Summary

En bekvem og General Expression Platform for produktion af secernerede proteiner fra humane celler

Published: July 31, 2012
doi:

Summary

I den post-humane genom-æraen, er tilgængeligheden af ​​rekombinante proteiner i native konformationer afgørende for strukturel, funktionel og terapeutisk forskning og udvikling. Her beskriver vi en test-og store protein-ekspressionssystem i humane embryoniske nyre 293T-celler, som kan anvendes til fremstilling af en række af rekombinante proteiner.

Abstract

Rekombinant protein ekspression i bakterier, typisk E. coli, har været den mest succesfulde strategi for milligram mængde ekspression af proteiner. Imidlertid prokaryote værter er ofte ikke så egnet til ekspression af humane, virale eller eukaryote proteiner på grund af toksicitet af det fremmede makromolekylet, forskelle i proteinfoldning maskinen eller på grund af manglen på bestemte co-eller post-translationelle modifikationer i bakterier. Ekspressionssystemer baseret på gær (P. pastoris eller S. cerevisiae) 1,2, baculovirus-inficerede insektceller (S. frugiperda eller T. ni) celler 3, og cellefri translation de vitro systemer 2,4 succes er blevet anvendt til at producerer mammale proteiner. Intuitivt det bedste match er at anvende en mammal vært til at sikre produktionen af ​​rekombinante proteiner, der indeholder de korrekte post-translationelle modifikationer. Et antal pattedyrscellelinier (Human Embryonic børneney (HEK) 293, er C V-1-celler i O rigin bærer S V40 indikativpris T-antigen (COS), kinesisk hamsterovarie (CHO), og andre) er blevet anvendt med succes til at overudtrykke milligram-mængder af en række humane proteiner 5-9. Imidlertid er fordelene ved at bruge pattedyrceller imødegås ofte med højere omkostninger, krav om specialiseret laboratorieudstyr, lavere protein udbytter, og lange gange for at udvikle stabile udtryk cellelinjer. Øget udbytte og producerer proteiner hurtigere, og samtidig holde omkostningerne nede, er vigtige faktorer for mange akademiske og kommercielle laboratorier.

Her beskriver vi en tids-og omkostningseffektiv, todelt fremgangsmåde til ekspression af secernerede humane proteiner fra adhærente HEK 293T-celler. Dette system er i stand til at frembringe mikrogram til milligram-mængder af funktionelt protein for strukturelle, biofysiske og biokemiske undersøgelser. Den første del, multiple konstruktioner af genet af interesse er producered parallelt og forbigående transficeret ind i omliggende HEK-293T celler i lille skala. Påvisning og analyse af rekombinant protein secerneret i cellekulturmediet udføres ved western blot-analyse under anvendelse af kommercielt tilgængelige antistoffer rettet mod en vektor-kodede protein rensnings-taggen. Efterfølgende egnede konstruktioner til proteinproduktion i stor skala produktion transient transficeret med polyethylenimin (PEI) i 10 lag cellefabrikker. Proteiner udskilt i l-volumener af konditioneret medium er koncentreret i håndterbare størrelse ved hjælp af tangentielstrømningsfiltrering, efterfulgt af oprensning af anti-HA-affinitetskromatografi. Anvendeligheden af ​​denne platform påvises ved dets evne til at udtrykke milligram-mængder af cytokiner, cytokin-receptorer, celleoverfladereceptorer, iboende begrænsninger faktorer og virale glycoproteiner. Denne fremgangsmåde blev også med held anvendt i strukturel bestemmelse af de trimere ebolavirus glycoprotein 5,10.

<p cpige = "jove_content"> Som konklusion, denne platform tilbyder brugervenlighed, hastighed og skalerbarhed og samtidig maksimere protein kvalitet og funktionalitet. Desuden kræves der ingen yderligere udstyr, undtagen en standard befugtet CO2-inkubator, der kræves. Denne procedure kan hurtigt udvides til systemer med større kompleksitet, såsom co-ekspression af protein-komplekser, antigener og antistoffer, fremstillingen af ​​viruslignende partikler til vacciner, eller produktion af adenovira eller lentivira til transduktion af vanskelige cellelinier.

Protocol

1. Forberedende arbejde – konstruktioner og cellekulturer Før start protokollen skal genet af interesse være kodon-optimeret til ekspression i pattedyrceller, og klonet ind i en passende ekspressionsvektor ved anvendelse af standard molekylærbiologiske teknikker. For at sikre den højeste chance for vellykket ekspression bør multiple varianter af genet af interesse blive genereret. Mange mammale ekspressionsvektorer er kommercielt tilgængelige og har forskellige oprensningsmetoder tags (p…

Discussion

De 10-lags cellefabrikker er en effektiv beholder til fremstilling af milligram-mængder af protein. En væsentlig fordel ved at anvende cellefabrikken i forhold til andre traditionelle beholdere, såsom rulleflasker og rystekolber eller spinnerkolber, er, at de ikke kræver køb af yderligere laboratorieudstyr. En standard CO 2 inkubator (ca. 6,0 cu. Ft) vil nemt rumme fire 10-lags cellefabrikker (fig. 2). Desuden kræver disse fartøjer mindre arbejdskrævende og plads end retter, kolber el…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af en Ontario hiv-behandling Network Research driftstilskud (ROG-G645) og canadiske Institutes of Health Research New Investigator Award (MSH-113.554) til JEL, og University of Toronto stipendier til HA, FCA, og JDC. Forfatterne vil gerne takke Marnie Fusco, Dafna Abelson og Dr. Erica Ollmann Saphire på The Scripps Research Institute (La Jolla, CA) for at give celler, ebolavirus GP ekspressionsvektoren og generel rådgivning.

Materials

Name of reagent Company Catalogue number Comments
Alkaline phosphatase (BCIP/NBT) liquid substrate solution Sigma B6404  
Antibiotic/Antimycotic, 100X Invitrogen 15240062  
Anti-HA affinity matrix, clone 3F10 Roche 1815016  
Anti-HA murine mAb, clone 16B12 Covance MMS-101P  
Cell culture flask, T75 cm2 tissue culture treated Corning 430641  
Cell culture flask, T225 cm2 tissue culture treated Corning 431082  
Cell culture plates,6-well tissue culture treated Corning 3516  
Cell factory, 10-layer CellSTACK Corning 3312  
Centramate Omega 5K Cassette Pall OS005C12  
Centramate Omega 30K Cassette Pall OS030C12  
Chromatography glass column, 1.0×10 cm Kontes 4204001010  
Ciprofloxacin Sigma 17850  
CO2      
Dulbecco’s modified Eagle’s media (DMEM) Sigma D5796  
Fetal bovine serum (FBS), heat inactivated Invitrogen 12484-028  
FuGENE HD transfection reagent Promega 4709691001  
GeneJuice transfection reagent EMD/Merck 70967-6  
Glycine Sigma G8898  
Goat anti-mouse IgG F(ab’)2 alkaline Thermo Scientific 31324  
phosphatase-conjugated antibody      
Hemagglutinin (HA) peptide, 100 mg Genscript custom synthesis  
(sequence: YPYDVPDYA; 95% purity)      
HEK 293T cells ATCC CRL-11268  
Household bleach (4% w/v sodium hypochlorite) various brands are available    
Immobilon-P PVDF membrane Millipore IPVH07850  
MiniPrep plasmid purification kit, PureLink Quick Invitrogen K2100-11  
MaxiPrep plasmid purification kit, PureLink HiPure Invitrogen K2100-07  
NaN3 Sigma S8032  
pDISPLAY expression vector Invitrogen V660-20  
Penicillin/streptomycin (pen/strep), 100X Invitrogen 15140-122  
Phosphate-buffered saline (PBS), sterile 1X Sigma D8537  
Polyethyleneimine (PEI), linear 25 kDa Polyscience 23966  
Skim milk dry powder Carnation    
Stericup-GP PES vacuum filtration unit, Millipore SCGPU05RE  
0.22 μm, 500 ml capacity      
Trypan blue Invitrogen 15250061  
Trypsin-EDTA, 0.05% (w/v) Invitrogen 25300-054  
Tween-20 Sigma P7949  
Valproic acid Sigma P4543  
Centramate tangential flow system Pall    
CO2 humidified incubator, standard 6.0 cu. ft. various brands are available    
Electrophoresis and transfer unit various brands are available    
Incubator, 37 °C various brands are available    

References

  1. Celik, E., Calik, P. Production of recombinant proteins by yeast cells. Biotechnol. Adv. , (2011).
  2. Yokoyama, S. Protein expression systems for structural genomics and proteomics. Curr. Opin. Chem. Biol. 7, 39-43 (2003).
  3. Nettleship, J. E., Assenberg, R., Diprose, J. M., Rahman-Huq, N., Owens, R. J. Recent advances in the production of proteins in insect and mammalian cells for structural biology. J. Struct. Biol. 172, 55-65 (2010).
  4. Carlson, E. D., Gan, R., Hodgman, C. E., Jewett, M. C. Cell-free protein synthesis: Applications come of age. Biotechnol. Adv. , (2011).
  5. Lee, J. E. Structure of the Ebola virus glycoprotein bound to an antibody from a human survivor. Nature. 454, 177-182 (2008).
  6. Bowden, T. A. Structural basis of Nipah and Hendra virus attachment to their cell-surface receptor ephrin-B2. Nat. Struct. Mol. Biol. 15, 567-572 (2008).
  7. Evans, M. J., Hartman, S. L., Wolff, D. W., Rollins, S. A., Squinto, S. P. Rapid expression of an anti-human C5 chimeric Fab utilizing a vector that replicates in COS and 293 cells. J. Immunol. Methods. 184, 123-138 (1995).
  8. Ye, J. High-level protein expression in scalable CHO transient transfection. Biotechnol. Bioeng. 103, 542-551 (2009).
  9. Wurm, F. M. Production of recombinant protein therapeutics in cultivated mammalian cells. Nat Biotechnol. 22, 1393-1398 (2004).
  10. Lee, J. E., Fusco, M. H., Hessell, A. J., Burton, D. R., Saphire, E. O. Techniques and tactics used in determining the structure of trimeric, prefusion Ebola virus GP. Acta Cryst. 65, 1162-1180 (2009).
  11. Aricescu, A. R. Eukaryotic expression: developments for structural proteomics. Acta. Crystallogr. D Biol. Crystallogr. 62, 1114-1124 (2006).
  12. Aricescu, A. R., Lu, W., Jones, E. Y. A time- and cost-efficient system for high-level protein production in mammalian cells. Acta. Crystallogr. D Biol. Crystallogr. D62, 1243-1250 (2006).
  13. Chang, V. T. Glycoprotein structural genomics: solving the glycosylation problem. Structure. 15, 267-273 (2007).
  14. Lee, J. E., Fusco, M. H., Saphire, E. O. An efficient platform for screening expression and crystallization of glycoproteins produced in human cells. Nature Protocols. 4, 592-604 (2009).
  15. Nettleship, J. E., Rahman-Huq, N., Owens, R. J. The production of glycoproteins by transient expression in Mammalian cells. Methods Mol. Biol. 498, 245-263 (2009).
  16. Neil, S. J., Zang, T., Bieniasz, P. D. Tetherin inhibits retrovirus release and is antagonized by HIV-1 Vpu. Nature. 451, 425-430 (2008).
  17. Nakamura, Y. Heterodimerization of the IL-2 receptor beta- and gamma-chain cytoplasmic domains is required for signalling. Nature. 369, 330-333 (1994).
  18. Wang, X., Rickert, M., Garcia, K. C. Structure of the quaternary complex of interleukin-2 with its alpha, beta, and gammac receptors. Science. 310, 1159-1163 (2005).
check_url/fr/4041?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Aydin, H., Azimi, F. C., Cook, J. D., Lee, J. E. A Convenient and General Expression Platform for the Production of Secreted Proteins from Human Cells. J. Vis. Exp. (65), e4041, doi:10.3791/4041 (2012).

View Video