Summary

Optisk registrering av suprathreshold nevrale aktiviteten med encellede og single-spike oppløsning

Published: September 05, 2012
doi:

Summary

Forstå funksjonen av virveldyr sentralnervesystemet trenger opptak fra mange neuroner fordi kortikal funksjon oppstår på nivået av populasjoner av nerveceller. Her beskriver vi en optisk metode for å registrere suprathreshold nevrale aktiviteten med encellede og single-spike oppløsning, rastrert tilfeldig tilgang skanning. Denne metoden registrerer somatiske fluorescens kalsium signaler fra opptil 100 nevroner med høy tidsoppløsning. Maksimalt-likelihood algoritme deconvolves den underliggende suprathreshold nevrale aktiviteten fra de somatiske fluorescens kalsium signaler. Denne metoden registrerer pålitelig pigger med høy deteksjon virkningsgrad og lav hastighet på falske positiver og kan brukes til å studere nevrale populasjoner<em> In vitro</em> Og<em> In vivo</em>.

Abstract

Signaliserer informasjon i virveldyr sentrale nervesystemet er ofte båret av populasjoner av nerveceller i stedet for individuelle nerveceller. Også spredning av suprathreshold skyter aktivitet innebærer bestander av nerveceller. Empiriske studier adressering kortikal funksjon direkte dermed kreve opptak fra populasjoner av nerveceller med høy oppløsning. Her beskriver vi en optisk metode og et dekonvolusjon algoritme for å registrere nevrale aktiviteten fra opp til 100 nevroner med encellede og single-spike oppløsning. Denne metoden er avhengig av påvisning av forbigående økninger i intracellulær somatisk kalsiumkonsentrasjon forbundet med suprathreshold elektriske spikes (aksjonspotensialer) i kortikale nevroner. Høy tidsoppløsning av de optiske opptak oppnås ved en rask tilfeldig tilgang skanning teknikken med Akusto optiske deflektorer (AODs) 1. To-foton eksitasjon av kalsium-følsom dye resulterer i høy romlig oppløsning i ugjennomsiktig hjernen tissaksøke 2. Rekonstruksjon av pigger fra fluorescens kalsium opptak oppnås ved en maksimum-likelihood metoden. Samtidige elektrofysiologiske og optiske innspillinger indikerer at vår metode pålitelig registrerer spisser (> 97% topp deteksjon effektivitet), har en lav hastighet på falske positive spike deteksjon (<0,003 pigger / s), og en høy tidsmessig presisjon (ca 3 ms) 3. Denne optisk metode til nålen deteksjon kan brukes til å registrere nevrale aktivitet de vitro og i bedøvede dyr in vivo 3,4.

Protocol

1. Optisk oppsett (figur 1) For to-foton eksitasjon en infrarød pulset laser-system med femtosecond pulser brukes. En høy laser utgangseffekt (i noen tilfeller> 2W ved 890 nm bølgelengde) er nødvendig for å oppveie de store tap introdusert av de optiske komponentene i systemet. En prechirper system bestående av to prismer formidler et negativ gruppehastighet dispersjon (GVD) bort på laserpulser forut for de akusto-optiske deflektorer (AODs) for å kompensere for den temporale dispersjon in…

Discussion

Utjamna tilfeldig tilgang skanning oppdager indirekte suprathreshold skyter aktivitet fra økninger i intracellulært somatisk kalsium knyttet til hver topp i et nevron somata. Økningene i intracellulær kalsium oppdages av fluorescerende kalsium fargestoffer. Begrensningene ved rastrert tilfeldig tilgang skanning oppstå i hovedsak fra den begrensede signal-til-støy-forhold av kalsium fluorescence signaler. Signal-til-støy-forhold er i sin tur er begrenset av photodamage, som ikke tillater bruk av høye eksitasjon p…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Dr. Randy Chitwood for kritisk lesing av manuskriptet. Dette arbeidet ble støttet av Whitehall Foundation og Alfred P. Sloan Foundation tilskudd til HJK.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
      Optical components are listed in order, starting from the laser
Titan:Sapphire Laser Coherent Inc. Chameleon Ultra 2 High power output recommended (>2W at 900 nm)
Achromatic lens f = 30 mm Thor labs AC254-030-B Anti-reflection (AR) coating for 650-1050 nm
Achromatic lens f = 100 mm Thor labs AC254-100-B AR 650-1050 nm
lens f = 75 mm Thor labs LA1608-B AR 650-1050 nm
lens f = 175 mm Thor labs LA1229-B AR 650-1050 nm
Achromatic lens f = 300 mm Thor labs AC254-300-B AR 650-1050 nm
Achromatic lens f = 100 mm Thor labs AC254-100-B AR 650-1050 nm
Achromatic lens f = 100 mm Thor labs AC254-100-B AR 650-1050 nm
Acousto-optical deflectors Intraaction Corp ATD 6510CD2  
Reflective diffraction grating Newport 53-011R 100 grooves/mm for AODs with 65 MHz bandwidth and scan angle of 45 mrad
21.6 mm Brewster prisms Lambda Research Optics Inc. IBP21.6SF10  
Colored Glass Schott BG-39  
Dichroic mirror Chroma Technology Corp Z532RDC  
Photomultiplier modules Hamamatsu H9305-03  
DAC-ADC board National Instruments PCI-6115  
Oregon Green 488 Bapta-1 AM Invitrogen O-6807  

References

  1. Iyer, V., Hoogland, T. M., Saggau, P. Fast functional imaging of single neurons using random-access multiphoton (RAMP) microscopy. J. Neurophysiol. 95, 535-545 (2006).
  2. Denk, W., Strickler, J. H., Webb, W. W. Two-photon laser scanning fluorescence microscopy. Science. 248, 73 (1990).
  3. Ranganathan, G. N., Koester, H. J. Optical recording of neuronal spiking activity from unbiased populations of neurons with high spike detection efficiency and high temporal precision. J. Neurophysiol. 104, 1812-1824 (2010).
  4. Grewe, B. F., Langer, D., Kasper, H., Kampa, B. M., Helmchen, F. High-speed in vivo calcium imaging reveals neuronal network activity with near-millisecond precision. Nat. Methods. 7, 399-405 (2010).
  5. Stosiek, C., Garaschuk, O., Holthoff, K., Konnerth, A. In vivo two-photon calcium imaging of neuronal networks. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 100, 7319-7324 (2003).
  6. Pita-Almenar, J. D., Ranganathan, G. N., Koester, H. J. Impact of cortical plasticity on information signaled by populations of neurons in the cerebral cortex. J. Neurophysiol. 106, 1118-1124 (2011).
  7. Kerr, J. N., Greenberg, D., Helmchen, F. Imaging input and output of neocortical networks in vivo. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 102, 14063-14068 (2005).
  8. Lin, B. J., Chen, T. W., Schild, D. Cell type-specific relationships between spiking and [Ca2+]i in neurons of the Xenopus tadpole olfactory bulb. J. Physiol. 582, 163-175 (2007).
  9. Zeng, S., Lv, X., Zhan, C., Chen, W. R. Simultaneous compensation for spatial and temporal dispersion of acousto-optical deflectors for two-dimensional scanning with a single prism. Opt. Lett. 31, 1091-1093 (2006).
  10. Otsu, Y., Bormuth, V., Wong, J., Mathieu, B. Optical monitoring of neuronal activity at high frame rate with a digital random-access multiphoton (RAMP) microscope. J. Neurosci. Methods. 173, 259-270 (2008).
  11. Vogelstein, J. T., Watson, B. O., Packer, A. M., Yuste, R. Spike inference from calcium imaging using sequential Monte Carlo methods. Biophys. J. 97, 636-655 (2009).
  12. Yaksi, E., Friedrich, R. W. Reconstruction of firing rate changes across neuronal populations by temporally deconvolved Ca2+ imaging. Nat. Methods. 3, 377-383 (2006).
  13. Hendel, T., Mank, M., Schnell, B., Griesbeck, O. Fluorescence changes of genetic calcium indicators and OGB-1 correlated with neural activity and calcium in vivo and in vitro. J. Neurosci. 28, 7399-7411 (2008).
  14. Ranganathan, G. N., Koester, H. J. Correlations decrease with propagation of spiking activity in the mouse barrel cortex. Front Neural Circuits. 5, 8 (2011).
check_url/fr/4052?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Ranganathan, G. N., Koester, H. J. Optical Recording of Suprathreshold Neural Activity with Single-cell and Single-spike Resolution. J. Vis. Exp. (67), e4052, doi:10.3791/4052 (2012).

View Video