ワイルド毛虫から血液細胞を抽出するための単純なプロトコル
Summary
昆虫血球は、昆虫開発のすべての段階を通して免疫および非免疫の両方の多くの重要な機能を、実施しています。血球の種類と機能の私達の現在の知識では、昆虫の遺伝的モデルに関する研究から得られている。ここでは、野生の毛虫から血球を定量化し、可視化、抽出するための方法を提示する。
Abstract
昆虫血球は（哺乳類白血球に相当）昆虫のライフサイクル全体で1いくつかの生理学的過程において重要な役割を果たしている。鱗翅目（蛾や蝶）や双翅目（ハエ真）の受注に属する昆虫の幼虫の段階では、血球はリンパ腺（専門造血器官）や胚細胞から形成され、大人の段階まで行うことができる。胚性血球細胞は、炎症時の開発および走化性調節における細胞遊走に関与している。彼らはまた、細胞のアポトーシスに参加し、胚発生に必須である2。血球は、細胞拡散、細胞凝集、結節の形成、食作用および外国の侵略者3のカプセル化などのいくつかの機能を含む昆虫自然免疫応答の細胞アームを仲介する。彼らは、広報など、また、感染時に特定の昆虫の体液性防御をオーケストレーションするための責任がある抗菌ペプチドおよび他のエフェクター分子4,5のoduction。血球形態と機能は、主にショウジョウバエ、 キイロショウジョウバエ 6,7、蚊ネッタイシマカやハマダラカ 8,9とスズメガの幼虫、 たばこスズメガ 10、11を含む、遺伝的または生理学的な昆虫モデルで研究されてきた。しかし、少しの情報は、現在野生の12から収集されたもの、特に、非モデル昆虫種の血球の多様性、分類、形態と機能について存在する。
ここでは、野生の毛虫から血球を抽出するためのシンプルで効率的なプロトコルを記述します。我々は最後から二番目の齢Lithacodes蛭 （黄色肩幅のスラグ蛾）（ 図1）とEuclea delphinii（とげのオーク·スラグ）幼虫（鱗翅目：Limacodidae）を使用し、体液の十分なボリューム（昆虫血液）を表示単離され、血球の数値は個々の幼虫からカウントすることができます。この方法は効率的にこれらの種においてだけでなく、フィールドから収穫他の関連する鱗翅目の幼虫における血球の種類を研究するために使用することも、容易に微生物や寄生生物13感染後血球機能を調査するために設計された免疫学的測定法と組み合わせることができます。
Protocol
Representative Results
Discussion
医学的に重要な昆虫や鱗翅目昆虫のモデルから血球を抽出するための方法は、以前に9、14が報告されている。血球抽出方法は、昆虫種によると、昆虫とその形態学的特徴の発達段階に適応している。たとえば、 マンドゥカの幼虫体液から分離は容易に腹部15の端の近くに湾曲した角を切り取ることによって行うことができる。ナメクジの幼虫（Limacodidae）この?…
Divulgations
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
TMSは、この研究の間にハーラン·トラスト·フェローシップ（GWU）によってサポートされていました。フィールドコレクションと繁殖L.のための資金蛭とE. delphiniiは JTLにNSFの助成DEB 0642438によって提供されました。
Materials
| Name of the reagent | Company | Catalogue number | Comments |
| Micropipette puller | Sutter Instruments | P-1000 | |
| Borosilicate glass tubes | Sutter Instruments | B100-50-10 | OD: 1.0, ID: 0.50 mm |
| Grace’s Medium | Sigma | G8142 | |
| Fetal Bovine Serum | Thermo Fisher Scientific | SH3007102 | Heat inactivated |
| Dumont #5 Forceps | Fine science tools | 11252-40 | |
| Neubauer hemocytometer | Hausser Scientific | 3200 | |
| Plastic tubing | Tri-Tech | TT-3-32OD | OD: 3/32”, ID: 1/32′ |
| Glass medical syringe | Fortuna Optima | D-97877 | 50 ml volume |
| Blunt end needle | Small Parts | NE-162PL-25 | 16 Gauge x 1″ length |
References
- Hartenstein, V. Blood cells and blood cell development in the animal kingdom. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 22, 677 (2006).
- Wood, W., Jacinto, A. Drosophila melanogaster embryonic haemocytes: masters of multitasking. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 8 (7), 542 (2007).
- Strand, M. R. The insect cellular immune response. Insect Sci. 15 (1), 1 (2008).
- Fauvarque, M. O., Williams, M. J. Drosophila cellular immunity: a story of migration and adhesion. J. Cell Sci. 124 (9), 1373 (2011).
- Nehme, N. T., Quintin, J., Cho, J. H., Lee, J., Lafarge, M. C., Kocks, C., Ferrandon, D. Relative roles of the cellular and humoral responses in the Drosophila host defense against three gram-positive bacterial infections. PLoS One. 6 (3), e14743 (2011).
- Ulvila, J., Vanha-Aho, L. M., Rämet, M. Drosophila phagocytosis – still many unknowns under the surface. APMIS. 119 (10), 651 (2011).
- Moreira, C. G., Regan, J. C., Zaidman-Remy, A., Jacinto, A., Praq, S. Drosophila hemocyte migration: an in vivo assay for directional cell migration. Methods Mol. Biol. 769, 249 (2011).
- Hillyer, J. F. Mosquito immunity. Adv. Exp. Med. Biol. 708, 218 (2010).
- Castillo, J. C., Robertson, A. E., Strand, M. R. Characterization of hemocytes from the mosquitoes Anopheles gambiae and Aedes aegypti. Insect Biochem. Mol. Biol. 36 (12), 891 (2006).
- Jiang, H., Vilcinskas, A., Kanost, M. R. Immunity in lepidopteran insects. Adv. Exp. Med. Biol. 708, 181 (2010).
- Eleftherianos, I., Xu, M., Yadi, H., ffrench-Constant, R. H., Reynolds, S. E. Plasmatocyte-spreading peptide (PSP) plays a central role in insect cellular immune defenses against bacterial infection. J. Exp. Biol. 212 (12), 1840 (2009).
- Ribeiro, C., Brehélin, M. Insect haemocytes: what type of cell is that. J. Insect Physiol. 52 (5), 417 (2006).
- Beetz, S., Brinkmann, M., Trenczek, T. Differences between larval and pupal hemocytes of the tobacco hornworm, Manduca sexta, determined by monoclonal antibodies and density centrifugation. J. Insect Physiol. 50 (9), 805 (2004).
- Beetz, S., Holthusen, T. K., Koolman, J., Trenczek, T. Correlation of hemocyte counts with different developmental parameters during the last larval instar of the tobacco hornworm, Manduca sexta. Arch. Insect Biochem. Physiol. 67 (2), 63 (2008).
- Eleftherianos, I., Joyce, S., ffrench-Constant, R. H., Clarke, D. J., Reynolds, S. E. Probing the tri-trophic interaction between insects, nematodes and Photorhabdus. Parasitology. 137 (11), 1695 (2010).
- Qayum, A. A., Telang, A. A Protocol for Collecting and Staining Hemocytes from the Yellow Fever Mosquito Aedes aegypti. J. Vis. Exp. (51), e2772 (2011).
