Summary

Una expresión adecuada y el general de la Plataforma para la producción de proteínas secretadas por las células humanas

Published: July 31, 2012
doi:

Summary

En la era genómica post-humana, la disponibilidad de proteínas recombinantes en conformaciones nativas es crucial para la investigación estructural, funcional y terapéutico y el desarrollo. Aquí se describe una prueba a gran escala y sistema de expresión de proteínas en células embrionarias humanas de riñón 293T que se pueden utilizar para producir una variedad de proteínas recombinantes.

Abstract

Expresión de proteínas recombinantes en bacterias, típicamente E. coli, ha sido la estrategia de mayor éxito para la expresión cantidad miligramo de proteínas. Sin embargo, huéspedes procariotas son a menudo no es tan adecuado para la expresión de proteínas humanas, virales o eucarióticos, debido a la toxicidad de la macromolécula exterior, las diferencias en la maquinaria plegamiento de proteínas, o debido a la falta de modificaciones particulares co-o post-traslacional en bacterias. Los sistemas de expresión basados ​​en levadura (P. pastoris o S. cerevisiae) 1,2, baculovirus infectado insecto (S. frugiperda o T. ni) las células 3, y libre de células in vitro en los sistemas de traducción 2,4 han sido utilizados con éxito para producir proteínas de mamíferos. Intuitivamente, la mejor coincidencia es utilizar un huésped mamífero para asegurar la producción de proteínas recombinantes que contengan las adecuadas modificaciones post-traduccionales. Un número de líneas de células de mamíferos (Kid embriónico humanoney (HEK) 293, C V-1 en células O RIGEN que transportan el S V40 Larget antígeno T (COS), de ovario de hámster chino (CHO), y otros) se han utilizado con éxito para sobreexpresar cantidades de miligramos de un número de proteínas humanas 5-9. Sin embargo, las ventajas de utilizar células de mamífero son a menudo contrarrestada por mayores costos, requisito de equipo de laboratorio especializado, menores rendimientos de proteínas, y los tiempos prolongados para desarrollar líneas celulares estables de expresión. El aumento de rendimiento y las proteínas que producen más rápido, mientras mantiene los costos bajos, son factores importantes para muchos laboratorios académicos y comerciales.

A continuación, describimos un tiempo-y costo-eficiente, procedimiento en dos partes para la expresión de proteínas secretadas por las células humanas de adherentes HEK 293T. Este sistema es capaz de producir microgramos de cantidades de miligramos de proteína funcional para estudios estructurales, biofísicos y bioquímicos. La primera parte, las construcciones de múltiples del gen de interés son producird en paralelo y transfectadas transitoriamente en células HEK 293T adherentes en pequeña escala. La detección y el análisis de la proteína recombinante secretada en el medio de cultivo celular se lleva a cabo mediante análisis Western blot utilizando anticuerpos disponibles comercialmente dirigidos contra una proteína etiqueta vector codificado purificación. Posteriormente, las construcciones adecuadas para la producción de proteínas en gran escala son transfectadas transitoriamente utilizando polietilenimina (PEI) en fábricas de células 10-capa. Las proteínas secretadas en litros volúmenes de medio condicionado se concentran en cantidades manejables utilizando filtración de flujo tangencial, seguido de purificación por cromatografía de afinidad anti-HA. La utilidad de esta plataforma se demuestra por su capacidad para expresar cantidades de miligramos de citoquinas, receptores de citoquinas, receptores de la superficie celular, factores intrínsecos de restricción, y glicoproteínas virales. Este método también fue utilizado con éxito en la determinación estructural de los inhibidores de la glucoproteína 5,10 triméricas virus Ébola.

<p class = "jove_content"> En conclusión, esta plataforma ofrece la facilidad de uso, velocidad y escalabilidad, además de maximizar la calidad de la proteína y la funcionalidad. Por otra parte, ningún equipo adicional, que no sea de humidificado incubadora de CO 2, se requiere. Este procedimiento puede ser expandido rápidamente a los sistemas de mayor complejidad, tales como co-expresión de los complejos de proteínas, antígenos y anticuerpos, la producción de partículas similares a virus de vacunas, o la producción de adenovirus o lentivirus para la transducción de líneas celulares difíciles.

Protocol

1. Preparación del trabajo – Construcciones y Cultivos Celulares Antes de iniciar el protocolo, el gen de interés debe ser codón optimizado para la expresión en células de mamíferos, y se clonó en un vector de expresión apropiado utilizando técnicas estándar de biología molecular. Con el fin de asegurar la máxima probabilidad de éxito para la expresión, múltiples variantes del gen de interés se deben generar. Muchos vectores de expresión de mamíferos están disponibles comerc…

Discussion

Las fábricas de células 10-capa son un buque eficaz para la producción de cantidades de miligramos de proteína. Una ventaja importante del uso de la fábrica de células sobre otras embarcaciones tradicionales, tales como botellas de rodillos, matraces de agitación o spinner frascos, es que no requieren la compra de cualquier equipo de laboratorio adicional. Un estándar de incubadora de CO 2 (aproximadamente 6.0 pies cúbicos) fácilmente acomodar a cuatro capas de 10 fábricas de células (Fig….

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por un Ontario Tratamiento del VIH operativo de red Beca de Investigación (ROG-G645) y los Institutos Canadienses de Salud Investigator Award Nueva investigación (MSH-113554) de JEL, y la Universidad de Toronto Becas a la HA, la FCA, y JDC. Los autores desean agradecer a Marnie Fusco, Abelson Dafna y la Dra. Erica Saphire Ollmann en el Instituto de Investigación Scripps (La Jolla, CA) para las células que proporcionan, los virus Ébola vector de expresión GP y asesoramiento general.

Materials

Name of reagent Company Catalogue number Comments
Alkaline phosphatase (BCIP/NBT) liquid substrate solution Sigma B6404  
Antibiotic/Antimycotic, 100X Invitrogen 15240062  
Anti-HA affinity matrix, clone 3F10 Roche 1815016  
Anti-HA murine mAb, clone 16B12 Covance MMS-101P  
Cell culture flask, T75 cm2 tissue culture treated Corning 430641  
Cell culture flask, T225 cm2 tissue culture treated Corning 431082  
Cell culture plates,6-well tissue culture treated Corning 3516  
Cell factory, 10-layer CellSTACK Corning 3312  
Centramate Omega 5K Cassette Pall OS005C12  
Centramate Omega 30K Cassette Pall OS030C12  
Chromatography glass column, 1.0×10 cm Kontes 4204001010  
Ciprofloxacin Sigma 17850  
CO2      
Dulbecco’s modified Eagle’s media (DMEM) Sigma D5796  
Fetal bovine serum (FBS), heat inactivated Invitrogen 12484-028  
FuGENE HD transfection reagent Promega 4709691001  
GeneJuice transfection reagent EMD/Merck 70967-6  
Glycine Sigma G8898  
Goat anti-mouse IgG F(ab’)2 alkaline Thermo Scientific 31324  
phosphatase-conjugated antibody      
Hemagglutinin (HA) peptide, 100 mg Genscript custom synthesis  
(sequence: YPYDVPDYA; 95% purity)      
HEK 293T cells ATCC CRL-11268  
Household bleach (4% w/v sodium hypochlorite) various brands are available    
Immobilon-P PVDF membrane Millipore IPVH07850  
MiniPrep plasmid purification kit, PureLink Quick Invitrogen K2100-11  
MaxiPrep plasmid purification kit, PureLink HiPure Invitrogen K2100-07  
NaN3 Sigma S8032  
pDISPLAY expression vector Invitrogen V660-20  
Penicillin/streptomycin (pen/strep), 100X Invitrogen 15140-122  
Phosphate-buffered saline (PBS), sterile 1X Sigma D8537  
Polyethyleneimine (PEI), linear 25 kDa Polyscience 23966  
Skim milk dry powder Carnation    
Stericup-GP PES vacuum filtration unit, Millipore SCGPU05RE  
0.22 μm, 500 ml capacity      
Trypan blue Invitrogen 15250061  
Trypsin-EDTA, 0.05% (w/v) Invitrogen 25300-054  
Tween-20 Sigma P7949  
Valproic acid Sigma P4543  
Centramate tangential flow system Pall    
CO2 humidified incubator, standard 6.0 cu. ft. various brands are available    
Electrophoresis and transfer unit various brands are available    
Incubator, 37 °C various brands are available    

References

  1. Celik, E., Calik, P. Production of recombinant proteins by yeast cells. Biotechnol. Adv. , (2011).
  2. Yokoyama, S. Protein expression systems for structural genomics and proteomics. Curr. Opin. Chem. Biol. 7, 39-43 (2003).
  3. Nettleship, J. E., Assenberg, R., Diprose, J. M., Rahman-Huq, N., Owens, R. J. Recent advances in the production of proteins in insect and mammalian cells for structural biology. J. Struct. Biol. 172, 55-65 (2010).
  4. Carlson, E. D., Gan, R., Hodgman, C. E., Jewett, M. C. Cell-free protein synthesis: Applications come of age. Biotechnol. Adv. , (2011).
  5. Lee, J. E. Structure of the Ebola virus glycoprotein bound to an antibody from a human survivor. Nature. 454, 177-182 (2008).
  6. Bowden, T. A. Structural basis of Nipah and Hendra virus attachment to their cell-surface receptor ephrin-B2. Nat. Struct. Mol. Biol. 15, 567-572 (2008).
  7. Evans, M. J., Hartman, S. L., Wolff, D. W., Rollins, S. A., Squinto, S. P. Rapid expression of an anti-human C5 chimeric Fab utilizing a vector that replicates in COS and 293 cells. J. Immunol. Methods. 184, 123-138 (1995).
  8. Ye, J. High-level protein expression in scalable CHO transient transfection. Biotechnol. Bioeng. 103, 542-551 (2009).
  9. Wurm, F. M. Production of recombinant protein therapeutics in cultivated mammalian cells. Nat Biotechnol. 22, 1393-1398 (2004).
  10. Lee, J. E., Fusco, M. H., Hessell, A. J., Burton, D. R., Saphire, E. O. Techniques and tactics used in determining the structure of trimeric, prefusion Ebola virus GP. Acta Cryst. 65, 1162-1180 (2009).
  11. Aricescu, A. R. Eukaryotic expression: developments for structural proteomics. Acta. Crystallogr. D Biol. Crystallogr. 62, 1114-1124 (2006).
  12. Aricescu, A. R., Lu, W., Jones, E. Y. A time- and cost-efficient system for high-level protein production in mammalian cells. Acta. Crystallogr. D Biol. Crystallogr. D62, 1243-1250 (2006).
  13. Chang, V. T. Glycoprotein structural genomics: solving the glycosylation problem. Structure. 15, 267-273 (2007).
  14. Lee, J. E., Fusco, M. H., Saphire, E. O. An efficient platform for screening expression and crystallization of glycoproteins produced in human cells. Nature Protocols. 4, 592-604 (2009).
  15. Nettleship, J. E., Rahman-Huq, N., Owens, R. J. The production of glycoproteins by transient expression in Mammalian cells. Methods Mol. Biol. 498, 245-263 (2009).
  16. Neil, S. J., Zang, T., Bieniasz, P. D. Tetherin inhibits retrovirus release and is antagonized by HIV-1 Vpu. Nature. 451, 425-430 (2008).
  17. Nakamura, Y. Heterodimerization of the IL-2 receptor beta- and gamma-chain cytoplasmic domains is required for signalling. Nature. 369, 330-333 (1994).
  18. Wang, X., Rickert, M., Garcia, K. C. Structure of the quaternary complex of interleukin-2 with its alpha, beta, and gammac receptors. Science. 310, 1159-1163 (2005).
check_url/fr/4041?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Aydin, H., Azimi, F. C., Cook, J. D., Lee, J. E. A Convenient and General Expression Platform for the Production of Secreted Proteins from Human Cells. J. Vis. Exp. (65), e4041, doi:10.3791/4041 (2012).

View Video