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Article de méthode

Le test neuroblaste: Un test pour la génération et l'enrichissement des cellules souches neuronales à partir de différenciation des cellules souches neurales Progeny Par cytométrie en flux

14.2K vues

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DOI :

10.3791/3712

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22 avril 2012

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Dans cet article

Résumé

Ce protocole vidéo démontre une nouvelle méthode pour la génération et la purification ultérieure des cellules progénitrices neuronales à partir d'une source renouvelable de cellules souches neurales (CSN) en fonction de leur physique (taille et granularité interne) et les propriétés fluorescentes en utilisant la technologie de cytométrie en flux.

Résumé

Les cellules souches neurales (CSN) peuvent être isolés et élargi à grande échelle, en utilisant le test neurosphères et différenciés dans les trois principaux types de cellules du système nerveux central (SNC); à savoir, les astrocytes, oligodendrocytes et des neurones. Ces caractéristiques font de souches neurales et les cellules progénitrices une source inestimable renouvelable de cellules pour des études in vitro, tels que le dépistage des drogues, neurotoxicologie et l'électrophysiologie et aussi pour la thérapie de remplacement cellulaire dans de nombreuses maladies neurologiques. En pratique, cependant, l'hétérogénéité de la descendance NSC, la faible production de neurones et des oligodendrocytes, les astrocytes et la prédominance de la suite de différenciation limiter leurs applications cliniques. Ici, nous décrivons une nouvelle méthodologie pour la purification de production et subséquente des neurones immatures de NSC descendance murin utilisant la fluorescence tri cellulaire (FACS) de la technologie. En utilisant cette méthodologie, une population hautement enrichi de cellules souches neuronales peuvent être atteints d'espritHout toute astrocytes notable et de bonne foi la contamination NSC. La procédure comprend la différenciation des produits de filiation du NSC isolé et agrandi à partir de E14 éminences ganglionnaires de souris en utilisant le test neurosphères, suivie par l'isolement et l'enrichissement de cellules immatures neuronaux en fonction de leurs propriétés physiques (taille et la complexité interne) et fluorescente utilisant la technologie de cytométrie en flux. Dans l'ensemble, cela prend 5-7 jours pour générer neurosphères et 6-8 jours pour différencier descendance NSC et d'isoler hautement purifié des cellules neuronales immatures.

Protocole

1. Basic Set Up Avant de procéder à la culture cellulaire

  1. NeuroCult NSC milieu de base et les suppléments NeuroCult NSC prolifération sont mélangés à un rapport 9:1, respectivement, de faire du milieu complet NSC.
  2. Un bain à 37 ° C est utilisée pour réchauffer le milieu.
  3. Quantité appropriée de inactivé par la chaleur sérum de veau foetal (FCS) est décongelé.
  4. Quantité appropriée de solutions d'achat d'actions du facteur de croissance, y compris le facteur de croissance épidermique (EGF à 10 pg / ml), le facteur de croissance fibroblastique (b-FGF à 10 pg / ml) et 0,2% solution d'héparine dans un tampon phosphate sali....

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Discussion

La capacité d'isoler des populations définies de cellules neurales (neurones à savoir, astrocytes et oligodendrocytes) pourrait résoudre certains des obstacles associés à l'application clinique des cellules souches neurales (CSN). Tout d'abord, il nous permet de caractériser complètement la population de départ de cellules du donneur. Deuxièmement, il nous permet d'utiliser un type cellulaire particulier ou une combinaison de différents types de cellules avec un rapport spécifique, en fonction de la natu.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n'ont rien à révéler.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par le financement de la Fondation Overstreet.

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Matériaux

Nom du réactif Type Entreprise Numéro de catalogue Commentaires
NeuroCult NSC moyen basal Moyen Technologies des cellules souches 05700
NeuroCult NSC suppléments prolifération Supplément moyen Technologies des cellules souches 05701
0,05% de trypsine-EDTA Réactif Gibco 25300-062
Inhibiteur de trypsine de soja Réactif Sigma T6522
Pen / Strep Réactif Gibco 15140-122
* MEM Réactif Gibco 41500-018 Composante HEM
* Les HEPES Réactif Sigma H4034 Composante HEM
* L'eau distillée Réactif Gibco 15230-147
Tamis cellulaire Tamis BD Falcon 352340
T25 flacon Culture de la céramique Nalge Nunc internationale 136196
T80 flacon Culture de la céramique Nalge Nunc internationale 178905
Tubes de 15 ml Culture de la céramique BD Falcon 352096
Tubes de 50 ml Culture de la céramique BD Falcon 352070
EGF Facteur de croissance R & D 2028-EG
b-FGF Facteur de croissance R & D 3139-FB
Héparine Facteur de croissance Sigma H4784 Reconstitué dans du PBS
Anti-PSA-NCAM-PE Anticorps Miltenyi Biotec 130-093-274
IgG1 souris PE-conjugué Anticorps de contrôle isotypique BD Pharminogen 556029
Héparine Facteur de croissance Sigma H4784 Reconstitué dans du PBS
PMOrh-4 Facteur de croissance R & D 314-BP-010
Poly-L-Ornithine Réactif Sigma P4957
Sérum de veau foetal Supplément moyenne Gibco 10099-141
GFAP Anticorps DAKO Z0334
B-III tubuline Anticorps Promega G7121

* Pour faire HEM, mélange 1 sachet x L 10 du MEM et 160 ml de HEPES 1M et porter le volume à 8,75 L avec de l'eau distillée. Réglez le pH final à 7,4 et le conserver à 4 ° C.

Références

  1. Azari, H., Rahman, M., Sharififar, S., Reynolds, B. Isolation and Expansion of the Adult Mouse Neural Stem Cells Using the Neurosphere Assay. J. Vis. Exp. (45), e2393(2010).
  2. Azari, H., Sharififar, S., Rahman, M., Ansari, S., Reynolds, B. Establishing Embryonic Mouse....

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Réimpressions et autorisations

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