Summary

Storskalig inspelning av nervceller av lös Silicon sönder i Agera Gnagare

Published: March 04, 2012
doi:

Summary

Vi beskriver metoder för storskalig registrering av flera enskilda enheter och lokala fältet potential i uppträda gnagare med kisel sonder. Drive tillverkning, sond anknytning till enheten och sonden implantationsprocesser illustreras i tillräckliga uppgifter för enkel replikering.

Abstract

En stor utmaning inom neurovetenskap kopplar beteende till kollektiv verksamhet av neurala församlingar. Förståelse för input-output relationer nervceller och kretsar kräver metoder med den rumsliga selektivitet och temporal upplösning lämplig för mekaniska analys av neurala ensembler i beter djuret, dvs registrering av representativt stora urval av isolerade enstaka nervceller. Ensemble övervakning av neuronal aktivitet har kommit anmärkningsvärt under det senaste decenniet i både små och stora brained djur, inklusive människor 1-11. Flera plats inspelning med kisel-baserade enheter är särskilt effektiva på grund av deras skalbarhet, liten volym och geometriska utformning.

Här beskriver vi metoder för att registrera flera enskilda nervceller och lokala fältet potential i bete gnagare, med hjälp av kommersiellt tillgängliga mikro-maskinbearbetade kisel sönder med skräddarsydda tillbehör komponenter. Det finns två grundläggande alternativ feller gränssnitt kisel sönder för att förförstärkare: kretskort och flexibla kablar. Probe leveransföretag ( http://www.neuronexustech.com/ , http://www.sbmicrosystems.com/ , http://www.acreo.se/ ) ger oftast bindning tjänsten och leverera sonder bundna till kretskort eller flexibla kablar. Här beskriver vi implantation av en 4-skaft, 32-site sond fäst till en flexibel kabel polyimid, och monterad på en rörlig mikrodrivanordning. Varje steg av sonden utarbetas, är Microdrive konstruktion och operation illustreras så att slutanvändaren lätt kan reproducera processen.

Protocol

1. Byggandet av Microdrive Alla enheter är gjorda av samma grundläggande element: en rörlig del, som uppbär elektroden och en fast del, som är förankrad vid skallen. En idealisk Microdrive möjliggör mjuk men tillräckligt länge förflyttning av elektroden i flera små steg, är robust nog för att förhindra oavsiktlig förflyttning av elektroden, lätt att manipulera av försöksledaren och utan att störa djurets beteende, liten storlek och låg vikt. Som ett resultat av dessa konku…

Discussion

Denna film visar implantation förfarandet för kisel prober för kroniska stora inspelningar i beter råtta. Kritiska åtgärder för att säkerställa kvalitet på inspelningar av nervaktivitet uppstå genom bräcklighet både biologiska (hjärnvävnad) och tekniska (kisel sond) material. Särskild försiktighet bör iakttas vid hantering sonden att undvika kontakt skaft med någon på distans "hård" yta (till exempel skulle skaften gå sönder om man försökte att implantera dem i hjärnan utan att ta bor…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Marie Curie Outgoing Fellowship (EU: s FP/2007-2013 bidragsavtalen # 221834 och 254.780), JD McDonnell Foundation, NSF Grant SBE 0.542.013, National Institutes of Health Grant NS034994, National Institute of Mental Health Grant MH5467 och Howard Hughes Medical Institute (Janelia Farm Research Campus bidrag).

Materials

Name Type Company Catalog Number Comments
Silicon probe Buzsaki32, 4 shanks x 8 sites. Packaging: flexible polyamide cable Material NeuroNexus Probe: buzsaki32
Packaging: HC32
Recording probe
Round Brass Screw, 00-90 x 1/2 Round Brass Screws Material JIMorris R0090B500 Drive part
Brass Hex Nut, 00-90 Material JIMorris N0090B Drive part
Brass C260 Strip, ASTM-B36
Thickness: 0.025″, Length: 12″, Width: 1/2″
Material Small Parts B000FMYU72 Drive part
Connector Header, pitch 2mm, male, single row, straigt, 36 positions Material Digikey 2163S-36-ND Drive part
2-part Sylgard silicon Elastomer Material World Precision Instruments SYLG184 To extra-insulate the probe
Decon Contrad 70 Liquid Detergent Reagent Fisher Scientific 04-355
Decon Laboratories
No.:1002
To clean the recording sites
Impedance Conditioning Module Equipment FHC Inc. 55-70-0 Impedance meter
niPOD – 32 channels Equipment Neuronexus niPOD -32 Impedance meter
Grip Cement Industrial Grade Material Caulk Dentsply 675571 (powder)
675572 (solvent)
Grip cement
1,1′-dioctadecyl-3,3,3′,3′-tetramethylindocarbocyanine perchlorate (‘DiI’; DiIC18(3)) Reagent Invitrogen D282 To stain the probe track in the brain
Stainless Steel Machine Screw, Binding Head, Slotted Drive, #00-90, 1/8″ Material Small Parts MX-0090-02B Ground and reference screws
Magnet wire, 20G, nylon-polyurethane coating, MW80 Material Small Parts B000IJYRP2 Ground and reference wire
Stainless Steel Machine Screw, Binding Head Slotted Drive, #000-120, 1/16″ Material Small Parts MX-000120-01B Anchor screws
N-3 All purpose Flux Liquid Reagent La-Co (Markal) 23512 Allows to solder stainless-steel
MicroGrid Precision Expanded Copper Material Dexmet 3 CU6-050 FA Copper mesh for on-head Faraday cage
C&B-METABOND Quick! Cement System – Dentin Activator Material Parkell S380  
C&B-METABOND Quick! Cement System – Dental cement Material Parkell S380  
Sharp point tungsten needle and holder Tool Roboz Surgical instruments RS-6064 and RS-6061 To make the hook to lift the dura
Carbide Bur HP 1/4 Tool Henry Schein 9990013  
Paraffin (Granules) Material Fisher Scientific P31-500  
Mineral Oil, Light (NF/FCC) Material Fisher Scientific O121-1  
GC ELECTRONICS 10-114 2-Part Epoxy Adhesive Material Newark 00Z416  
Type 1 LITZ 21 AWG 40/36 Red Single Polyurethane-Nylon (MW80-C) TO 0.041″+/-0.002″ OD Material New England Wire Technologies Corporation N28-36E-400-2 To make the cable between the headstage and the amplifier
32-channel Very Large Scale Integration headstage, 20x gain Equipment Plexon HST/32V-G20 Headstage

References

  1. Buzsáki, G. High-frequency network oscillation in the hippocampus. Science. 256, 1025-1027 (1992).
  2. Wilson, M. A., McNaughton, B. L. Dynamics of the hippocampal ensemble code for space. Science. 261, 1055-1058 (1993).
  3. Buzsáki, G. Large-scale recording of neuronal ensembles. Nat. Neurosci. 7, 446-451 (2004).
  4. Buzsáki, G. Visualizing Large-Scale Patterns of Activity in the Brain: Optical and Electrical Signals. Society for Neuroscience. , (2004).
  5. Nicolelis, M. A. L. . Methods for Neural Ensemble Recordings. , (2008).
  6. Hatsopoulos, N. G., Donoghue, J. P. The science of neural interface systems. Annu. Rev. Neurosci. 32, 249-266 (2009).
  7. Battaglia, F. P. The Lantern: an ultra-light micro-drive for multi-tetrode recordings in mice and other small animals. J. Neurosci. Methods. 178, 291-300 (2009).
  8. Kloosterman, F., Davidson, T. J. Micro-drive Array for Chronic in vivo Recording: Drive Fabrication. J. Vis. Exp. 26, e1094-e1094 (2009).
  9. Nguyen, D. P., Layton, S. P. Micro-drive Array for Chronic in vivo Recording: Tetrode Assembly. J. Vis. Exp. (26), e1098-e1098 (2009).
  10. Haiss, F., Butovas, S., Schwarz, C. A miniaturized chronic microelectrode drive for awake behaving head restrained mice and rats. J. Neurosci. Methods. 187, 67-72 (2010).
  11. Cerf, M. On-line, voluntary control of human temporal lobe neurons. Nature. 467, 1104-1108 (2010).
  12. Kohn, D. F. Anesthesia and Analgesia in Laboratory Animals. American College of Laboratory Animal Medicine. series, (1997).
  13. Schjetnan, A. G. P., Luczak, A. Recording Large-scale Neuronal Ensembles with Silicon Probes in the Anesthetized Rat. J. Vis. Exp. (56), e3282-e3282 (2011).
  14. Paxinos, G., Watson, C. The Rat Brain. Stereotaxic Coordinates. , (1982).
  15. Harris, K. D. Accuracy of tetrode spike separation as determined by simultaneous intracellular and extracellular measurements. J. Neurophysiol. 84, 401-414 (2000).
  16. Hazan, L., Zugaro, M., Buzsáki, G. Klusters, NeuroScope, NDManager: a Free Software Suite for Neurophysiological Data Processing and Visualization. J. Neurosci. Methods. 155, 207-216 (2006).
  17. Kipke, D. R. Advanced neurotechnologies for chronic neural interfaces: new horizons and clinical opportunities. J. Neurosci. 28, 11830-11838 (2008).
  18. Csicsvari, J. Massively parallel recording of unit and local field potentials with silicon-based electrodes. J. Neurophysiol. 90, 1314-1323 (2003).
  19. Sodagar, A. M., Wise, K. D., Najafi, K. A fully integrated mixed-signal neural processor for implantable multichannel cortical recording. IEEE Trans. Biomed. Eng. 54, 1075-1088 (2007).
  20. O’Connor, D. H., Huber, D., Svoboda, K. Reverse engineering the mouse brain. Nature. 461, 923-929 (2009).
  21. Boyden, E. S. Millisecond-timescale, genetically targeted optical control of neural activity. Nat. Neurosci. 8, 1263-1268 (2005).
  22. Zhang, F. Circuit-breakers: optical technologies for probing neural signals and systems. Nat. Rev. Neurosci. 8, 577-581 (2007).
  23. Royer, S. Multi-array silicon probes with integrated optical fibers: light-assisted perturbation and recording of local neural circuits in the behaving animal. Eur. J. Neurosci. 31, 2279-2291 (2010).
check_url/fr/3568?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Vandecasteele, M., M., S., Royer, S., Belluscio, M., Berényi, A., Diba, K., Fujisawa, S., Grosmark, A., Mao, D., Mizuseki, K., Patel, J., Stark, E., Sullivan, D., Watson, B., Buzsáki, G. Large-scale Recording of Neurons by Movable Silicon Probes in Behaving Rodents. J. Vis. Exp. (61), e3568, doi:10.3791/3568 (2012).

View Video