Summary

La cartographie des réseaux fonctionnels bactériens et voies de<em> Escherichia Coli</em> En utilisant des tableaux synthétiques génétiques

Published: November 12, 2012
doi:

Summary

Systématiques et à grande échelle de synthèse génétiques écrans d'interaction gène-gène (ou épistasie) peut être utilisé pour explorer la redondance génétique et la voie de la diaphonie. Ici, nous décrivons un haut débit quantitatif synthétique de la technologie génétique de dépistage tableau, appelé ESGA que nous avons développé pour élucider les relations épistatiques et l'exploration des réseaux d'interactions génétiques<em> Escherichia coli</em>.

Abstract

Phénotypes sont déterminés par une série complexe de physique (par exemple protéine-protéine) et fonctionnelle (p. ex gène-gène ou génétique) des interactions (GI) 1. Alors que les interactions physiques peuvent indiquer quelles protéines bactériennes sont associées sous forme de complexes, ils ne révèlent pas nécessairement la voie au niveau relationships1 fonctionnels. Écrans GI, dans lequel la croissance des doubles mutants porteurs de deux gènes délétés ou inactivés est mesurée et comparée aux simples mutants correspondants, peut éclairer les dépendances entre les loci épistatiques et donc de fournir un moyen pour interroger et découvrir de nouveaux liens fonctionnels 2. Cartes à grande échelle GI ont été rapportés pour les organismes eucaryotes comme les levures 3-7, mais les informations restent rares IG pour les procaryotes 8, ce qui entrave l'annotation fonctionnelle des génomes bactériens. À cette fin, nous et d'autres avons développé à haut débit quantitatives bactériennes méthodes de dépistage GI 9, 10 </sup>.

Nous présentons ici les principales étapes requises pour effectuer quantitative E. coli synthétique procédure de dépistage génétique Array (ESGA) sur une échelle du génome 9, en utilisant la conjugaison bactérienne naturelle et la recombinaison homologue pour générer et systémique pour évaluer la justesse d'un grand nombre de doubles mutants dans un format de tableau colonie. bref, un robot est utilisé pour transférer , grâce à la conjugaison, le chloramphénicol (Cm) – a marqué allèles mutants de Hfr ingénierie (haute fréquence de recombinaison) «souches donateurs dans un ensemble ordonné de kanamycine (Kan) – marqués F-bénéficiaires souches. Typiquement, nous utilisons la perte de fonction simples mutants portant des délétions de gènes non essentiels (par exemple, la collection «Keio '11) et des mutations de gènes essentiels hypomorphes (allèles conférant à savoir l'expression des protéines réduite, la stabilité ou l'activité 9, 12, 13) interroger les associations fonctionnelles de gènes non essentiels et indispensables, respectivement. Après conjugaison et qui a suivi l'échange génétique induite par recombinaison homologue, les mutants résultants doubles sont sélectionnés sur milieu solide contenant deux antibiotiques. Après conséquence, les plaques sont numériquement imagée et la taille des colonies sont quantitativement classé par un système interne automatisé de traitement d'image 14. Les IG sont révélés lorsque le taux de croissance d'un double mutant est soit significativement meilleure ou pire que 9 attendu. Aggravante (ou négative) des IG entraînent souvent entre la perte de fonction des mutations dans les gènes de paires de voies compensatoires qui empiètent sur ​​le même processus essentiel 2. Ici, la perte d'un seul gène est tamponnée, de sorte que soit seul mutant est viable. Cependant, la perte des deux voies est délétère et les résultats de létalité synthétique ou de maladie (c.-à croissance lente). A l'inverse, apaisantes (ou positif) des interactions entre les gènes peuvent se produire dans la même voie ou de protéines complexes 2 commedélétion de gène supporte seul est souvent suffisante pour perturber le fonctionnement normal de la voie ou complexes tels que des perturbations supplémentaires ne réduisent pas l'activité, et donc la croissance, en outre. Dans l'ensemble, l'identification systématique et l'analyse des réseaux IG peut fournir sans parti pris, des cartes mondiales des relations fonctionnelles entre un grand nombre de gènes, d'où la voie au niveau de l'information manquée par d'autres approches peuvent être inférées 9.

Protocol

1. Construction de souches Hfr donatrices Cavalli Mutant par Recombineering 15, 16 Les étapes de la construction des taches donateurs ESGA sont décrits ci-dessous. En bref, nous utilisons λ ciblée – Rouge médiation recombinaison homologue 16 de cassette d'ADN amplifié marqueur de sélection des fragments générés par PCR pour créer non essentiels mutants de délétion de gènes (section 1.1) ou de gènes essentiels hypomorphes souches mutante…

Representative Results

GIs reveal functional relationships between genes. Similarly, since genes in the same pathway display similar GI patterns and the GI profile similarity represents the congruency of phenotypes, we can group functionally related genes into pathways by clustering their GI profiles. Integrating GI and GI correlation networks with physical interaction information or other association data, such as genomic context (GC) relationships can also reveal the organization of higher-order functional modules that define core bio…

Discussion

Nous avons établi un protocole étape par étape pour l'utilisation de robotique de dépistage ESGA pour enquêter sur les fonctions des gènes bactériens à un niveau voie en interrogeant GI. Cette approche peut être utilisée pour étudier les gènes individuels ainsi que les systèmes biologiques entières dans E. coli. Attentivement l'exécution des étapes expérimentales décrites ci-dessus, y compris tous les contrôles appropriés, et rigoureusement l'analyse et la validation des données…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par des fonds de Génome Canada, l'Ontario Genomics Institute, et les Instituts de recherche en santé subventions à JG et AE AG est récipiendaire de bourses d'études supérieures du Canada Vanier.

Materials

        I. Antibiotics 2 36471
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Chloramphenicol   Bioshop #CLR201   3 36472
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Kanamycin     #KAN201   4 36480
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Ampicillin     # AMP201   5 36473
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        2. Luria-Bertani medium 6 36474
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LB powder   Bioshop #LBL405   7 36478
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Agar   Bioshop #AGR003   8 36481
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        3. Bacterial Strains and Plasmids 9 36475
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Hfr Cavalli strain λred system (JL238)   Babu et al.14.     10 36476
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pKD3   E. coli Genetic Stock Centre, Yale     11 36477
Remove
Keio E. coli F- recipient collection   National BioResource Project (NBRP) of Japan11     12 36479
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Hypomorphic E. coli F- SPA-tag strains   Open biosystems; Babu et al.14     13 36491
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        4. Primers 14 36486
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pKD3-based desalted constant primers       F1: 5′-GGCTGACATGGGAATTAGC-3′
R1: 5′-AGATTGCAGCATTACACGTCTT-3′
15 36482
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Desalted custom primers       Cm-R: 5′-TTATACGCAAGGCGACAAGG-3′
Cm-F: 5′- GATCTTCCGTCACAGGTAGG-3′
16 36483
Remove
Desalted custom primers       F2 and R2: 20 nt constant regions based on pKD3 sequence and 45 nt custom homology regions
F2 constant region:
5′-CATATGAATATCCTCCTTA-3′
R2 constant region:
5′-TGTGTAGGCTGGAGCTGCTTC-3’S1 and S2: 27 nt constant regions for priming the amplification of the SPA-Cm cassette and 45 nt custom homology regions
S1 constant region:
5’AGCTGGAGGATCCATGGAAAAGAGAAG -3′
S2 constant region:
5′- GGCCCCATATGAATATCCTCCTTAGTT -3′

KOCO-F and KOCO-C: 20 nt primers 200 bp away from the non-essential gene deletion site or the essential
gene SPA-tag insertion site
17 36484
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        5. PCR and Electrophoresis Reagents 18 36485
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Taq DNA polymerase   Fermentas # EP0281   19 36487
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10X PCR buffer   Fermentas # EP0281   20 36488
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10 mM dNTPs   Fermentas # EP0281   21 36489
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25 mM MgCl2   Fermentas # EP0281   22 36490
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Agarose   Bioshop # AGA002   23 36492
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Loading dye   NEB #B7021S   24 36493
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Ethidium bromide   Bioshop # ETB444   25 36497
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10X TBE buffer   Bioshop # ETB444.10   26 36494
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Tris Base   Bioshop # TRS001   27 36495
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Boric acid   Sigma # T1503-1KG   28 36496
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0.5 M EDTA (pH 8.0)   Sigma # B6768-500G   29 36498
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DNA ladder   NEB #N3232L   30 36499
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        6. DNA isolation and Clean-up Kits 31 36500
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Genomic DNA isolation and purification kit   Promega #A1120   32 36501
Remove
Plasmid Midi kit   Qiagen # 12143   33 36502
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QIAquick PCR purification kit   Qiagen #28104   34 36512
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        7. Equipment for PCR, Transformation and Replica-pinning 35 36503
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Thermal cycler   BioRad, iCycler     36 36504
Remove
Agarose gel electrophoresis   BioRad     37 36505
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Electroporator   Bio-Rad GenePulser II     38 36506
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0.2 cm electroporation cuvette   Bio-Rad     39 36507
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42 °C water bath shaker   Innova 3100     40 36508
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Beckman Coulter TJ-25 centrifuge   Beckman Coulter     41 36519
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32 °C shaker   New Brunswick Scientific, USA     42 36509
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32 °C plate incubator   Fisher Scientific     43 36510
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RoToR-HDA benchtop robot   Singer Instruments     44 36511
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96, 384 and 1,536 pin density pads   Singer Instruments     45 36513
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96 or 384 long pins   Singer Instruments     46 36514
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        8. Imaging Equipments 47 36515
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Camera stand   Kaiser     48 36516
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Digital camera, 10 megapixel   Any Vendor     49 36517
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Light boxes, Testrite 16″ x 24″ units   Testrite     50 36527
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        9. Pads or Plates Recycling 51 36518
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10% bleach   Any Vendor     52 36520
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70% ethanol   Any Vendor     53 36521
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Sterile distilled water   Any Vendor     54 36522
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Flow hood   Any Vendor     55 36523
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Ultraviolet lamp   Any Vendor     56 36524
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        10. Labware 57 36525
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50 ml polypropylene tubes   Any Vendor     58 36526
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1.5 ml micro-centrifuge tubes   Any Vendor     59 36528
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250 ml conical flaks   VWR # 29140-045   60 36529
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15 ml sterile culture tubes   Thermo Scientific # 366052   61 36530
Remove
Cryogenic vials   VWR # 479-3221   62 36531
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Rectangular Plates   Singer Instruments     63 36532
Remove
96-well and 384-well microtitre plates   Singer Instruments Nunc   64 36533
Remove
Plate roller for sealing multi-well   Sigma #R1275   65 36535
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plates   ABgene # AB-0580   66 36534
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Adhesive plate seals   Fisher Scientific # 13-990-14   67 36537
Remove
-80 °C freezer   Any Vendor     68 36536
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References

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check_url/fr/4056?article_type=t

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Citer Cet Article
Gagarinova, A., Babu, M., Greenblatt, J., Emili, A. Mapping Bacterial Functional Networks and Pathways in Escherichia Coli using Synthetic Genetic Arrays. J. Vis. Exp. (69), e4056, doi:10.3791/4056 (2012).

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