Summary

Yenidoğan Rat Beyin Dokusu Karışık Glial Hücre Kültürleri Primer mikroglia İzolasyonu

Published: August 15, 2012
doi:

Summary

Beynin hücresel heterojenite birincil mikroglia Yalıtımlı fizyolojik ve patolojik hem de kendi rolünü araştırmak için esastır. Bu protokol bir mekanik izolasyon ve yüksek verim ve yüksek saflıkta sağlar karışık hücre kültürü tekniği için geçerli birincil mikroglia hücreleri açıklar<em> In vitro</em> Çalışma ve aşağı uygulamaları.

Abstract

Memeli beyninde toplam hücresel nüfusunun yaklaşık% 12 için mikroglia hesabı. Nöronlar ve astrositler sinir sisteminin önemli hücre tipleri kabul edilirken, mikroglia enkaz ve patojenler için doku izlenmesi ve fagositik aktivite 1,2 ile parankiminde homeostazı koruyarak normal beyin fizyolojisi önemli bir rol oynamaktadır. Mikroglia nörodejeneratif hastalıklar, travmatik beyin hasarı ve sinir sistemi enfeksiyonu 3 de dahil olmak üzere yaralanma ve hastalık, bir dizi sırasında aktive edilir. Bu aktive edici koşullar altında, mikroglia, bunların fagositik aktiviteyi artırır morpohological ve proliferatif değişikliğe uğrar ve aktif reaktif oksijen ve nitrojen türlerinin, pro-inflamatuar kemokinler ve sitokinler salgılar, genellikle bir parakrin veya otokrin döngü 4-6 aktive. Bu mikroglial yanıtları nörolojik koşullarda hastalığı patogenezine katkıda gibi, araştırma m odaklandıicroglia garantilidir.

Beynin hücresel heterojenite nedeniyle, in vivo deneyler sırasında yüksek saflıkta yeterli mikroglial örnek materyal elde etmek teknik olarak zordur. Mikroglia nöroprotektif ve nörotoksik fonksiyonları üzerine Mevcut araştırma tutarlı çalışması için yeterli verimi ile saf ve sağlıklı mikroglia üretmek için rutin bir teknik yöntem gerektirir. Biz, metin ve video, aşağı çeşitli uygulamalar için karışık glia kültürlerden saf primer mikroglia izole etmek için bir protokol mevcut. Kısaca, bu tekniğin karışık glial hücre kültürü üretmek için yenidoğan sıçanların yavrularının ayrışmış beyin dokusu kullanır. Karışık glial kültürler konfluent ulaştıktan sonra, primer mikroglia mekanik çalkalama kısa bir süre ile kültür izole edilir. Mikroglia sonra deneysel çalışma için yüksek saflıkta kaplanıyor.

Bu yöntemin prensibi ve protokol olduLiteratürde 7,8 tarif. Buna ek olarak, birincil mikrogliya izole etmek için alternatif bir yöntem de 9-12 tarif edilmektedir. Homojenize beyin doku primer mikroglia 12 verim yoğunluk gradyanı santrifüjleme ile ayrılabilir. Ancak, orta boy santrifüjleme (45 dakika) ve hücre hasar ve aktivasyonu, aynı zamanda, zenginleştirilmiş mikroglia ve diğer hücre popülasyonları neden neden olabilir. Başka bir protokol kültürünün çalkalama 9-11 iken (16 saat) uzamış organizmalar çeşitli primer mikroglia izole etmek için kullanılmıştır. Çalkalandıktan sonra, süpernatan ortam mikroglia izole etmek için santrifüje tabi tutulur. Bu işlem iki aşamalı bir yöntem ayrıca izolasyonu mikrogliyal fonksiyonu ve aktivasyon karıştırmayı olabilir. Biz esas nedenlerle bir dizi için laboratuvar aşağıdaki mikroglia izolasyon protokolü kullanır: (1) primer mikroglia (2, daha sadık ölümsüzleştirdi kemirgen mikroglia hücre hatları daha vivo biyoloji simüle) Nominal mekanik bozulma potansiyeli hücresel disfonksiyon veya aktivasyon en aza indirir, ve (3) yeterli verim karışık glial hücre kültürlerinin geçiş olmadan elde edilebilir.

Bu protokol mikroglia yalıtmak için yenidoğan sıçanların yavrularının beyin dokusu kullanır ve mikroglia önemli ölçüde izole mikroglia verimi, aktivasyon durumu ve fonksiyonel özelliklerini etkileyebilir izole etmek için büyük sıçan kullanarak bu dikkat etmek önemlidir. Yaşlanma mikroglia disfonksiyon, artmış nöro-inflamasyonu ve nörodejeneratif patolojileri ile bağlantılı olduğuna dair kanıtlar vardır, bu nedenle önceki çalışmalarda yaşlanmanın önemli bir parametre olduğu daha iyi nörodejeneratif hastalıklarda mikroglia rolünü anlamak için ex vivo yetişkin mikroglia kullandık. Bununla birlikte, ex vivo mikrogliya uzun süreler için kültür tutulması mümkün değildir. Bu protokolün bir kültürü primer mikroglianın ömrünü uzatır iken, bu nedenle, bu mikrogliya d davranırlar not edilmelidirin vivo ortamda bir tercüme ettiğimizde ifferently yetişkin mikroglia gelen ve in vitro çalışmalar dikkatle düşünülmelidir.

Protocol

1. Yenidoğan Rat Beyin Dokusu diseksiyonu Chill Leibovitz L-15 şartlandırılmış ortam (Leibowitz L-15 +% 0.1 BSA, 1 +% Pen / Strep) ile 4 ° C. Sıcak kültür ortamına (DMEM% 10 FBS + +% 1 penisilin / streptomisin) 37 ° C'ye kadar Buz üzerinde klimalı L-15 medya 4-5 ml 4 60×15 mm Petri kapları hazırlayın. % 100 etanol ile tüm cerrahi aletleri sterilize edin. % 70 etanol ile P2 yenidoğan rap yavrular durulayın. (P1-P5 arası Yenidoğan sıçan yavrularının bu protokolü kullanı…

Discussion

Bu protokol rutin araştırma deneyleri için saf ve sağlıklı mikroglia üretmek için kullanılır iken, prosedürün kritik parçalar sırasında teknik yönlerini dikkatle düşünülmesi izole mikroglia değişkenliği en aza indirecektir. İlk olarak, zamanında çalışan yenidoğan sıçanların yavrularının beyin dokusu, diseksiyon sırasında doku hipoksik ve iskemik hasarı en aza indirmek için gereklidir. Ancak, meninksler varlığı bu kültür şartlarında hızlı çoğalma hızı nedeniyle önemli f…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Üniformalı Hizmetleri Üniversitesi intramural programı tarafından finanse edilmektedir.

Materials

Name of the reagent Company Catalog number Comments
60 mm x 15 mm Petri dishes Fisher brand 0875713A  
Sharp dissecting scissors Fine Science Tools 14094-11  
Dumont #7b forceps- standard tips, curved, 11cm Fine Science Tools 11270-20  
Dumont #5 forceps-standard tips, straight, 11 cm Fine Science Tools 11251-10  
50 ml conical centrifuge tubes VWR 89039-656  
5 ml serological pipettes Grenier Bio One 606180  
10 ml serological pipettes Grenier Bio One 607180  
100 μm sterile nylon cell strainer Falcon 35-2360  
75 cm2 tissue culture flasks Corning 430641  
Dulbecco’s minimal essential medium (DMEM) Gibco (Invitrogen) 31053-028  
Leibovitz’s L-15 medium Gibco (Invitrogen) 11415064  
Fetal bovine serum Gibco(Invitrogen) 16000-036  
Fetal equine serum Fisher SH3007402  
Penicillin-Streptomycin Gibco (Invitrogen) 15140163  
100% Ethanol The Warner Graham Company 64-17-5  
Phosphate buffered saline solution, 10X, pH 7.4 Quality Biological, inc. 119-069-131 1X in sterile, distilled water
Biohazard bags VWR 14220-028  
Haemocytometer Hausser Scientific 1492  
6-well cell culture plates with cellBIND surface Corning 3335  

References

  1. Ransohoff, R. M., Perry, V. H. Microglial physiology: unique stimuli, specialized responses. Annu. Rev. Immunol. 27, 119-145 (2009).
  2. Raivich, G., Bohatschek, M., Kloss, C. U., Werner, A., Jones, L. L., Kreutzberg, G. W. Neuroglial activation repertoire in the injured brain: graded response, molecular mechanisms and cues to physiological function. Brain Res. Brain Res. Rev. 30, 77-105 (1999).
  3. Loane, D. J., Byrnes, K. R. Role of microglia in neurotrauma. Neurotherapeutics. 7, 245-265 (2010).
  4. Glass, C. K., Saijo, K., Winner, B., Marchetto, M. C., Gage, F. H. Mechanisms underlying inflammation in neurodegeneration. Cell. 140, 918-934 (2010).
  5. Pocock, J. M., Liddle, A. C. Microglial signalling cascades in neurodegenerative disease. Prog. Brain Res. 132, 555-565 (2001).
  6. Block, M. L., Hong, J. S. Chronic microglial activation and progressive dopaminergic neurotoxicity. Biochem. Soc. Trans. 35, 1127-1132 (2007).
  7. Barger, S. W., Basile, A. S. Activation of microglia by secreted amyloid percursor protein evokes release of glutamate by cystine exchange and attenuates synpatic function. J. Neurochem. 76, 846-854 (2001).
  8. Ni, M., Aschner, M. Neonatal rat primary microglia: isolation, culturing, and selected applications. Curr. Protoc. Toxicol. Chapter 12, Unit 12.17 (2010).
  9. Hassan, N. F., Rifat, S., Campbell, D. E., McCawley, L. J., Douglas, S. D. Isolation and flow cytometric characterization of newborn mouse brain-derived microglia maintained in vitro. J. Leukoc. Biol. 50, 86-92 (1991).
  10. Hassan, N. F., Prakash, K., Chehimi, J., McCawley, L. J., Douglas, S. D. Isolation and characterization of newborn rabbit brain-derived microglia. Clin. Immunol. Immunopathol. 59, 426-435 (1991).
  11. Hassan, N. F., Campbell, D. E., Rifat, S., Douglas, S. D. Isolation and characterization of human fetal brain-derived microglia in in vitro culture. Neurosciences. 41, 149-158 (1991).
  12. Frank, M. G., Wieseler-Frank, J. L., Watkins, L. R., Maier, S. F. Rapid isolation of highly enriched and quiescent microglia from adult rat hippocampus: immunophenotypic and functional characteristics. J. Neurosci. Methods. 151, 121-130 (2006).
  13. Byrnes, K. R., Stoica, B., Loane, D. J., Riccio, A., Davis, M. I., Faden, A. I. Metabotropic glutamate receptor 5 activation inhibits microglial associated inflammation and neurotoxicity. Glia. 57, 550-560 (2009).
  14. Loane, D. J., Stoica, B. A., Pajoohesh-Ganji, A., Byrnes, K. R., Faden, A. I. Activation of metabotropic glutamate receptor 5 modulates microglial reactivity and neurotoxicity by inhibiting NADPH oxidase. J. Biol. Chem. 284, 15629-15639 (2009).
check_url/fr/3814?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Tamashiro, T. T., Dalgard, C. L., Byrnes, K. R. Primary Microglia Isolation from Mixed Glial Cell Cultures of Neonatal Rat Brain Tissue. J. Vis. Exp. (66), e3814, doi:10.3791/3814 (2012).

View Video