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Article de méthode

Reproductible écrasement du nerf sciatique de souris et l'évaluation subséquente de la régénération par l'analyse du Mont muscle entier

34.4K vues

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DOI :

10.3791/3606

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22 février 2012

 , 

Dans cet article

Résumé

Dans ce rapport, nous décrivons une méthode pour écraser la souris nerf sciatique. Cette méthode utilise facilement disponibles pinces hémostatiques et facilement et de façon reproductible produit complet écrasement du nerf sciatique. En outre, nous décrivons une méthode pour préparer montures de muscles entiers appropriés pour l'analyse de la régénération nerveuse après écrasement du nerf sciatique.

Résumé

La régénération dans le système nerveux périphérique (SNP) est largement étudié à la fois pour sa pertinence à la maladie humaine et de comprendre la réponse robuste régénérative montée par les neurones du SNP ce qui pourrait éclairant les échecs de la régénération du SNC 1. Écrasement du nerf sciatique (axonotmésis) est l'un des modèles les plus courants de lésion du nerf périphérique chez les rongeurs 2. Broyage interrompt tous les axones, mais lames de cellules de Schwann basale sont conservés afin que la régénération est optimal 3,4. Cela permet à l'enquêteur d'étudier précisément la capacité d'un axone en croissance pour interagir avec la cellule de Schwann et lames basales 4. Les rats ont généralement été les modèles animaux préférés pour écrasement du nerf expérimentale. Ils sont largement disponibles et leur sang-froid lésé sciatique fournit une approximation raisonnable de lésions nerveuses humaines 5,4. Bien que plus petit en taille que chez le rat nerf, le nerf de la souris a de nombreuses qualités similaires. Mais surtout, énormemodèles électroniques sont de plus en plus précieux en raison de la grande disponibilité de lignées transgéniques permet maintenant une dissection détaillée des molécules individuelles critiques pour la régénération du nerf 6, 7. Enquêteurs antérieures ont utilisé de multiples méthodes pour produire un écrasement du nerf ou d'une blessure, y compris de simples pinces angulaires, pinces, pinces hémostatiques réfrigérés, pinces vasculaires, et les colliers enquêteur conçus 8,9,10,11,12. Les enquêteurs ont également utilisé diverses méthodes de marquage du site, y compris des blessures de suture, des particules de carbone et de billes fluorescentes 13,14,1. Nous décrivons notre méthode pour obtenir un écrasement du nerf sciatique reproductible complète des informations exactes et persistante de marquage de l'écrasement site à l'aide d'une pince fine hémostatiques et de carbone suite à l'écrasement du site de marquage. Dans le cadre de notre description de la procédure écrasement du nerf sciatique, nous avons également inclus une méthode relativement simple de l'ensemble des muscles que nous utilisons pour monter ensuite de quantifier la régénération.

Protocole

1. Expérimentation animale

1,1. Traitement

  1. Toutes les procédures d'animaux doit être effectué avec l'approbation de protection des animaux de l'institution locale et Comité d'éthique et conformément à l'utilisation et du Comité et les National Institutes of Health des lignes directrices, avec les mesures prises pour minimiser la douleur et l'inconfort.
  2. Nos souris ont été logés dans des conditions contrôlées de température sur un feu de recul de 12 heures et le cycle de sombre, alors que la souris nourries chow et l'eau ad libitum.
  3. Pour les études de régénération des adultes, les sour....

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Discussion

Nous avons présenté une méthode pour obtenir un écrasement du nerf sciatique avec fiabilité complète marquage précis du site d'écrasement. Tel que mentionné précédemment, écrasement du nerf sciatique est un modèle commun de lésion du nerf périphérique chez la souris et les rats. Bien que chaque méthode d'écrasement a ses avantages et ses inconvénients, nous avons trouvé cette méthode produit un écrasement complet qui a été facile de marquer avec un minimum d'équipements spéciaux (p.ex. pinces spéciales, etc........

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Déclarations de divulgation

Nous n'avons rien à communiquer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par le NIH subventions K08NS065157 (à TAF) En outre, le Centre de Penn pour les troubles musculo-squelettiques, P30AR050950 Nombre Prix de l'Institut national de l'arthrite, les maladies musculo-squelettiques et la peau ont soutenu ce travail (TAF et Steven S. Scherer). Enfin, les Shriners de financement pédiatrique semences Research Center (TAF) a soutenu ce travail. Nous tenons à remercier le Dr Young-Jin Fils pour démontrer d'abord toute la montagne procédure et Amy A. Kim pour son aide dans la production des croquis de la figure 1.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Nom (description / quantité) Fournisseur Numéro de catalogue
Clipper Mini n ° 0000 de la lame Roboz RC-5903
Hair Remover Nair (9 onces) Eglise et Dwight Co., Inc N / A
Betadine scrub chirurgical (1 gallon) Fisher Scientific 19066452
Pommade ophtalmique (1 oz) Fisher Scientific 19082795

Outils chirurgicaux:

Nom (description / quantité) Fournisseur Numéro de catalogue
FST 250 Hot stérilisateur à billes Outils belle science 18000-45
Ciseaux Iris (11 cm de long) Instruments de précision du monde 500216
Potts-Smith forceps (droite; 18cm; 1x2 dents) Outils belle science 11024-18
McPherson Vannas Ciseaux (5 lames mm) Instruments de précision du monde 14124-G
Dumont # 5 - Pince Dumoxel standard Tip Outils belle science 11252-30
Dumont # 5/45 - Pince Dumoxel standard Tip Outils belle science 11251-35
Ultra fin (cylindrique hémostatiques; surfaces intérieures lisses) Outils belle science 13020-12
Charbon actif en poudre (500 g) Fisher Scientific C272-500
Taille 6-0 sutures avec C-1 aiguille (stérile, de la soie, noir, tressé,Non-absorbable; 18 "Longueur; Boîte de 36) Roboz SUT-1073-1011
Applicateur de clips Reflex (pour 9 clips mm) Instruments de précision du monde 500345
9mm en acier inoxydable Clips Reflex (100/boîte) Instruments de précision du monde 500346

Protection des animaux:

Nom (description / quantité) Fournisseur Numéro de catalogue
Injectable à 0,9% de chlorure de sodium (agent de conservation; 20 ml) Hospira 0409-4888-20
Système complet de couverture homéothermes avec sonde flexible (moyenne, 115 VAC, 60 Hz) Harvard Apparatus 507222F

Platfor chirurgicalem et écarteurs:

(Acheté chez votre quincaillerie locale)

Nom (description /) Quantité
Plate-forme en acier inoxydable (usiné; ~ 12 "x12" x1 / 8 ") 1
Aimants bouton (Exemple: Eclipse E825) 3
Boulons en acier inoxydable (3 "long; diamètre déterminé par aimants bouton) 3
Écrous en acier inoxydable (dimensionnée pour s'adapter à Boulons) 9
Elastiques (légère tension) 3
Pins d'insectes (les deux extrémités pour former des crochets Bent) 3

Semi-Minces:

Nom (description / quantité) Fournisseur </ Strong> Numéro de catalogue
Paraformaldéhyde (1 kg) Sigma-Aldrich P6148-1KG
Phosphate de sodium dibasique anhydre (500 g; Utilisé pour Préparer un tampon phosphate) Fisher Scientific S375-500
Phosphate de sodium monobasique anhydre (1 kg; Utilisé pour Préparer un tampon phosphate) Fisher Scientific AC38987-0010
Glutaraldéhyde (50%; 10 x 10 ml) Ted Pella, Inc 18431
Tétroxyde d'osmium (aqueuse à 4%, 10 x 10 ml) Ted Pella, Inc 18465
Oxyde de Propylène (450 ml) Ted Pella, Inc 18601
Embed 812 (Kit, pour les blocs durs ou de contraste d'image élevée) Sciences Electron Microscopy 14120
Toluidine Bleu (25 g) Ted Pella, Inc 19451

Whole Préparation musculaire mont et immunohistochimie:

Nom (description / quantité) Fournisseur Numéro de catalogue
Paraformaldéhyde (1 kg) Sigma-Aldrich P6148-1KG
Phosphate de sodium dibasique anhydre (500 g; Utilisé pour Préparer un tampon phosphate) Fisher Scientific S375-500
Phosphate de sodium monobasique anhydre (1 kg; Utilisé pour Préparer un tampon phosphate) Fisher Scientific AC38987-0010
10% de diluant BSA / solution de blocage (200 ml)

Kirkegaard & Perry Laboratories, Inc 50-61-00
Triton X-100 (100 mL) Dot scientifique Incorporated 9002-93-1
Glycine, 98% (1 kg) Fisher Scientific AC12007-0010
Tissue-Tek Cryo-OCT composé (Caisse de 12, 4 bouteilles oz) Fisher Scientific 14-373-65
Sylgard DOW 170 (2 Kit lb) Fisher Scientific NC9492579
Inoxydable Pins insectes en acier, taille 1 (100/PKG) Outils belle science 26001-40
Tétraméthylrhodamine-A-bungarotoxine (0,5 mg) Sigma-Aldrich T0195-.5MG
Anticorps monoclonal de souris contre SMI-312 (0,1 mL) Covance SMI-312R
Anticorps monoclonal de souris contre SV2 (0,1 ml) Des études de développement de la Banque d'hybridome (DSHB) SV2
Lapin PolyAnticorps contre clonale GAP-43 Novus Biologicals NB300-143
Flourescein conjugué de chèvre anti-IgG de souris, sous-classe 1 Fcy spécifique Jackson ImmunoResearch 11 5-095-205
DyLight 649 conjugué d'âne anti-IgG de lapin Jackson ImmunoResearch 711-495-152
4 ',6-diamidino-2-phénylindole (DAPI, dilactate; 10 mg) Invitrogen D3571
Vectashield Milieu de montage (10 ml) Vector Laboratories H-1000
Superfrost Plus Lames de microscope (blanc; Taille: 75 x 25 mm, paquet de 144) Fisher Scientific 12-550-15
Fisherfinest Lunettes de couverture Premium (Taille: 40 x 22 mm; Pack de 1 oz.) Fisher Scientific 12-548-5C

Références

  1. Pan, Y. A., Misgeld, T., Lichtman, J. W., Sanes, J. R. Effects of neurotoxic and neuroprotective agents on peripheral nerve regeneration assayed by time-lapse imaging in vivo. J. Neurosci. 23, 11479-11488 (2003).
  2. Magill, C., Tong, A., Kawamura, D., Hayashi, A., Hunter, D.

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Réimpressions et autorisations

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