 11 volledige lengte kinesine zuiveren echter murine brein is ook 12 gebruikt. Een groot nadeel van het gebruik van runderen hersenen als een kinesine bron is de beschikbaarheid van verse uitgangsmateriaal: slachthuizen zijn meestal niet toegankelijk, en de hersenen moet zeer vers in om actieve kinesine te verkrijgen. Verder alleen de hersenen van jonge koeien effectief. Tot slot, genetische manipulatie van de koeien is op dit moment geen haalbare…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Met dank aan Kris Ngai en Jason Del Rio voor hun steun en hulp bij dit project. Dit werk werd ondersteund door RO1 subsidie ​​GM070676 naar SPG.

Materials

Name of the reagent or material Company Catalogue number Comments
Agar (Granulated) Fisher 1423-500  
Dextrose (D-Glucose) Anhydrous Fisher D16-3  
Petri Dishes Becton 35 1007 60x15mm Style
(Polyester) 20/bag
Drosophila Culture Vials UCI    
Tricorn beaker Econo Lab Inc. B700-100 Volume:100ml,
size: 58x72mm
Yeast Red Star 2751  
Nylon Mesh Genesse Scientific 57-102 120 micron pore size
Nylon Mesh Small Parts 06-350/35  
Pipes Sigma 108321-27-3  
Pipes Sigma 108321-27-3  
Glycerol Fisher 56-81-5  
EGTA Sigma 67-42-5  
MgS04(Anhydrous) Fisher 7487-88-9  
PMSF Sigma 329-98-6  
Leupeptin Sigma 103476-89-7  
Aprotonin Sigma 9087-70-1  
TAME Sigma 178403-8  
STI Calbiochem 65635  
GTP Sigma 36051-31-7  
Taxol Sigma 33069-62-4  
ATP analog 5′-adenylyl imidodiphosphate Sigma 3605-31-7  
NaCl Mallinckrodt 7647-14-5  
ATP Sigma 74804-12-9  
Amicon Ultra Centrifugal Filters: .5 mL, 100kD cut off, 8 pack Millipore UFC510008  

References

  1. Ashburner, M., Thompson, J. N., Ashburner, M., Wright, T. R. F. The laboratory culture of Drosophila 2A. The genetics and biology of Drosophila. , 1-81 (1978).
  2. Roberts, D. B. . Drosophila: A Practical Approach. , (1998).
  3. Kunert, N., Brehm, A. Mass production of Drosophila Embryosand Chromatographic Purification of Native Protein Complexes. Methods in Molecular Biology. 420, 359 (2008).
  4. Goldstein, L. S. B., Fyrberg, E. A., Wilson, L., Matsudaira, P. T., Eds, . Drosophila melanogaster: Practical Uses in Cell and Molecular Biology. Methods in Cell Biology. 44, (1994).
  5. Saxton, W. M. Drosophila kinesin: Characterization of microtubule motility and ATPase. Proceedings of the National Academy of Science. 85, 1109 (1988).
  6. Shubeita, G. Consequences of motor copy number on the intracellular transport of kinesin-1-driven lipid droplets. Cell. 135, 1098-1098 (2008).
  7. Svoboda, K., Block, S. M. Force and Velocity Measured for Single Kinesin Molecules. Cell. 77, 773 (1994).
  8. Cole, D. G., Saxton, W. M., Sheehan, K. B., Scholey, J. M. A “Slow” Homotetrameric Kinesin-related Motor Protein Purified from Drosophila embryos. J. Biol. Chem. 269, 22917-22917 (1994).
  9. Saxton, W. M. Isolation and Analysis of Microtuble Motor Proteins. Drosophila Melanogaster. Bloomington: Academic. 44, 279 (1994).
  10. Scholey, J. Motility Assay for Motor Proteins. Methods in Cell Biology. 39, 138 (1993).
  11. Wagner, M. C., Pfister, K., Brody, S., Bloom, G. Purification of kinesin from bovine brain and assay of microtubule-stimulated ATPase activity. Methods in Enzymology. 196, 157 (1991).
  12. Aizawa, H. Kinesin Family in Murine Nerwous System. The Journal of Cell Biology. 119, 1287-1287 (1992).
  13. Ori-McKenney, K. M., Xu, J., Gross, S. P., Vallee, R. B. A cytoplasmic dynein tail mutation impairs motor processivity. Nature Cell Biology. 12, 1228-1228 (2010).
check_url/fr/3501?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Sigua, R., Tripathy, S., Anand, P., Gross, S. P. Isolation and Purification of Kinesin from Drosophila Embryos. J. Vis. Exp. (62), e3501, doi:10.3791/3501 (2012).

View Video