Summary

Préparer T facteur de croissance cellulaire à partir de splénocytes de rat

Published: October 31, 2007
doi:

Summary

Nous décrivons la préparation de facteur de croissance des lymphocytes T utilisée pour l'expansion in vitro de l'antigène spécifique de lignes T lymphocytes de rats.

Abstract

Entretien des lignes spécifiques de l'antigène des cellules T ou de clones en culture exige tours de l'antigène de l'activation induite séparées par des phases d'expansion de 1,2 cellule. Ajout de l'interleukine 2 au milieu de culture pendant la phase d'expansion est nécessaire pour prévenir la mort cellulaire et suffisantes pour maintenir à court terme des lignées de cellules T, mais a été montré pour augmenter la polarisation Th1 3. Remplacement de l'interleukine 2 par le facteur de croissance des cellules T (TCGF) qui contient un mélange de cytokines est plus efficace que l'interleukine 2 dans le maintien à long terme des lignées de cellules T in vitro 3. Par ailleurs, TCGF peut facilement être préparé en grandes quantités dans le laboratoire et est beaucoup moins cher que interleukine 2.

Ici, nous montrons comment préparer TCGF à partir de surnageants de culture de splénocytes de rats. Pour cette procédure, nous récoltons les rates de rats Lewis naïve euthanasiés pour le thymus et la collecte de sang. Nous préparons une seule cellule suspensions à partir des rates, lyser les globules rouges par choc osmotique, et les graines des splénocytes en milieu de culture. Les cellules sont stimulées par la concanavaline A, un mitogène que les non-sélective active tous les lymphocytes T chez le rat, induisant la production de cytokines. Le surnageant de culture sont recueillies 48 heures plus tard andexcess concanavaline A est lié à l'alpha méthyl mannoside pour l'empêcher d'activer lignées de cellules T à laquelle TCGF sera ajouté. Le TCGF est alors une filtration stérile, aliquotés et conservés à -20 ° C.

Protocol

Prenez rate rat Lewis (rats entre 160-200g sont les meilleurs). Dilacerate sur la glace dans une boîte de Pétri contenant du PBS + antibiotiques (PBS-PS) à l'aide d'une passoire cellule. Mettre dans un tube de 50 ml. Remplir avec du PBS-PS. Spin pendant 10 min à 4 ° C pour culotter les cellules. Laver les cellules deux fois. Reprendre le culot dans NH 4 Cl 0,15 M (5 ml par la rate). Mélanger doucement et en continu avec une pipette pendant 3 min sur la glace pour l…

Discussion

Nous préparons TCGF à partir de splénocytes de rats Lewis, depuis nous avons régulièrement euthanasier les rats naïfs de cette souche à la récolte de sérum et de stimuler la thymidine Lewis lignes rat cellules T in vitro. Cette TCGF peut être utilisé pour promouvoir la croissance et la survie des lignées de cellules T à partir de souches de rats d'autres. TCGF peuvent aussi être préparés à partir d'autres souches de rats.

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
PBS, 1x, sterile Reagent Gibco / Invitrogen 14040-182  
Penicillin / Streptomycin 100x Reagent Sigma P0781 Add 5 ml of 100x solution to 500 ml PBS to prepare PBS-PS
Cell strainer, 70 um diameter Tool Fisher 08-771-2  
Ammonium Chloride (NH4Cl) Reagent Sigma A0171 Prepare a 0.15 M solution in sterile distilled water, keep cold
RPMI 1640 Reagent Gibco / Invitrogen 21870-092  
Fetal Bovine Serum (FCS, FBS) Reagent Gibco / Invitrogen 16140-071 Heat-inactivated
Penicillin / Streptomycin / L-Glutamine Reagent Cambrex / Biowhittaker 17-718R PSG
RPMI vitamins, 100x Reagent Sigma R7256  
Sodium pyruvate, 100x Reagent Sigma S8636  
Non-essential amino acids, 100x Reagent Sigma    
Beta-mercaptoethanol Reagent Sigma M7522  
alpha methyl mannoside Reagent Sigma M6882  
Concanavalin A Reagent Sigma M6882  
To prepare complete culture medium add the following to a 500 ml bottle of RPMI 1640 and sterile-filter: 10% FCS; 1 bottle of PSG; 5 ml RPMI vitamins; 5 ml sodium pyruvate; 5 ml non-essential amino acids; 50 uM beta-mercaptoethanol; 2 ug/ml Concanavalin A.

References

  1. Beeton, C., Barbaria, J., Devaux, J., Benoliel, A. -. M., Gola, M., Sabatier, J. -. M., Bernard, D., Crest, M., Beraud, E. Selective blocking of voltage-gated K+ channels treats experimental autoimmune encephalomyelitis and inhibits T-cell activation. J. Immunol. 166, 936-944 (2001).
  2. Beeton, C., Wulff, H., Barbaria, J., Clot-Faybesse, O., Pennington, M., Bernard, D., Cahalan, M. D., Chandy, K. G., Beraud, E. Selective blockade of T lymphocyte K+ channels ameliorates experimental autoimmune encephalomyelitis, a model for multiple sclerosis. Proc. Natl. Acad. 98, 13942-13947 (2001).
  3. Mor, F., Cohen, I. R. Propagation of Lewis rat encephalitogenic T cell lines: T-cell-growth-factor is superior to recombinant IL-2. J. Neuroimmunol. 123, 76-82 (2002).
check_url/fr/402?article_type=t

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Citer Cet Article
Beeton, C., Chandy, K. G. Preparing T Cell Growth Factor from Rat Splenocytes. J. Vis. Exp. (10), e402, doi:10.3791/402 (2007).

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