Aneurysmal Subarachnoidalblutung (SAB) blutet, das auftritt, in den Subarachnoidalraum, wenn ein Aneurysma platzt. Während die Morbidität und Mortalität von dieser Veranstaltung wurde auf einen Rückgang aufgrund der verbesserten Behandlungsansätze, die Gefahr des Vasospasmus wurde nach Subarachnoidalblutung weiterhin die gleichen wie noch vor einigen Jahren war. Die Bedeutung der Schaffung eines umfassenden und reproduzierbare Tiermodell, um auslösende Ereignisse des zerebralen Vasospasmus zu identifizieren hat sich der Schwerpunkt der Forschung seit dem ersten Einsatz von Ratten in einem experimentellen Vasospasmus-Modell 1979 von Barry<em> Et al.</em> Frühe Arbeiten bei Ratten gezeigt, dass eine einzige Injektion von Eigenblut in die Cisterna magna zu akuten geführt (in Minuten), aber nicht verzögert zerebralen Vasospasmus<sup> 3, 6, 14</sup>. Hier charakterisieren wir eine niedrige Sterblichkeit SAH Rattenmodell, dass die Ergebnisse reproduzierbar verzögerte Vasospasmus.
Zielsetzung: charakterisieren und festzustellen, die ein reproduzierbares Modell verzögert zerebralen Vasospasmus nach aneurysmatischer veranschaulicht Subarachnoidalblutung (SAB) bei Ratten, um die auslösenden Ereignissen, pathophysiologische Veränderungen und potentielle Ziele für die Behandlung zu identifizieren.
Methoden: Achtundzwanzig männliche Sprague-Dawley-Ratten (250 – 300 g) – SAH oder Kochsalzlösung Kontrolle wurden willkürlich einer von zwei Gruppen zugeordnet. Rat Subarachnoidalblutung in der SAH-Gruppe (n = 15) wurde durch doppelte Injektion von Eigenblut induziert, 48 hr auseinander, in die Cisterna magna. Ähnlich normaler Kochsalzlösung (n = 13) wurde in die Zisterne magna der Salzlösungs-Kontrollgruppe injiziert. Die Ratten wurden am Tag fünf nach dem zweiten Blut-Injektion getötet und die Gehirne wurden für die histologische Analyse aufbewahrt. Der Grad der Vasospasmus wurde unter Verwendung Abschnitten der Arteria basilaris, durch Messung der internen luminale Querschnittsfläche mit NIH Image Software-J. Die Bedeutung wargetestet Tukey / Kramer 's statistische Analyse.
Ergebnisse: Nach der Analyse von histologischen Schnitten, waren basilaris luminale Querschnittsfläche kleiner in der SAH als in der Kochsalz-Gruppe, die mit zerebralen Vasospasmus in der ersten Gruppe. Im SAH Gruppe waren basilaris Innenraum (0,056 um ± 3) deutlich kleiner ab Vasospasmus fünf Tage nach der zweiten Injektion Blut (sieben Tage nach der ersten Injektion Blut), verglichen mit der Kontrollgruppe, die mit Kochsalzlösung Innenraum (0,069 ± 3, p = 0,004). Es gab keine Todesfälle von zerebralen Vasospasmus.
Fazit: Die Ratte Doppel SAH-Modell führt zu einem milden, überlebensfähige, Basilararterie Vasospasmus, die verwendet werden, um die pathophysiologischen Mechanismen der zerebralen Vasospasmus in einem kleinen Tiermodell studieren können. Eine niedrige und akzeptablen Mortalitätsrate ist ein wesentliches Kriterium für eine ideale SAH Tiermodell befriedigt werden, so dass die Mechanismen des Vasospasmus kann elucidated 7, 8. Weitere Modifikationen des Modells können, um für erhöhte Schwere Vasospasmus und neurologischen Untersuchungen einzustellen.
Primaten, eine weitere ähnliche genetische Zusammensetzung und anatomischen Merkmalen der Mensch, genauer nachahmen die Ereignisse des verzögerten zerebralen Vasospasmus und kann leichter zu unterziehen nicht-invasive Bildgebung (MRI und Angiographie), um arterielle Veränderungen, als Nagetiere 8 überwachen. Allerdings sind Primatenmodelle kostspielig und mit komplexer Pflege und ethische Fragen, als kleine Tiermodellen. Kleintier-SAH Modelle, die entwickelt wurden vorher für drei Methoden zur Induktion …
The authors have nothing to disclose.
Wir möchten die Bemühungen von Dr. Mary-Lou Vallano, Department of Neuroscience und Physiologie, für ihre wertvolle Inputs erkennen im Schreiben bis zu diesem Manuskript.
Name of equipment / reagent | Company | Catalogue Number |
Male SD rats (250-300 g) | Taconic | SD-M |
26 G Catheters | Webster | 8416683 |
25 G Needles | Buffalo | 305122 |
1 cc Syringes | Central stores | 54245 |
Ketamine/Xylazine cocktail | Animal Care (SUNY)* | – |
Betadine | Central stores | 51458 |
Sucrose | Sigma | S9378-1kg |
Paraformaldehyde | Sigma | P6148-500G |
Phosphate buffer solution | Fisher | BP-399-4 |
Surgical Table | Harvard | PY2 72-2590 |
OCT Compound (cryoprotection) | VWR | 25608-930 |
Superfrost Slides | Fisher | 12-550-15 |
* Synthesized at Department of Laboratory Animal Care, SUNY Upstate Medical University. Add 1 cc [100 mg/ml] of Xylazine to 10 ml [100 mg/ml] of Ketamine.