Summary

Inducing dendrittiske Veksten i dyrkede sympatiske Neurons

Published: March 21, 2012
doi:

Summary

Vi beskriver en protokoll for å bruke Benmorfogenetiske protein-7 (BMP-7) eller Matrigel å selektivt indusere dendrittiske vekst i primærnæringene sympatiske nevroner dissosiert fra overordnet cervical ganglier (SCG) av perinatale rotter.

Abstract

Formen på dendrittiske arbor avgjør det totale synaptiske inngang et nevron kan motta 1-3, og påvirker hvilke typer og fordeling av disse inngangene 4-6. Endrede mønstre av dendrittiske vekst og plastisitet er assosiert med nedsatt neurobehavioral funksjon i eksperimentelle modeller 7, og er tenkt å bidra til kliniske symptomer observert i begge nevrologisk lidelser 8-10 og nevrodegenerative sykdommer 11-13. Slike observasjoner understreker den funksjonelle betydningen av nettopp å regulere dendrittiske morfologi, og foreslår at identifisering mekanismene som styrer dendrittiske veksten ikke bare vil fremme forståelse for hvordan neuronal tilkobling er regulert under normal utvikling, men kan også gi innsikt om nye terapeutiske strategier for ulike nevrologiske sykdommer.

Mekanistiske studier av dendrittiske veksten ville bli mye lettere å tilgjengeligheten ofa modell system som lar nerveceller kan eksperimentelt gått over fra en tilstand der de ikke strekker dendritter til en der de utarbeide en dendrittiske arbor sammenlignbar med deres in vivo kolleger. Primære kulturer av sympatiske nerveceller dissosiert fra overordnet cervical ganglier (SCG) av perinatale gnagere gi en slik modell. Når dyrket i definert medium i fravær av serum og ganglionic gliacellene, sympatiske nevroner forlenge en enkelt prosess som er aksonal, og dette unipolar tilstanden vedvarer i uker til måneder i kultur 14,15. Imidlertid utløser tillegg av enten Benmorfogenetiske protein-7 (BMP-7) 16,17 eller Matrigel 18 til kulturen medium disse nevronene å utvide flere prosesser som oppfyller de morfologiske, biokjemiske og funksjonelle kriterier for dendritter. Sympatiske nevronene dissosiert fra SCG av perinatale gnagere og voksne under definerte betingelser er en homogen befolkning av nevroner 19som reagerer likt for den dendrite-fremme aktivitet Matrigel, BMP-7 og andre fil fra BMP av decapentaplegic (DPP) og 60A underfamilier 17,18,20,21. Viktigere, oppstår Matrigel-og BMP-indusert dendrite formasjon i fravær av endringer i celle overlevelse eller aksonal vekst 17,18.

Her beskriver vi hvordan du setter opp dissosiert kulturer sympatiske nerveceller avledet fra SCG av perinatale rotter slik at de er lydhøre for den selektive dendrite-fremme aktiviteten Matrigel eller fil fra BMP.

Protocol

1. Utarbeidelse av Kultur Medium (C2 medium) Legg til følgende, i den rekkefølgen, til en steril, disponibel 500 ml erlenmeyerkolbe: Beløp Component Endelig konsentrasjon 190 ml DMEM (lav glukose) N / A 10 ml fettsyre gratis BSA (20mg/ml i DMEM) 50 mikrogram / ml 2,8 ml L-Glutamin 1,4 mM …

Discussion

Fordelene med denne modellen inkluderer: (a) de kulturene består av en homogen befolkning av sympatiske nevroner blottet for andre celletyper 17,23, (b) de vekstfaktor kravene i sympatiske nevroner er godt etablert, som tillater bruk av definert medium, og en rekke definerte medier, og underlag fungerer godt for dyrking og opprettholde sympatiske nevroner 23, (c) nevroner i disse kulturene reagerer likt for den dendrite-fremme aktivitet Matrigel, BMP-7 og andre fil fra BMP av DPP og 60A underfamil…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av midler fra National Institutes of Health (tilskudd R21 NS45037 og R01 ES014901).

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Glass coverslips Bellco 1943-10012 12 mm Round Coverslip #1 Thickness, German glass
Bent tip pipets Bellco 1273-50003  
Poly-D-lysine Sigma P0899-100MG Stock solution 1 mg/ml
Distilled water Gibco 15230  
Fine forceps Dumont no. 4 and 5 Fine Science Tools (FST) 11252-30 11241-30  
20-gauge needles Becton Dickinson 305176  
Leibovitz’s L-15 medium Invitrogen 11415  
Collagenase Worthington 4176 1 mg/ml
Dispase Roche 04942078001 5 mg/ml
Hank’s balanced salt solution( -Ca,-Mg) Invitrogen 14185-052  
DMEM Low glucose Invitrogen 11885  
L-Glutamine Invitrogen 25030 20 mM
Insulin/Transferrin/ Selenium Invitrogen 51500-056 100X
Fatty-acid free BSA Calbiochem 126609  
NGF Harlan Bioproducts 5017  
Ham F-12 nutrient medium (F-12) Invitrogen 11765  
Cytosine arabinoside Sigma C1768  
Matrigel BD Biosciences 356234 Avoid repeated freeze-thaw cycles
BMP-7 R&D Systems Curis, Inc. 345-BP BMP7-07H BMPs 4, 5 and 6 work equally as well as BMP-7 and are sometimes easier to obtain commercially
Paraformaldehyde Sigma P6148  
Triton X-100 Fisher BP151-500  
Mouse anti-rat MAP2 antibody Sternberg Monoclonals Inc. SMI52 1/5000
Alexa Fluor 546 goat-anti-mouse Invitrogen A11003 1/10000
Mounting media Prolong Antifade kit Molecular Probes P7481  

Table 1. Materials.

References

  1. Purpura, D. P., Quarton, Q. C., Melnechuk, T., Schmitt, F. O. . The Neurosciences: A Study Program. , 372-393 (1967).
  2. Purves, D. Functional and structural changes in mammalian sympathetic neurons following interruption of their axons. J. Physiol. 252, 429-463 (1975).
  3. Purves, D. . A Trophic Theory of Neural Connections. , (1988).
  4. Miller, J. P., Jacobs, G. A. Relationships between neuronal structure and function. J. Exp. Biol. 112, 129-145 (1984).
  5. Schuman, E. M. Synapse specificity and long-term information storage. Neuron. 18, 339-342 (1997).
  6. Sejnowski, T. J. The year of the dendrite. Science. 275, 178-179 (1997).
  7. Berger-Sweeney, J., Hohmann, C. F. Behavioral consequences of abnormal cortical development: insights into developmental disabilities. Behav. Brain Res. 86, 121-142 (1997).
  8. Connors, S. L. Fetal mechanisms in neurodevelopmental disorders. Pediatric Neurology. 38, 163-176 (2008).
  9. Pardo, C. A., Eberhart, C. G. The neurobiology of autism. Brain Pathology (Zurich, Switzerland). 17, 434-447 (2007).
  10. Zoghbi, H. Y. Postnatal neurodevelopmental disorders: meeting at the synapse. Science. 302, 826-830 (2003).
  11. de Ruiter, J. P., Uylings, H. B. Morphometric and dendritic analysis of fascia dentata granule cells in human aging and senile dementia. Brain Res. 402, 217-229 (1987).
  12. Flood, D. G., Coleman, P. D. Hippocampal plasticity in normal aging and decreased plasticity in Alzheimer’s disease. Prog. Brain Res. 83, 435-443 (1990).
  13. Jagadha, V., Becker, L. E. Dendritic pathology: an overview of Golgi studies in man. Can. J. Neurol. Sci. 16, 41-50 (1989).
  14. Bruckenstein, D. A., Higgins, D. Morphological differentiation of embryonic rat sympathetic neurons in tissue culture. I. Conditions under which neurons form axons but not dendrites. Dev. Biol. 128, 324-336 (1988).
  15. Tropea, M., Johnson, M. I., Higgins, D. Glial cells promote dendritic development in rat sympathetic neurons in vitro. Glia. 1, 380-392 (1988).
  16. Lein, P. The effects of extracellular matrix and osteogenic protein-1 on the morphological differentiation of rat sympathetic neurons. Int. J. Dev. Neurosci. 14, 203-215 (1996).
  17. Lein, P., Johnson, M., Guo, X., Rueger, D., Higgins, D. Osteogenic protein-1 induces dendritic growth in rat sympathetic neurons. Neuron. 15, 597-605 (1995).
  18. Lein, P. J., Higgins, D. Laminin and a basement membrane extract have different effects on axonal and dendritic outgrowth from embryonic rat sympathetic neurons in vitro. 136, 330-345 (1989).
  19. Higgins, D., Lein, P. J., Osterhout, D. J., Johnson, M. I., Banker, G., Goslin, K. . Culturing Nerve Cells. , 177-295 (1991).
  20. Beck, H. N., Drahushuk, K., Jacoby, D. B., Higgins, D., Lein, P. J. Bone morphogenetic protein-5 (BMP-5) promotes dendritic growth in cultured sympathetic neurons. BMC Neurosci. 2, 12-12 (2001).
  21. Guo, X., Rueger, D., Higgins, D. Osteogenic protein-1 and related bone morphogenetic proteins regulate dendritic growth and the expression of microtubule-associated protein-2 in rat sympathetic neurons. Neurosci. Lett. 245, 131-134 (1998).
  22. Lein, P. J. Glia induce dendritic growth in cultured sympathetic neurons by modulating the balance between bone morphogenetic proteins (BMPs) and BMP antagonists. J. Neurosci. 22, 10377-10387 (2002).
  23. Higgins, D., Lein, P., Osterhout, D., Johnson, M. I., Banker, G., Goslin, K. . Culturing Nerve Cells. , 177-205 (1991).
  24. Bruckenstein, D. A., Higgins, D. Morphological differentiation of embryonic rat sympathetic neurons in tissue culture. II. Serum promotes dendritic growth. Dev. Biol. 128, 337-348 (1988).
check_url/fr/3546?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Ghogha, A., Bruun, D. A., Lein, P. J. Inducing Dendritic Growth in Cultured Sympathetic Neurons. J. Vis. Exp. (61), e3546, doi:10.3791/3546 (2012).

View Video